Вирусологическое исследование

Контроль за санитарным состоянием почвы включает проведение санитарно-физико-химических, санитарно-энтомологических, санитарно-гельминтологических, санитарно-бактериологических и вирусологических исследований. [c.113]

Санитарно-вирусологическое исследование воды [c.397]

Выделение вируса. Вирусологическое исследование следует проводить как можно раньше, так как после 3-го дня болезни вероятность получения положительного результата резко уменьшается. [c.280]

Кровь из локтевой вены в количестве 5 —10 мл переносят в пробирку с гепарином (из расчета 10 МЕ на 1 мл крови), для серологического исследования гепарин не добавляют. Первую сыворотку получают на 1 —3-й день болезни, вторую — спустя 2 — 3 нед после ее начала. Материал, полученный для вирусологического исследования, необходимо использовать в тот же день. Для кратковременного хранения материала (1—2 дня) достаточно +4 °С, а для длительного — необходимо замораживание при -80— 180°С (кусочки органов можно хранить в 50%-м глицерине при +4 °С). Допускается только однократное замораживание и оттаивание инфекционного материала. [c.291]

Санитарно-вирусологическое исследование воды.......397 [c.1186]

При санитарно-вирусологических исследованиях сточных вод применяют отбор проб с помощью марлевых подушечек или тампонов, погружаемых в струю воды на 3—7 сут. При исследовании вод открытых водоемов вирусы предварительно концентрируют адсорбцией на анионитах АВ-17 и ЭДЭ-ЮП. [c.397]

Предложен ряд модификаций РСК, отличающихся повышенной чувствительностью и меньшим объемом используемых ингредиентов. Так, например, при вирусологических исследованиях объем ингредиентов для РСК на холоде — 1 мл (см. подразд. 3.2). Для капельной РСК берут 1 каплю сыворотки + 1 каплю антигена + + 1 каплю комплемента + 2 капли гемолитической системы. [c.74]

Недостатком вирусологического исследования является его продолжительность (до трех недель), что позволяет ставить лишь ретроспективный диагноз. [c.295]

Унифицированные методы санитарно-вирусологического исследования воды в настоящее время отсутствуют. [c.397]

Существующие методы концентрирования и изоляции вирусов из проб воды можно условно подразделить на несколько групп, сформированных по принципу используемых процессов. Это методы концентрирования вирусов с преимущественным использованием адсорбции или седиментации метод выпаривания исследуемого образца лсидкости [8] диализ его [69], а чаще комбинацией различных процессов. Однако из-за недостаточной эффективности методы диализа и выпаривания не нашли широкого применения нри проведении санитарно-вирусологических исследований. [c.70]

Однако до сих пор методы бактериологических и вирусологических исследований не позволяют всегда рассчитывать на прямое обнаружение в водоисточниках возбудителей инфекционных заболеваний, особенно при их малой. концентрации в воде. Поэтому, как известно, в санитарной практике пользуются методом обнаружения в воде кишечной палочки. Она также выделяется кишечником человека, как и большинство упомянутых выше патогенных микроорганизмов, обладает большей резистентностью и потому обнаруживается, когда патогенные микроорганизмы уже отмирают (исключение, по-видимому, составляют возбудители туберкулеза и некоторых вирусных заболеваний). [c.178]

Постоянный мониторинг проб воды на вирусы пока не доступен большинству местных лабораторий, контролирующих качество водоисточников. Однако существует возможность вирусологического исследования замороженных проб воды, содержащих концентрированный вирус, которые могут длительно храниться при температуре -20°С. [c.285]

К сожалению, унифицированные тесты, характеризующие степень загрязнения воды вирусами, не разработаны. Прр использовании известных методов выделения вирусов из воды для последующей идентификации их мо-н<ет потребоваться срок продолжительностью в несколько месяцев. Учитывая отмеченное, рекомендуется применение различных непрямых показателей, отражающих вирусное загрязнение. В некоторых случаях для этой цели могут использоваться комплексы кишечных бактериофагов [12] или энтерококки [43]. При экспериментальных санитарно-вирусологических исследованиях в качестве теста возможно применение аттенуированных штаммов вируса полиомиелита [35] или других возбудителей вирусной природы. [c.68]

Учесть результаты заражения исследуемым материалом культуры клеток. Отметить наличие и выраженность ЦПД, его характер и наметить план дальнейшего вирусологического исследования. [c.240]

Метод тканевых культур широко вошел в лабораторную практику и получил применение во многих областях экспериментальной биологии и медицины. Для проведения вирусологических исследований были получены клеточные штаммы, на клетках которых выращивают вирусы. [c.11]

Долгое время вирусология оставалась особой, несколько таинственной областью микробиологии, увлекательной для тех, кто стремился понять природу вирусов, но совершенно недоступной большинству биологов. Необходимость изучения вирусов обусловлена тем, что они вызывают широко распространенные тяжелые заболевания растений, животных и человека. Хотя оспа в настоящее время ликвидирована, многие вирусные инфекции, например грипп, ящур, простой герпес или бешенство, можно контролировать лишь частично. Кроме того, идентификация новых вирусных заболеваний, таких, как лихорадка Ласса, африканская чума свиней или синдром приобретенного иммунодефицита (СПИД), требует проведения вирусологических исследований в самые сжатые сроки. В то же время в результате вклада, внесенного в становление молекулярной и клеточной биологии, и сама вирусология поднялась на новый уровень развития. Вирусологи постоянно применяли технические достижения других наук, в первую очередь методы исследования биологических макромолекул, однако лишь недавно специалисты в области молекулярной и клеточной биологии стали использовать вирусы как удобную модель для изучения структуры и функции клетки. [c.7]

По-видимому, многие считают, что наибольший вклад вирусологии в развитие науки и человеческой цивилизации вообще — это открытие обратной транскриптазы, использование которой лежит в основе современной генной инженерии. Однако следует иметь в виду, что большинство важнейших представлений современной молекулярной и клеточной биологии (например, об нитронах, сплайсинге или онкогенах) сформировалось именно в результате изучения структуры и функций вирусов. Несомненно, фронт вирусологических исследований будет и дальше расширяться, а число ученых, применяющих специфические методы вирусологии, будет постоянно возрастать. [c.7]

Кроме того, широкому применению в вирусологических исследованиях метода тканевых культур препятствовало отсутствие возможности индикации вируса непосредственно в зараженных культурах и необходимость прибегать для этих целей к заражению культуральным материалом восприимчивых животных или исследованию этого материала в различных пробирочных реакциях. [c.4]

В настоящее время наибольшее распространение и применение в вирусологических исследованиях нашли культуры растущих клеток. [c.5]

После образования клеточного монослоя культуры можно использовать для вирусологических исследований. Предварительно [c.86]

В данном разделе излагаются только основы некоторых физических методов, применяемых в вирусологических исследованиях, [c.14]

Многие арбовирусы вызывают однотипные клинические проявления и стертые формы заболевания. Эти особенности арбовирусных инфекций, а также одновременное распространение в эндемических очагах сходных по клинике заболеваний вирусной и бактериальной природы, вызванных аденовирусами, энтеровирусами, риккетсиями, спирохетами, затрудняют их клинйческое распознавание. В связи с этим решающее значение приобретает лабораторная диагностика арбовирусных инфекций. Следует отметить, что при этих исследованиях необходимо строго соблюдать правила безопасности. Вирусологическое исследование арбовирусов должны проводить квалифицированные вирусологи в специальных лабораториях для работы с возбудителями особо опасных инфекций. [c.290]

Для ЭМ и вирусологического исследования готовят 10 — 20%-ю суспензию фекалий на растворе Хенкса. Суспензию центрифугируют 30 мин при 3000 об/мин для удаления крупных частиц, надосадочную жидкость переносят в стерильный флакон, добавляют пенициллин (1000 ЕД/мл) и стрептомицин (500 ЕД/мл) и выдерживают 10 — 12 ч при 4°С. [c.300]

Выделение вируса. При проведении вирусологических исследований следует учитывать, что для культивирования 5-19 обычные клеточные культуры не подходят. Он развивается в культурах клеток костного мозга человека, селезенки плода, пуповинной крови и культурах периферической крови, стимулированных эрит-ропоэтином. Выход вирусов при этом незначительный. Идентификацию вируса в культуре клеток проводят путем выявления специфических вирусных белков (преимущественно в ядре и периферической части цитоплазмы) в РИФ, а также путем выявления вирусной ДНК с помощью ПЦР или ДНК-гибридизации. При [c.309]

При санитарно-вирусологических исследованиях водных объектов различных типов были зафиксированы находки кишсчпых вирусов при относительно небольшом содержании БГ1 П в воде водоемов (менее 10 ООО в л) и ири полном их отсутствии в питьевой воде (Л. В. Григорьева, 1968 А. М. Ошеровпч, 1970 Г, А. Багдасарьян, 1971 Э. В. Рабышко, 1972 Л. А. Мышляева, 1975, и ДР-)- [c.47]

Вирусологическое исследование. Носоглоточные смьшы обрабатьшают смесью антибиотиков (пенициллина и стрептомицина по 1000 ЕД/мл) и центрифугируют. Надосадочной жидкостью производят заражение куриного эмбриона (для вируса гргапа), клеточных культур перевиваемых клеток почек обезьян МК-2 (для вирусов гриппа и парагриппа) и клеток НЕР-2 (для аденовирусов) [c.234]

Среда Лейбовитца L-15. Из питательных сред, культивирование которых можно проводить в условиях свободного газообмена атмосферой, чаще всего используется среда Лейбовитца L-15 [6], азработанная для повышения безопасности, удобства и экономич-ости при проведении массовых вирусологических исследований. [c.55]

Иллюстрацией к сказанному может служить получение вариантов линий перевиваемых клеток при изменении состава культуральной среды, иопользуемой для их выращивания, Хэфф и Суим (1957) описали получение варианта линии перевиваемых фибробластов кролика, который отличается от родительского штамма тем, что хорошо размножался в среде с 3 /о диализованной сыворотки. Для размножения клеток родительского штамма была необходима среда, содержащая 10% нативной сыворотки. Вот почему возникло требование строгой стандартизации всех условий культивирования клеточных штаммов, используемых для проведения вирусологических исследований. Только в этом случае можно избежать расхождений в экспериментальных данных у разных авторов, работающих в одной и той же области. [c.82]

В настоящее время не вызывает сомнения, что большая часть, если не все, перевиваемых клеточных штаммов в том виде, з ко-тором они первоначально были получены,состоит из неоднородных в морфологическом и физиологическом отношении клеточных элементов. Поэтому многие авторы считают соблюдение даже неизменного режима культивирования недостаточным для полной воспроизводимости результатов вирусологического эксперимента на тканевых культурах. Нельзя быть уверенным в том, что характер клеточной популяции не иЗдменится под влиянием какого-либо неконтролируемого фактора. Подобно тому как в свое время было сформулировано требование использования в вирусологических исследованиях только чистолинейных животных, так и теперь вирусологи все чаще высказывают мнение о целесообразности замены обычных перевиваемых линий клеток чистыми клональными штаммами. С этой целью разработаны и все шире используются специальные методы. Ввиду важности внедрения в вирусологическую практику чистых клональных линий перевиваемых клеток на этих методах следует остановиться несколько подробнее. [c.82]

Рост клеток млекопитающих в глубинных культурах в свободно суспендированном состоянии открывает новые возможности. Этот метод позволяет получать более однородную клеточную популяцию, а также большие количества клеток для комплексных биохимических, цитологических и вирусологических исследований без применения таких диспергирующих агентов, как версен ил и трипсин. Наконец, применение глубинного метода вьфащивания позволяет иметь постоянный источник клеточных взвесей для повседневных лабораторных исследований. [c.96]

ТТрежде чем изложить технику вычисления по методу Рида и Менча, остановимся на тех условиях, соблюдение которых обязательно при данном методе. Принцип кумуляции предполагает,, Дчто, ЛНтервалы между всеми исследуемыми дозами представляют одинаковую величину (обычно при титровании вирусов разница между логарифмами двух соседних доз составляет 0,5 или 1). При вирусологических исследованиях важно, чтобы каждым исследуемым разведением вируса заражалось равное число жи-" вотных, к сожалению, это требование не всегда выполняется. Беренс (1929) рекомендовал использовать не менее 6 особей для испытания одной дозы, однако, в последующем стали ограничиваться 4 животными. Попытки некоторых авторов ограничиться [c.190]

Предлагавщееся ранее биохимическое и вирусологическое исследование амниотической жидкости малоинформативно для пренатальной диагностики. Из биохимических показателей жидкости только концентрация АФП является диагностически значимой. Уровень АФП существенно повыщается при аномалиях нервной трубки и дефектах передней брюшной стенки. [c.329]

Наиболее общим результатом вирусной инфекции па клеточном уровне является образовапие включений, которые можно наблюдать в инфицированных клетках с помощью светового микроскопа. Эти структуры были обна-рун<ены еще в начале XX века, ж их открытие привело в дальиейпгем к ряду недоразумений. Так, на основании того факта, что включения одного типа напоминают определенные микроорганизмы, некоторые исследователи пришли к ошибочному выводу, что эти включения действительно являются внутриклеточными паразитами или дредстав.ляют собой какую-то стадию жизненного цикла этого паразита, что и служит причиной заболевания. С помощью световой микроскопии было обнаружено два основных типа-внутриклеточных включений аморфные частицы, или Х-тела, и кристаллические включения. Природа включений, а также взаимосвязь мел<ду вирусами и включениями были одними из наиболее дискуссионных вопросов в литературе раннего периода вирусологических исследований. [c.210]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология