Дифференцированное центрифугирование

При выделении способом дифференцированного центрифугирования они, как правило, осаждаются вместе с тяжами эндоплазматической сети. [c.47]

Для более детального исследования химического состава органоидов клетки разработан метод дифференцированного центрифугирования раздробленных тканей. Обнаружено, что при изменении числа оборотов центрифуги в единицу времени удается отделить друг от друга отдельные органоиды клетки. После центрифугирования проводят детальный химический анализ полученных фракции. Этим методом удалось выяснить химический состав ядра, ядрышка, хромосом, митохондрий и других органоидов. [c.21]

Возникает закономерный вопрос, насколько тесно связан биосинтез фенолов с отдельными клеточными структурами. Дифференцированное центрифугирование клеточных органелл и получение чистого цитоплазматического сока (105 ООО g, 90 мин.) из зеленых и этиолированных побегов ивы (Salix rubra) позволило заключить, что в соке из этиолированных побегов присутствуют халкон изосалипурпозид и фенолкарбоновые кислоты, в то время как в соке зеленых листьев присутствуют флавонол-гликозид и следы флавонола, но отсутствуют некоторые фенолкарбоновые кислоты (рис. 13). [c.73]

Опыты по удалению ядра из клетки микромаиипулято-ром или при дифференцированном центрифугировании показали, что ядро в клетке необходимо для нормального функционирования цитоплазмы. Цитоплазма, лишенная ядра, вскоре утрачивает свою жизнеспособность. Положение ядра в клетке связано с характером деятельности клетки. Отмечены его перемещения в связи с утолщением оболочки в определенных местах, процессами регенерации. На этот факт впервые обратил внимание Габерланд, в 1877 г. [c.24]

Другим надежным критерием для установления природы инфекционности служит определение скорости седиментации инфекционной фракции. Полные вирусы по своим размерам крупнее и седиментируют значительно быстрее, чем их нуклеиновые кислоты. Интактные молекулы нуклеиновых кислот имеют весьма характерные скорости седиментации в стандартных условиях ионной силы и т. д. Таким образом, определение инфекционности во всех фракциях, полученных при центрифугировании вирусной РНК в градиенте концентрации сахарозы, ясно показывает, связана ли инфекционность с компонентом типичной РНК (константа седиментации у многих вирусных РНК равна приблизительно 30S), седиментирует ли она подобно вирусу (константа седиментации обычно в пределах 60— 200S) или подобно комплексу, образовавшемуся между РНК и небольшим количеством белка. Существуют и такие методы дифференцирования вирусов и РНК, которые основаны на различиях их растворимости в молярных растворах солей [144, 162]. [c.178]

Оптимальной, на наш взгляд, схемой получения устойчивых к Са + дифференцированных клеток сердца является разработка Нага и соавторов [19], учитывающая преимущества более ранних методик. Извлеченное сердце гепаринизированной перед забоем (1000 ед гепарина на 1 кг массы) крысы (200—300 г) помещают в 10 мл охлажденного до О °С бескальциевого физиологического раствора Кребса—Рингера (РКР) на фосфатном буфере, pH 7.4, содержащем 5 10 М глюкозы и 1 % бычьего сывороточного альбумина. Перфузионный аппарат наполняют 50 мл бескальциевого РКР, предварительно оксигенированного продуванием смесью 95 % Ог и 5 % СО2. Через аорту (извлекая сердце, сохраняют ее участок длиной около 5 мм) вводят канюлю и промывают сердце РКР в течение 15 мин при 37 °С (на эту процедуру обычно расходуется около 25 мл физиологического раствора) при этом сердце часто сохраняет.сократительную активность. Перфузию продолжают оксигенированным РКР, содержащим 0.1 % коллагеназы, 0.1 % гиалуронидазы и 1 % бычьего сывороточного альбумина (к этому времени сокращения миокарда прекращаются). После окончания перфузии размягченную и потерявшую упругость ткань разрезают на 4 кусочка, удалив предсердия и крупные сосуды, затем повторно по 10— 15 мин до 3—4 раз инкубируют в растворе ферментов в РКР, отделяя клетки легким встряхиванием. Полученные фракции объединяют и отмывают центрифугированием (3—5 мин при 37 °С, 800 об/мин) на настольной центрифуге. Сходная методика получения изолированных клеток для культивирования описана Клэйкомом и Лэнсо-ном [14]. [c.292]

Второй колониестимулируюш,ий фактор - интерлейкин 3 (ИЛ-3)-ответствен за выживание и пролиферацию плюрипотентных стволовых клеток и большинства типов их коммитированных потомков. В его присутствии из культивируемых клеток костного мозга развиваются гораздо более крупные эритроидные колонии примерно из 5000 эритроцитов каждая. Эти колонии возникают из эритроидных клеток, называемых взрывообразующими единицами эритроидного ряда (ВОЕ-Э). ВОЕ-Э отличается от плюрипотентной стволовой клетки тем, что имеет офаниченную способность к пролиферации и дает начало колониям, содержаш,им только эритроциты, даже при таких условиях культивирования, при которых другие клетки могут порождать и иные виды дифференцированных клеток крови. Отличие от КОЕ-Э состоит в том, что ВОЕ-Э нечувствительны к эритропоэтину и от зрелых эритроцитов их отделяют целых 12 клеточных делений, для которых уже необходим эритропоэтин. (Эти клетки отличаются от КОЕ-Э еще и по размерам, и их можно отделить от последних центрифугированием.) Таким образом, ВОЕ-Э считают клетками-предшественницами, коммитированными для дифференцировки в эритроциты, и ранними предками КОЕ-Э (рис. 17-34). [c.186]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология