ДЭГС,

Строение кислоты ДЭГС ЭГС Апиезон между зна- [c.347]

Колонки стеклянные, в. д. 106 см 3 мм. 0,7% ДЭГС на носителе хромосорб Ш (в. к.) скорость потока газа-носителя Ы, 30 мл/мин 100—200 °С, при 6°С/мин опыт качественный. Пики пролива и треонина однозначно ае отнесены. [c.121]

Для разделения на ЭГА при относительном содержании примеси, равном 0,001, необходимо примерно 3000 теоретических тарелок, тогда как при использовании ДЭГС достаточно 1500 теоретических тарелок. [c.111]

Томсон и сотр. [416, 417] дали характеристику фаз, которые применяют при анализе хлорсодержащих пестицидов. Это были 0У-1 (3%), ДС-200 (3%),дР-1 (5%), ДС-200 (10%), ДЭГС стабилизированный (3%), ОУ-1 (2%)/0Р-1(3%), 8Е-30 (4%)/0Р-1 (6%), ДС-200 (5%)/0Р-1 (7,5%) ОУ-17(15%)/ОР-1 (1,95%), 0У-17 (3,5%)/ОР-1 (4,5%). Эффективность этих фаз изменялась от 2300 до 5000 (число теоретических тарелок рассчитано по п, -ДДТ). Наиболее оптимальным было использование ДЭГС (3%) и смесей ЗЕ-ЗО (4%)/0Р-1 (6%) и 0У-17 (1,5%)/0Р-1 (1,95%). [c.63]

Диметоат и О2-аналог - - 2% ДЭГС на хромосорбе Q 80—100 меш [411] [c.164]

Строение кислоты Р-ЦД ацетат (I) ДЭГС (II) ЭГС (III) Аниезон Ь-(1У) Разница между значениями ЭДЦ на ЭГС и апиезоне I. [c.346]

ДЭГС — единственная полиэфирная фаза, испытывавшаяся авторами главы для ГХ метиловых, этиловых и м-пропиловых эфиров ацетнламинокислот — не обеспечивала адекватного разделения (рис. 3). [c.122]

Номер пика на хроматограмме ан ализируемой смеси Компоненты тэг. 70 с ДЭГС, 120° С [c.243]

HI-EFF 1 АР Подобная предыдущей, LA -IR-296 Диэтиленгликольадипат, сшитый с пента эритритом, ДЭГА-П LA -2R-446 Диэтиленгликольсукцинат (ДЭГС) Подобная предыдущей Подобная предыдущей, ДЭГС-ПС Подобная предыдущей Подобная предыдущей, HI-EFF-1 ВР Энон 1001 (эпоксидная смола) Этиленгликольадинат (ЭГА) [c.109]

Торговые названия Перкин-Эльмер Р, полиэфир А, ДЭГС-ВЗ (модифицирован Н3РО4), ДЭГС, Н1-ЕРР-1 В, ЬАС-3-К-728. [c.156]

Хорошим примером тому служит описанное Липским и Лэндоуном /33/ применение неопентиловых полиэфиров в качестве неподвижных фаз в анализе стероидов. Многие хроматографисты пытались применить эти полиэфиры в надежде заменить ими диэтиленгликольсукцинат (ДЭГС) или этиленгликольсукцинат (ЭГС) в анализе метиловых эфиров жирных кислот. Некоторые из этих попыток оказались неудачными, поскольку, несмотря на значительно более вы- [c.109]

Кроме этих преимуществ или недостатков, связанных с применением той или иной концентрашш неподвижной фазы, существует еще одно важное соображение. При использовании диатомитовых носителей эф )ективная полярность высокополяр-ных неподвижных фаз уменьшается с уменьшением концентрации. Это свидетельствует о том, что так называемые инертные носитепи на самом деле не являются инертными. Поэтому может случиться так, что разделение, которое относительно легко происходит на колонке с 20% неподвижной фазы карбовакс на носителе хромосорб 1, трудно осуществить на колонке с насадкой, содержащей 3% карбовакса, даже используя регулирование температуры. Так, например, дпя обсуждавшихся выше полиэфиров ДЭГС или ЭГС критерий разделения метилстеарата и метилолеата равен примерно 1,18 при концентрации полиэфира 20%. С увеличением концентрации выше 20% заметных изменений критерия разделения не происходит. Когда концентрация неподвижной фазы уменьшается до 1%, величина критерия разделения снижается до примерно 1,10, и разделить эти два соединения чрезвычайно трудно, если только колонка не характеризуется очень большим числом теоретических тарелок. Используя, насадку, содержащую 1% полиэфира, Хорнингу и сотр. /4/ удалось разделить смесь метиловых эфиров но [c.138]

Промывку носителя разбавленным раствором кислоты (соляной или фосфорной) и щелочью применяют для удаления железа, алюминия и других металлов, при этом заметно уменьшается активность. Обработка фосфорной кислотой необходима при определении хлорфенолов. Например, для обнаружения пентахлорфе-нола в биологических объектах экстракты хроматографировались на колонке с хромосорбом С (60—80 меш) с добавкой 2% о-фос-форной кислоты и 3% ДЭГС [141]. Однако в этом случае температура термостата колонок не должна превышать 185°, так как кислота может улетучиться. [c.49]

ДС-200, 8Е-30, 8Р-96, Е-301, ХЕ-60, ДС-11,.. апиезон Ь, ДЭГС, карбовакс 20 М, ОУ-101, 0У-17, ОУ-210, ОУ-225, дГ-1/ДС-200 [c.55]

При анализе фосфорорганических пестицидов широко используются те же неподвижные фазы, что и для хлорсодержащих пестицидов. Вотс и Сторгерр [428] изучили поведение 60 фосфорсодержащих пестицидов па ДС-200 (10%), ДЭГС (2%) и смеси QF-l/ДС-200. Авторы определили время удерживания веществ и минимально определяемые их количества на термоионном детекторе (таблетка из хлористого калия). Метилсиликон ДС-200 оказался наилучшим для газохроматографического определения лестицидов и наряду с рР-1/ДС-200 может быть использован при [c.63]

С помощью газовой хроматографии оказывается возможным сравнительно быстро определить количество и,и -ДДЭ (продукта обмена и,ге -ДДТ) в сыворотке крови животных и человека [156, 207, 208]. Для этого сыворотку центрифугируют 10 мин. при 2000 об мин. 1—3 мл надосадочной жидкости смешивают с 2 мл хексана, и метаболит экстрагируют в течение 4 мин. 1,6 мл гексанового экстракта концентрируют на водяной бане при 40° и соответствующий аликвот вводят в испаритель газового хроматографа с детектором по захвату электронов. Определение п,п -]ХЦЭ проводят с ЭЗД ( Н, 130 мкюри, 200°) на колонке 182 сж X 6 мм, заполненной анакромом ABS (80—90 жеш) с 6% 0F-1 и 4% SE-30 или хромосорбом Р с 3% стабилизированного ДЭГС. Число теоретических тарелок по ге,ге -ДДЭ состав.пяло 2500. Температура колонки — 190°, расход азота — 60 мл1мин. [c.118]

Газохроматографический анализ метилпаратиона, метилпа-раоксона и их гомологов оценен Джаглэн и Гюнтером [276]. Для этого применены две неподвижные фазы, отличающиеся по полярности апиезон Ь и ДЭГС, нанесенные на газохромосорб Q (80—100 меш). Детектор — термоионный, температура испарителя и колонки 170—210°. Расход азота, воздуха и водорода был равен 40 300 и 21 мл мин. В табл. 11 приведено [c.131]

Газохроматографический метод определения ртутноорганических соединений в биологических объектах разработан также в Японии [413а]. В данном случае для связывания пестицидов применяют глутатион, а быстрое хроматографирование соединений, содержащих ртуть, достигается на коротких колонках с ПЭГ. Из неподвижных фаз эффективным оказался ДЭГС. На этой фазе нам удалось разделить метил- и этилмеркурхлорид. Использовали колонку 30 сл X 3 мм, заполненную силанизированным целитом 545 (80—100 меш) с 30% ДЭГС, а хроматографирование веществ проводили при температуре 150—160°. Однако время удерживания фенилмеркурацетата достигало 30 мин. даже при температуре колонки 180°. Менее эффективными были фазы SE-30 и ПЭГ с молекулярным весом 6000. В последнем слзгчае пики исследуемых соединений были ассиметричны, наблюдалось хвостование . [c.146]

Паратион и его аналоги 170— 210 61x4 40 5% апиезона L или 1,4% ДЭГС на хромосорбе Q 80— 100 меш [276] [c.163]

Бейдингс и сотр. [17] продемонстрировали достаточно хорошее разделение стандартных смесей хлор-замещенных пестицидов на стеклянной колонке типа НС размерами 0,7 мм X 24 м с пленкой неподвижной жидкой фазы SE 30 толщиной 1 мкм. Качество разделения значительно улучшилось при переходе к колонке размерами 0,9 мм X 8 м с неподвижной жидкой фазой ДЭГС — фосфорная кислота (3 1). [c.175]

ДС-200, SE-30, SF-96, Е-301, ХЕ-60, ДС-11, апиезон L,, ДЭГС, карбовакс 20М, OV-101, 0V-17, OV-210, OV-225, др-1/ДС-200 [c.233]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология