Изосалипурпозид

Количественное определение. Аналитическую пробу сырья измельчают до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм. Около 1 г (точная навеска) измельченного сырья помещают в коническую колбу вместимостью 250 мл, прибавляют 100 мл 50% спирта и нагревают на водяной бане при температуре 60 °С в течение 15 мин. Затем извлечение охлаждают до комнатной температуры и фильтруют через бумажный фильтр, предварительно смоченный 50 % спиртом, в мерную колбу вместимостью 500 мл. Экстракцию указанным выше способом повторяют еще 4 раза. Извлечения фильтруют в ту же мерную колбу и доводят их объем 50 % спиртом до метки (раствор А) 5 мл раствора А переносят в мерную колбу вместимостью 50 мл и доводят объем раствора 95 % спиртом до метки (раствор Б). Оптическую плотность раствора Б измеряют на спектрофотометре при длине волны 315 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения используют 95 % спирт. Параллельно измеряют оптическую плотность раствора стандартного образца изосалипурпозида. [c.245]

Содержание суммы флавоноидов в пересчете на изосалипурпозид в абсолютно сухом сырье в процентах (X) вычисляют по формуле [c.245]

Допускается проводить определение с использованием калибровочного графика. В этом случае содержание суммы флавоноидов в пересчете на изосалипурпозид и абсолютно сухое сырье в процентах (Л ) вычисляют по формуле [c.245]

Примечание. Приготовление раствора Государстве н-ого стандартного образца (Г СО) изосалипурпозида около 0,025 г (точная навеска) ГСО изосалипурпозида, высушенного до постойной массы при температуре 100—105 °С, растворяют в мерной колбе вмести- [c.245]

Построение калибровочного графика. Около 0,025 г (точная навеска) ГСО изосалипурпозида, высушенного до постоянной массы при гемпературе 00—105 "С, помеш,ают в мерную колбу вместимостью 250 мл, растворяют в небольшом количестве 95 % спирта и доводят объем 95 % спиртом до метки. Отбирают по 0,25 0,50 1,25 2,50 5,00 6,25 мл раствора в мерные колбы вместимостью 25 мл и доводят объем растворов 95 % спиртом до метки. Измеряют оптическую плотность растворов на спектрофотометре при длине волны 315 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм. [c.246]

Для построения калибровочного графика по оси ординат откладывают оптическую плотность, а по оси абсцисс — концентрацию стандартного образца изосалипурпозида в граммах в 1 мл раствора. [c.246]

В наших исследованиях изосалипурпозид, флоридзин и флоретин после хроматографического разделения определяли количественно следующим образом их элюировали с хроматограмм 80%-ным этанолом, и затем концентрацию определяли спектрофотометрически. [c.42]

Одним из подходов, позволяющих выяснить роль процессов фотосинтеза в образовании фенолов, является использование антибиотиков и ингибиторов, частично или полностью выключающих функции хлоропластов. Введение ингибитора симазина в этиолированные побеги ивы и последующее выставление их на свет на 40% тормозило накопление хлорофилла. При этом также тормозилось образование халкона изосалипурпозида (Kefeli, 1968). [c.73]

Возникает закономерный вопрос, насколько тесно связан биосинтез фенолов с отдельными клеточными структурами. Дифференцированное центрифугирование клеточных органелл и получение чистого цитоплазматического сока (105 ООО g, 90 мин.) из зеленых и этиолированных побегов ивы (Salix rubra) позволило заключить, что в соке из этиолированных побегов присутствуют халкон изосалипурпозид и фенолкарбоновые кислоты, в то время как в соке зеленых листьев присутствуют флавонол-гликозид и следы флавонола, но отсутствуют некоторые фенолкарбоновые кислоты (рис. 13). [c.73]

Хлоропласты осенних листьев ивы содержали значительно меньшее количество фенолов, и набор их качественно отличался не было изосалипурпозида и фенола, локализующегося в пятне а, но по-прежнему присутствовали флавонолы г и е (Кефели, Турецкая, 19666). [c.74]

Хлоропласты весенних и осенних листьев ивы содержат специфические, присущие им фенолы, причем в хлоропластах весенних листьев содержатся халкон и изосалипурпозид, присутствующие в основном в цитоплазматическом соке. [c.76]

Уменьшенное содержание фенольных соединений в хлоропластах осенних листьев можно объяснить затуханием их фотосинтетических функций, а отсутствие в них изосалипурпозида — его переходом в цитоплазму. Монтье (Monties, 1969) подтвердил наши данные относительно локализации фенолов в хлоропластах. Однако характер перемещений фенолов из хлоропластов в цитоплазму остается до конца неясным. [c.76]

Обнаружение фенольных ингибиторов роста типа изосалипурпозида только в цитоплазме осенних листьев можно объяснить изменением мембран хлоропластов в связи с ослаблением их функций, что приводит к последовательному выходу метаболитов через ослабевшие мембраны в цитоплазму. Накопление синтезированных фенолов в цитоплазматическом соке, по-видимому, вообще способно менять проницаемость клеточных органелл, вызывая эвакуацию из них не только фенолов, но и ряда важных метаболических продуктов. [c.76]

Синтез фенолкарбоновых кислот и флавоноидов резко активируется на свету. Метаболические ингибиторы, подавляющие фото-синтетическую активность хлоропластов (симазин, диурон, хлорамфеникол), одновременно тормозят и биосинтез флавоноидов. В хлоропластах зеленых листьев растений локализуются фенольные соединения, некоторые из которых специфичны только для этих органелл. В хлоропластах весенних листьев ивы содержится больший набор фенолов и в большем количестве, чем в хлоропластах осенних листьев. Синтез фенолов в хлоропластах зависит от света. В пропластидах этиолированных побегов ивы фенолов не содержится. Фенолкарбоновые кислоты и халконы локализуются в клеточном соке. Свет вызывает появление флавонолов в хлоропластах и цитоплазме. Присутствующие в этиолированных побегах ивы халкон (изосалипурпозид) и фенолкарбоновые кислоты можно рассматривать как метаболические предшественники флавонолов, синтезируемых на свету (Нейш, 1968 Запрометов, 1968). [c.77]

Следовательно, переход растений ивы в состояние покоя сопровождается уменьшением ауксинов и накоплением в листьях природных ингибиторов роста, которые затем аккумулируются в большом количестве в почках, что хорошо видно на примере ингибитора роста изосалипурпозида (рис. 32). [c.142]

Среди этих ингибиторов ивы, обнаруживаемых на хроматограммах с помощью цветных реакций, был найден изосалипурпозид, т. е. халконарингенин-2 -глюкозид. [c.150]

Изосалипурпозид был накоплен препаративно в больших количествах согласно предложенной нами схеме препаративного выделения фенольных соединений (Кефели, Турецкая, 1968 Turetskaya et al., 1968). [c.150]

Очищенный четырехкратным нерехроматографированием от возможных примесей изосалипурпозид при хроматографическом разделении давал одно пятно, постоянный УФ- и ИК-спектры и т. д Испытание изосалипурпозида на рост отрезков колеоптилей пшеницы показало, что он способен полностью подавлять рост рас- [c.150]

Изосалипурпозид и фенолкарбоновая кислота обладали одинаковой способностью накапливаться в осенних почках в наибольшем количестве (Кефели, Турецкая, 1965). [c.151]

Препаративно выделенные и очищенные изосалипурпозид и фенолкарбоновая кислота были способны подавлять органогенез в весенних черенках ивы. [c.151]

Ниже показано действие изосалипурпозида и фенолкарбоновой кислоты на распускание почек и на образование корней у черенков ивы Salix purpurea (в % на черенок) [c.151]

Сезонная динамика изосалипурпозида в почках ивы показывает, что в наибольшем количестве он присутствует в сентябре — декабре, а в феврале — апреле его количество в почках снижается (см. рис. 32). [c.158]

Динамика разрушения изосалипур позида и флоридзинатканями растений. Почки ивы разрушают в ноябре-декабре в два-три раза меньше изосалипурпозида, чем в феврале-марте (рис. 37, а). Аналогичную картину можно наблюдать в отношении разрушения флоридзина почками яблони (рис. 37, б). Характерно, что в марте способность почек яблони и ивы разрушать фенолы несколько ослабевает по сравнению с февралем, хотя и остается достаточно высокой. Одревесневшие стебли ивы и яблони разрушают соответственно изосалипурпозид и флоридзин одинаково как в ноябре, так и в феврале, правда, у яблони эта способность стеблей разрушать флоридзин слабо возрастает к апрелю. [c.158]

Известная сезонность характерна и для выделения фенольных соединений из инкубируемых отрезков в среду. Так, из стеблей и почек ивы наиболее интенсивное выделение фенолов в инкубационную среду отмечается начиная с января, в то время как процесс выделения фенолов из отрезков стеблей и почек яблони происходит только в марте, что, по-видимому, связано с более затянутым процессом покоя у яблони, нежели у ивы. Хроматографический анализ продуктов, выделенных из срезов стеблей и почек ивы, показал, что изосалипурпозид в выделениях отсутствует, но присутствуют фенолы с Rf = 0,5—0,9 (растворитель 15%-ный раствор СН3СООН). Воз- [c.158]

Рис. 37. Разрушение изосалипурпозида (а) почками (/) и стеблями (2) ивы и разрушение флоридзина (5) почками (3) и стеблями (4) яблони (Кефели и др., 19696)

Орган растений изосалипурпозида флоридзина [c.159]

Стебли разрушают ингибиторы значительно медленнее, чем верхушки или почки. Возраст органа также определяет скорость разрушения. Если почки в апреле разрушали 2,09 мг изосалипурпозида, то в июле почки разрушали 1,22 мг. Соответственно апрельские зеленые стебли разрушали 1,32 мг изосалипурпозида, а июльские— 0,32 мг. Качественный состав продуктов, возникших при разрушении исследуемь1х фенольных ингибиторов, был неодинаков [c.159]

Рис. 38. Разрушение изосалипурпозида (а) отрезками различных органов ивы и разрушение флоридзина (б) отрезками различных органов яблони (Кефели, Коф и др., 1969)

I — изосалипурпозид, инкубированный без ткани (контроль) 2 — почки 3 — верхушки 4 — листья 5 — корни 6 — флоридзин, инкубированный без ткани (контроль) [c.160]

Следует отметить, что если изосалипурпозид разрушается ли--стьями не ивы, а яблони и, наоборот, флоридзин разрушается листьями не яблони, а ивы, то при этом образуются соединения, сходные с теми, которые получались при обычном способе разрушения. [c.161]

Идентификация продуктов разрушения изосалипурпозида и флоридзина [c.161]

Разделение при помощи хроматографии на бумаге Ватмаи 2 в 15%-нохм растворе СНзСООН 2 — флоридзин 2 — флоретин (продукт гидролиза флоридзина) 3 — изо. салипурпозид 4 — нарингин 5 и б — нарингенин (5 — продукт гидролиза изосалипурпозида, 6 — продукт гидролиза нарингина) [c.162]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология