Антитело образование при белковой инъекции

Хотя у некоторых типов белков до настоящего времени не обнаружено специфической биологической активности, подобной активности ферментов или гормонов, большинство белков при инъекции их соответствующим животным вызывает образование антител. Затем эти антитела, в некоторых случаях после надлежащей очистки, можно Использовать для доказательства наличия соответствующих антигенов. [c.23]

Трудности обычно возникают на стадиях 1, 2 и 6. Мы будем исходить из того, что стадия I осуществлена и выделен по крайней мере частично очищенный фермент. Чтобы вызвать у кролика образование большого количества антител, достаточно менее одного миллиграмма чистого фермента. Поддержание высокого титра антител в крови достигается повторными ежемесячными инъекциями по 0,1—0,3 мг фермента. Однако некоторые белки значительно более антигенны, чем другие, так что даже следы их примесей в препарате фермента, не определяемые обычными аналитическими методами (разд. 9.1), могут вызвать весьма интенсивное образование антител у кролика. Впоследствии эти антитела будут связываться со своими антигенами, присутствующими в больших количествах в неочищенных препаратах фермента. Таким образом, селективность полученных антител окажется значительно более низкой, чем ожидалось. Эта проблема приобретает особую остроту, если очищаемый фермент является относительно слабым антигеном. [c.174]

Большинство белков, а также некоторые полисахариды и липиды обладают свойствами антигенов, т. е. они стимулируют образование специфических антител после инъекции подопытному животному. Инъекция индивидуального вещества вызывает образование антител одного типа, тогда как смесь антигенных веществ вызывает образование нескольких типов антител. Этот биологический метод установления гомогенности белковых препаратов может быть таким же чувствительным, как методы, основанные на детекции по энзиматическому или гормональному действию, при условии, что примеси обладают антигенными свойствами. [c.165]

Уже давно обнаружено, что последовательность у З -конца одной из мяРНК, называемой 1Л, комплементарна усредненной 9-нуклеотидной последовательности, расположенной на 5 -границе интрона. Действительно, мяРНК 01 необходима для сплайсинга. Инъекция в ядро антител к белкам РНП частиц, содержащих РНК 01, блокирует сплайсинг. Разрушение 5 -конца этой РНК также его подавляет, тогда как З -конец РНК 01 можно разрушить, сохранив активность последней. Более детальные исследования показали, что РНК 01 нужна для первого этапа сплайсинга (отщепления 5 -конца интрона) и, видимо, только для него. Для второго этапа, образования лассо, необходим другой тип мяРНК, который содержит мяРНК и2. Последняя, вероятно, может образовывать дуплекс с вовлекаемым в образование лассо участком интрона вблизи от А. Получены данные, что третий этап реакции осуществляется при участии еще одной мяРНК, а именно 05. Наконец, каким-то образом в процесс сплайсинга вовлечены еще мяРНК 04 и 06. [c.225]

Многие растворимые белки, ферменты в том числе, выделенные из различных тканей животных, обладают антигенными свойствами, т. е. при введении в организм вызывают в нем образование антител. Однако их антигенные свойства (иммуногенность) различаются, что проявляется в разной способности стимулировать продукцию антител. В известных пределах иммуногенность коррелирует с молекулярной массой антигена. Иммунохимически чистые антигены применяются обычно в виде 0,01 — 1,0%-ных растворов, тогда как неочищенные антигены и смеси антигенов приходится вводить в большей концентрации. Слабоиммуногенные антигены необходимо вводить со стимуляторами иммуногенеза, из которых наиболее часто используют адъювант Фрейнда. Антисыворотки против растворимых нативных белков можно получить повторными инъекциями (внутримышечно, подкожно, внут-рикожно) эмульсии раствора белка с адъювантом или внутривенными инъекциями раствора белка без адъюванта. [c.307]

Получение антител, специфичных к определенному белку, производится повторным инъецированием очищенного белка в организм животного кролика, морской свинки, овцы, козы, курицы, лошади, мыши. Процедура иммунизации остается пока еще эмпирической и зависит от иммуногенности конкретного белка. Так, для некоторых растительных белков достаточно для всякой процедуры иммунизации доли миллиграмма (некоторые ферменты типа а-амилаз, рибулозобисфосфаткарбоксилаза, ФЕП-карбокси-лаза), тогда как других белков (некоторые фракции проламинов семян) требуется несколько десятков миллиграммов (в очищенном виде), чтобы путем нескольких инъекций вызвать образование антител. [c.95]

Важно было проследить способность новорожденных животных к образованию антител. В течение первых дней после рождения они неспособны образовывать аптитела в ответ на инъекцию антигена. Если в этот период жизни ввести в кровь животного массивную дозу белкового антигена, то в дальнейшем, когда в организме животного разовьется способность к синтезу антител, все же не будут образовываться антитела, специфичные к тому чужеродному белку, который присутствовал в новорожденном организме. В этом случае чужеродный белок ведет себя, как собственный белок, неспособный вызвать иммунологическую реакцию. Явление носит название длительной иммуно.тюгической толерантности. [c.504]

Хотя эксперименты, в которых в качестве индикаторов использовались меченные изотопами вещества, дали много ценных сведений относительно синтеза белка, тем не менее в этой области до сих пор еще остались нерешенными основные проблемы. На основании этих опытов невозможно решить, происходит ли непрерывное самообновление белков путем синтеза и последующего распада отдельных молекул белка или же оно обусловлено тем, что каждая из этих молекул, не распадаясь нацело, постоянно обменивает свои отдельные составные части. Подобный обмен может достигаться, например, путем временного размыкания пептидных связей и включения аминокислоты между концами раскрытых цепей. Для разрешения этой проблемы были использованы иммунологические методы. Как уже указывалось в гл. XIV, антитела находятся во фракции у глобулинов сыворотки. Если вызвать образование антител у кролика, иммунизируя его каким-либо антигеном, то вновь образованные иммунные т-глобулины можно отдифференцировать от f-глобулинов, присутствовавших до иммунизации, по их способности преципитировать соответствуюший антиген. Так, например, инъекция полисахарида пневмококков SIII приводит к образованию SIII-анти-тел во фракции глобулинов иммунной сыворотки. Если подопытным кроликам помимо антигена вводится N -глицин, то через небольшой промежуток времени меченая аминокислота обнару- [c.390]

Доказано, что третамин изменяет синтез белков, как указывалось в двух сообщениях о подавлении формирования антител. Беренбаум [20] выяснил, что введение третамина через 2 дня после инъекции вакцины против брюшного тифа и паратифов А и Б действительно задерживает образование антител у мышей на несколько недель. Образование титра антител задерживалось на несколько дней при введении третамина с эритроцитами человека [47]. Кроме того, третамин вызывает снижение содержания альбумина и увеличение фракции -глобулина у крыс с удаленной печенью [148]. [c.180]

Одна из линий исследования внутриклеточных предшественников фагового белка основывалась на использовании того факта, что Т-четные фаги обладают ярко выраженными антигенными свойствами. При инъекции фаголизата кролику или лошади ( )тги вызывают специфическую иммунологическую реакцию у животного. Иными словами, в сыворотке крови иммунизированного животного появляется класс глобу-лярШ)1х белков, или антител, обладающих специфическим сродством к белкам фага и способных, следовательно, сиеи.ифически соединяться с ними. (П ои,есс образования антител более подробно будет рассматрив.ать-ся в гл. XXI.) [c.266]

У обеих форм ротовое отверстие окружено щупальцами, которые содержат специальные стрекательные клетки, называемые книдобластами (отсюда и название типа nidaria). Под влиянием внешнего стимула они выбрасывают нити, выделяющие сильно-действующие яды, которые парализуют жертву (небольших ракообразных и личинок насекомых). Об этих ядах известно очень мало. Немногие изученные, по-видимому, представляют собой белки. Если токсические вещества стрекательных клеток ввести кроликам, наблюдается поражение нервной системы и образование антител, как и при инъекции змеиных ядов, столбнячного токсина и других ядовитых белков. [c.143]

II. Пневмокок,ки типа III, антитела к углеводному компоненту S3. Очищенный компонент пневмококка S3 обладает чрезвычайно низкой иммуногенностью (или не обладает совсем) для кролика. Однако введенный в/в вместе с мембранными белками убитых нагреванием микроорганизмов, он вызывает эффективное образование IgG, отличающихся высокой типовой и антигенной специфичностью. С помощью повторных курсов получают не менее 5 мг/мл специфических антител, и у многих животных можно повысить концентрацию IgG в сыворотке до 20 мг/мл и более. Данный ответ не зависит от влияния белковых иммуногенов на синтез антител. В одном из наших экспериментов [38] кролики получали не менее двух курсов по девять в/в инъекций в течение 19 дней начальная доза составляла 10 микроорганизмов, с шестой инъекции — 4- 10 , а в конце дозу доводили до 10 ° микроорганизмов. Кровь забирали через 3—4 дня после последней инъекции. [c.84]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология