Метод Виноградского

Для выявления бактерий первой фазы нитрификации и определения относительной плотности населения их в почве, используют метод Виноградского на гелевых пластинах. [c.114]

Наиболее полно отражает численность клеток в почве метод прямого подсчета под микроскопом, требующий высокой квалификации исследователя. Для подсчета зародышей методом Виноградского в модификации Шульгиной на предметное стекло наносят определенный объем суспензии, готовят из него мазок на определенной площади, затем мазок фиксируют, красят и подсчитывают под микроскопом количество клеток микроорганизмов. Фиксация препарата не дает возможности выявить- количество жизнеспособных клеток. В какой-то мере этот недостаток можно устранить при использовании метода флуоресцентной микроскопии. [c.141]

За окислением клетчатки можно наблюдать, пользуясь методом Виноградского на гелевых пластинах. [c.105]

Количество клеток микроорганизмов подсчитывают с иммерсионным объективом 90Х в квадратах окулярной сетки или в поле зрения микроскопа. Правила подсчета аналогичны тем, которые изложены для метода Виноградского. Количество клеток в 1 мл исследуемого субстрата вычисляют по формуле [c.121]

Метод учета численности бактерий в почве при помощи люминесцентной микроскопии по Звягинцеву и Кожевину дает еще более достоверный результат по сравнению с методом Виноградского. Суть его в том, что приготовленные из почвенной суспензии препараты окрашивают специальным красителем акридином оранжевым (флуорохро-мом). Окрасившиеся в ярко-зеленый цвет клетки хорошо заметны на темном или красном фоне почвенных частиц и препарата, причем микроскопия в отраженном свете позволяет учитывать и адсорбированные клетки, которые, как правило, не видны в проходящем свете. [c.114]

Метод Виноградского в модификации Шульгиной. [c.160]

Исследования по методу Виноградского показали, что меньше всего микроорганизмов во фракции крупных частиц почвы и больше в самой дисперсной фракции, содержащей максимум органического вещества. Метод имеет ряд достоинств, но он очень громоздок для широкого пользования. В лабораторной практике этот метод чаще применяют в упрощенной модификации О. Г. Шульгиной. Из тщательно отобранной средней почвенной пробы берут 5 г и вносят в эрленмейеровскую колбу емкостью 250 мл, содержащую. 50 мл стерильной водопроводной воды. [c.160]

Прямым подсчетом бактерий в торфе по методу Виноградского установлено наличие в нем до 10—50 млн. микроор- [c.542]

Па рис. 137 показан препарат, приготовленный по методу Виноградского. [c.562]

На нитритном агаре, приготовленном по методу Виноградского, лучше выявляются представители автохтонной микрофлоры, так как нитрит ингибирует рост бациллярных форм, подавляющих микроорганизмы автохтонной группы. Нитритный агар готовят следующим образом к среде для второй фазы нитрификации (см. 8.2.2) добавляют 20 г/л хорошо вымоченного в дистиллированной воде агар-агара и стерилизуют при 0,5 атм 30 мин. [c.102]

Методом Виноградского наиболее точно определяют чмслеиность микроорганизмов в почве. Исследования по его методу показали, что разные почвенные фракции содержат неодинаковое число микроорга низмов, Уеньше всего шх во фракции крупных частиц почвы, больше всего Б дисперсной фракции содержащей максимум органического вещества. Метод имеет ряд достоинств, но очень труден для широкого использования. [c.113]

Учет при помощи люминесцентной микроскопии требует соответствующего оборудования. При его отсутствии следует применять метод Виноградского в модификации Шульгиной. [c.115]

Исследования (Теппер, 1963) показали, что представители автохтонной микрофлоры лучше выявляются на нитритном агаре, приготовленном по методу Виноградского, так как нитрит ингибирует рост бациллярных форм, подавляющих развитие микроорганизмов автохтонной группы. [c.143]

ВЫЯВЛЕНИЕ МИКРООРГАНИЗМОВ АВТОХТОННОЙ ГРУППЫ, УЧАСТВУЮЩЕЙ В РАЗЛОЖЕНИИ ГУМУСОВЫХ ВЕЩЕСТВ, ПО МЕТОДУ ВИНОГРАДСКОГО В МОДИФИКАЦИИ ТЕППЕР [c.166]

Метод Виноградского дает более правильное общее представление о численности почвенного микронаселения. Однако он трудоемок и не позволяет устанавливать видовох состав наблюдаемых микроорганизмов. При работе этим способом довольно часто получаются значительные отклонения в параллельных определениях, что маскирует происходящую в почве динамику бактерий. Поэтому при санитарных исследованиях почвы метод Виноградского используется редко. [c.561]

Грибы определяли на среде Чапека, бактерии аммонифицирующие в пептон-ной воде, целлюлозоразлагающие на твердой агаризированной среде с нитратом аммония, общее число бактерий на МПА, динитрофикаторы на жидкой среде Гиль-тая, актиномицеты на сусло-агаре, нитрофикаторы на кремнекислом геле по методу Виноградского, азотобактер на агаре Эшби, маслянокислые на МБА + 2,5% глюкозы. Все анализы проведены по методике Всесоюзного института с/х микробиологии. [c.73]

Посев азотобактера производился на среде, содернгавшей в литре 0.2 г двухкалиевого фосфата и 20 г маннита или такое же количество глюкозы. Среда выливалась по методу Виноградского па гель кремнекислоты, посыпанный углекислым кальцием. Посеянные в 60 больших чашках Петри [c.218]

Для ответа на этот вопрос были проведены специальные эксперименты (Егоров, 1960). Из трех образцов почв, взятых в Ботаническом саду и на Звенигородской биологической станции МГУ, были выделены стрептомицеты и обычным методом отобраны наиболее активные штаммы. Штаммы-антагонисты поддерживались на агаризованной синтетической среде. Следовало выяснить возможность развития выделенных штаммов стрептомицетов и образования ими антибиотиков при культивировании их только на веществах тех почв, из которых они были изолированы. С этой целью были проведены три серии опытов 1) выращивание стрептомицетов на водных почвенных вытяжках, полученных по методу Виноградского 2) культивирование изученных штаммов стрептомицетов на водной почвенной вытяжке с добавлением гуматов, вьщеленных из тех же почв 3) культивирование стрептомицетов на поверхности агаровых блочков, приготовленных из выщелоченного агара и дистиллированной воды (агаровые блочки [c.52]

Подсчет клеток на фиксированных окрашенных мазках (метод Виноградского—Брида). Метод широко используется для определения численности микроорганизмов в различных естественных субстратах — почве, загрязненных водах, молоке, в оптически непрозрачных питательных средах, содержащих нерастворимые в воде компоненты, например, крахмал, соевую муку. Преимущество метода заключается также в том, что фиксированные окрашенные препараты хорошо сохраняются, поэтому подсчет можно проводить в удобное для исследователя время. [c.119]

Метод Виноградского в модификации Теппер. В отличие от метода Виноградского Е. 3. Теппер (автор модификации) добавляет к [c.116]

Постановка опыта. За окислением целлюлозы хорошо наблюдать, поставив опыт по методу Виноградского на гелевых пластинах. Для приготовления пластин из кремнекислого геля берут соляную кислоту плотностью (d) 1,9 в высоком цилиндре и разбавляют водой до с/= 1,10, На каждые 500 мл крепкой соляной кислоты можно добавить примерно 500 мл дистиллированной воды. Жидкое стекло (XNa20-9Si02) наливают в другой высокий цилиндр и разводят дистиллированной водой до d = 1,06...1,08. На 500 мл воды можно прилить 100 мл жидкого стекла (можно заменить 35 %-м раствором силиката натрия). Цилиндры и ареометры после разбавления жидкого стекла и кислоты тщательно отмывают. [c.78]

Метод Виноградского в модификацим Шульгиной чаще применяют в лабораторной практике. Сущность его в следуюш,ем. Из средней почвенной пробы (см. 9.1.1) берут 5 г и вносят в колбу Эрленмейера на 250 мл, содержащую 50 м стерильной водопроводной воды. Навеску почвы предварительно растираю в стерильной агатовой или фарфоровой ступке с небольшим количеством стерильной воды. Для черноземных и темно-каштановых почв навеску растирают с 0,1 %-м раство-ром пирофосфата натрия. Затем 5 мин встряхивают и в течение 2...5 с дают осесть грубым частицам. [c.113]

Метод Виноградского в модификации Теппер дает возможность изучить и сукцессию микроорганизмов, участвующих в разложении гумусовых кислот. С этой целью при постановке опыта чашки с гумусо выми кислотами (фульвокислоты или гуминовые кислоты), инфицированные почвенной суспензией (10 ) в многократной повторности, помеи],ают во влажную камеру и в термостат при Z5..2S В разные сроки инкубации (через два, четыре, шесть, восемь и 360 дней) вынимают две параллельные чашки и изучают в них микрофлору. [c.117]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология