Оксидазный тест

Определение оксидазной активности бактерий на мембранном фильтре. Оксидазный тест выполняют путем наложения мембранного фильтра стороной с выросшими колониями вверх на кружок фильтровальной бумаги, обильно смоченной реактивом для определения оксидазной активности. Через 2— [c.131]

Окраска по Граму и постановка оксидазного теста [c.389]

Постановка оксидазного теста при работе методом мембранных фильтров [c.390]

Если при высеве из флаконов и пробирок, где отмечены помутнение, кислота и газ, на секторах среды Эндо выросли темнокрасные с металлическим блеском и без него (лактозоположительные) колонии, то их принадлежность к бактериям группы кишечных палочек подтверждают микроскопированием и постановкой оксидазного теста по п. 3.3.15.1. [c.198]

Окраска по Граму и постановка оксидазного теста. . , , . 389 [c.1186]

Учет результатов исследования. Для учета выбирают фильтры, на которых выросли изолированные колонии, и определяют их оксидазную активность. Все колонии, которые приобрели сине-фиолетовую окраску, из учета исключают. Среди колоний, не изменивших первоначального цвета, подсчитывают число темно-красных с металлическим блеском и без блеска, а также слизистых, крупных, выпуклых лактозоположительных колоний с отпечатком на обратной стороне фильтра. Дальнейшего подтверждения принадлежности таких колоний с характерной морфологией, окраской и отрицательным оксидазным тестом к лактозоположительным кишечным палочкам не требуется. [c.134]

Постановка оксидазного теста при работе бродильным методом [c.390]

При наличии в мазках грамотрицательных, коротких, полиморфных, не образующих спор палочек (возможны удлиненные нитевидные формы, а также крупные палочки, полярно окрашенные) выполняют оксидазный тест (п. 3.3.15.1). [c.195]

Реактивы для оксидазного теста (фильтровальная бумага и реактивы для оксидазного теста могуг быть заменены готовой бумажной индикаторной системой на оксидазу). [c.239]

Примечание. Если оксидазный тест со среды Эндо проявляется недостаточно четко из-за того, что мешают ингибиторы (это относится в основном к темнокрасным колониям), то для получения правильного результата такие колонии можно пересеять на сектора или на скошенный питательный агар и после подращивания повторить оксидазный тест. [c.190]

Применение оксидазного теста на глюкозу и галактозу [c.298]

На поверхность хорошо подсушенного питательного агара с помощью микропипетки по каплям вносят 0,01 или 0,02 см испытуемой воды или ее разведений. Чашки переворачивают только после полного высыхания капли. После инкубации посевов при 37 °С 24 ч подсчитывают количество колоний с помощью лупы. Подсчет облегчается проявлением оксидазной реакции после введения по каплям (на место посева) реактива для определения оксидазного теста. [c.248]

При росте на фильтрах характерных для кишечных палочек колоний выполняют оксидазный тест, как это описано в п. 4.1.2.3, и подсчитывают колонии, не изменившие первоначального цвета темнокрасные с металлическим блеском и без него, а также слизистые крупные выпуклые розовые с красным центром, с отпечатком на обратной стороне фильтра. [c.248]

Для постановки оксидазного теста мембранные фильтры с выросшими на них колониями переносят (не переворачивая) на лист фильтровальной бумаги, предварительно смоченный реактивом для выявления оксидазы (рец. 32). Результат реакции учитывают через 2—4 мин. [c.309]

Изучают и отбирают подозрительные культуры на полиуглеводных средах (дающие характерные изменения сред), микроскопируют окрашенные по Граму мазки из культур, ставят оксидазный тест и РА с холерными сыворотками (01, R0, Огава, Инаба [c.168]

Для целей санитарно-бактериологического анализа оксидазную реакцию использовали микробиологи ЧССР и ГДР и предложили ее в качестве основного дифференциального теста при определении коли-индекса в Унифицированных методах СЭВ (1966, 1975). Оксидазный тест в нашей стране был широко проверен в практике сани-тарнО -бактериологического анализа воды различных подо,емов (Т. 3. Артемова, 1971, 1972 Г. И. Овсянникова, 1974 И. Ф. Сухачева, 1974), питьевой воды на различных водопроводных станциях (Л. Е. Корш и др., 1974 Т. 3, Артемова, Л. Е. Корш и др., 1974) и включен в ГОСТ 18963-73. [c.27]

При росте иа фильтрах колоний, характерных для БГКП (темно-красные с металлическим блеском и без блеска, красные, розовые, с темным центром, бесцветные), выполняют оксидазный тест. Наличие активной оксидазы у всех колоний позволяет дать отрицательный ответ также через 18—24 ч. [c.130]

Однако при выполнении оксидазного теста необходимо приготовление растворов реактивов перед определением. Горьковским научно-исследовательским институтом эпидемиологии и микробиологии разработана стандартная бумал<ная индикаторная система па оксидазу, которая представляет из себя фильтровальную бумажку, пропитанную соответствующими реактивами. В сухом виде бумажная система может сохраняться в темном месте длительное время. Для приготовления системы к ра- [c.155]

Посев прямой или с помощью мембранных фильтров, а таюке посев из сред накопления делают на двууглеводную среду Эндо. После инкубации 16—18 ч при 37°С выполняют оксидазный тест и в качестве БГКП учитывают все темно-красные и красные колонии с металлическим блеском и без блеска, не обладающие оксидазной активностью. [c.133]

Ускоренный одноэтапный метод определения лактозоположительных кишечных палочек. После широкой проверки рекомендован к использованию ускоренный одноэтапный метод определения лактозоположительных кищечных палочек, который сокращает продолжительность исследования на 6—24 ч, а по сравнению с Меледународ-ными стандартами (1973) —на 48 ч. Помимо сокращения времени анализа, метод существенно его упрощает (под-тверлсдающая бродильная проба на лактозе заменена экспрессным оксидазным тестом). Введение оксидазного [c.133]

По 2—3 изолированные колонии каждого типа, выросшие на секторах среды Эндо, снимают петлей или стеклянной палочкой и наносят штрихом на фильтровальную бумагу, смоченную реактивом. В месте нанесения бактериальной массы бумага не изменяет цвета, если оксидазный тест отрацательный, и синеет в течение 1 мин, если бактерии имеют активную оксидазу. Исследование изолированных колоний является обязательным, иначе можно необоснованно отбросить кишеч- [c.189]

После подсчета лактозоположительных колоний, как это описано выше, обращают внимание на остальные — розовые с темным центром, бесцветные, которые не изменили цвета после постановки оксидазного теста. Подсчитывают число колоний разного типа и по 2—3 колонии каждого типа пересевают на полужидкую среду с глюкозой для подтверждения их принадлежности к БГКП. Образование кислоты и газа при 37°С в течение 24 ч расценивают как положительный результат. Микроскопия не обязательна. [c.135]

Выполнение оксидазного теста весьма важно в экспедиционных условиях, так как позволяет быстро, без дополнительного выращивания бактерий, проводить дифференцирование БГКП от грамотрицательных водных сапрофитов. На сочетании оксидазного теста с дифференциальными средами основаны простые ускоренные одноэтапные методы определения БГКП на мембранных фильтрах, дающие ответ в первичном посеве через 12— 18 ч без подтверждающих бродильных проб. Такие методы рекомендованы к использовапию в полевых исследованиях воды. [c.155]

Оксидазный тест предназначается для дифференциации бактерий семейства Еп1егоЬас1епасеае от грамотрицательных бактерий семейства Рзеиёотопаёасеае и других водных сапрофитных бактерий, которые обладают активным ферментом оксидазой и окисляют фени-лендиаминовые соединения до индофенола ярко-синего цвета. [c.189]

Наличие грамотрицательных палочек в мазках и отрицательный оксидазный тест позволяют немедленно дать положительный ответ о наличии бактерий группы кишечных палочек в анализируемом объеме воды. Анализ воды по этапам очистки заканчивают учетом результатов по наличию или отсутствию на подтверждающей среде Эндо темнокрасных колоний грамотрицательных палочек, не обладающих оксидазной активностью. [c.198]

К бактериям группы кишечных палочек относят грамотрицатель-ные, не образующие спор палочки, ферментирующие глюкозу до кислоты и газа при (37 2) °С в течение 5—24 ч и с отрицательным оксидазным тестом. [c.244]

При росте на фильтрах колоний, характерных для кишечных палочек (темно-красных с металлическим блеском и без него, красных, розовых слизистых, розовых с темным центром, бесцветных) выполняют оксидазный тест. Мембранный фильтр колониями вверх переносят на кружок фильтровальной бумаги, смоченной реактивом для определения оксидазной активности. Учитывая бактерицидность реактивов для определения оксидазной активности, мембранный фильтр сразу после проявления реакции следует перенести обратно на среду Эндо и не позднее 5—7 мин пересеять оксидазоотрицательные колонии в полужидкую среду с глюкозой (если это необходимо по дальнейшему ходу анализа). [c.245]

Оксидазный тест на глюкозу и галактозу позволяет определять содержание этих веществ в ростовых средах, в нейтрализованных гидролизатах полисахаридов и в ферментных реакционных смесях, например содержа-ние глюкозы при ферментативном гидролизе целлюлозы, ИТ. п. Глюкозооксидаза окисляет только р-О-глюкозу, нО в присутствии мутаротазы (входящей в некоторые имеющиеся в продаже препараты) она позволяет определять и а-В-глюкозу. Для проверки возможного влияния солей и других ингибиторов в каждый неизвестный раствор целесообразно добавлять стандарт без углеводов. [c.298]

Колонии, по результатам оксидазного теста относящиеся к роду нейссерий, в течение ближайших 2 мин (во избежание гибели бактерий под влиянием реактива) пересевают а сектор чашки с сывороточным агарои. [c.196]

Оксидазный тест предложен для дифференциации бактерий семейства Enteroba teria eae от грамотрицательных бактерий семейства Pseudomonada eae и других водных сапрофитов, которые в отличие от кишечных бактерий вырабатывают фермент оксидазу, окисляющую фенилен-диаминовые соединения до индофенола, имеющего ярко-синий цвет. [c.309]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология