Рибофлавин сульфат

При испытании на La toba illus asei его индекс ингибирования составил 85 [112]. К сильным антивитаминам относятся 5 -дезоксирибо-флавин [337] и рибофлавин-5 -сульфат [40]. Однако наиболее сильное ингибирование вызывает введение в изоаллоксазиновую молекулу аминогруппы [115, 172, 3381 8-амино- и 8-рибитиламиноноррибофлавин имеют индекс ингибирования 32 и 9 соответственно [1121. [c.548]

Высокий выход рибофлавина у Е. ashbyii коррелирует с азотом пуринов и другими азотистыми источниками, содержание которых должно быть достаточным. В качестве источников углерода применяют глюкозу или сахарозу, практикуют использование дрожжевого и кукурузного экстрактов, соевой муки, масла (жира). Жидкие питательные среды для получения инокулюма и для основной ферментации могут несколько различаться между собой. Например, для получения посевного материала известна среда, содержащая сахарозу, пептон, кукурузный экстракт, калия дигид-рофосфат, магния сульфат, подсолнечное масло, время выращивания продуцента на этой среде — 2 суток при 27—30°С (в зависимости от штамма). Ферментационная среда обычно включает кукурузную и соевую муку, сахарозу, кукурузный экстракт, калия [c.452]

Колонку (0,8X40 см) заполняют биокларом G, суспендированным в минимальном количестве деионизованной воды. Образец, содержащий витамин B12 (красный), рибофлавин (желтый) и лощадиный цитохром с (оранжевый), наносят на колонку, а затем элюируют водой. Витамин В12 появляется в элюате через 5 мин и полностью вымывается через 7 мин, рибофлавин следует за витамином В12, его элюирование заканчивается на 14 минуте. В этот момент водный слой над слоем адсорбента заменяют 1%-ным раствором сульфата натрия. Через 3 мин на выходе из колонки появляется цитохром с, который полностью элюируется за 8 мин [40]. [c.189]

Ясно, что все ранее сказанное относительно необходимой тщательности работы в полной мере относится к измерениям интенсивности флуоресценции тиохрома. Как и для рибофлавина, предложены стеклянные стандарты [38] один для дозировки растворов, содержащих 0,5 у мл, другой для растворов концентрации 1,0 у мл. Метод с успехом применяется для определения витамина В в биологических наздкостях. Работа Сток [39] посвящена уточнению методики определения витамина В при использовании для измерений интенсивности свечения фотоэлектрического фотометра. Рекомендуется готовить стандартный раствор из сульфата хинина. Подчеркивается необходимость учитывать склонность крис- [c.204]

В промежуточно образующемся ангидриде. В качестве нуклеофильных реагентов подходят карбоновые кислоты, аминокислоты, пептиды, сульфаты, фосфаты, фосфиты, пирофосфаты, трифосфаты, рибофлавин-5 -фосфат, фосфаты сахаров и пантотеин-4 -фосфат. Для этих реакций применима формальная аналогия с ферментативными синтезами смешанных ангидридов нуклеотидов из нуклео-зид-5 -трифосфатов и моноэфиров фосфорной кислоты (или других кислот), т. е. дифенилфосфатная группа химически эквивалентна нирофосфатному остатку, который используется в биологических системах. [c.331]

Смит и Метцлер [107] изучали фотохимическое разложение рибофлавина на пластинках с силикагелем G с двумя следующими системами растворителей бутанол—этанол—вода (7 2 1) и вода, насыщенная нзоамиловым спиртом. Разделенные соединения обнаруживали благодаря их флуоресценции синего или желто-зеленого цвета в УФ-свете. Тредуэлл и Метцлер [108] разработали методику обнаружения флавина в тканях растений в количествах до 0,2 нг. Пробу ткани экстрагируют раствором сульфата аммония, отделяют осадок центрифугированием и вводят его в колонку с резорцинформальдегидной смолой, чтобы отделить флавины от солей, остаточных белков и некоторых пигментов промывкой водой при введении экстракта в колонку и последующей промывке флавиновые нуклеотиды проходят через смолу [109]. Элюированные смесью ацетона с водой флавины вводят затем в водном растворе в сухую колонку с тальком с тем, чтобы извлечь большую часть нефла-виновых пигментов смесью ацетон—вода (1 9). Из этой колонки флавины элюируют смесью ацетон—вода (1 1) и наносят на слой силикагеля. Авторы работы [108] использовали для разделения флавинов на силикагеле 10 растворителей. [c.423]

Плиммер и сотр. [29, 30] изучали разложение амитрола в системах, где образуются свободные радикалы, т. е. они продолжили исследования [18, 19] по разложению амитрола под действием света в присутствии рибофлавина. Оказалось, что углерод в положении 5 дает углекислый газ, а углерод в положении 3— цианамид и мочёвину [30]. В присутствии реактива Фентона при разложении амитрола образовывались те же самые продукты. Но в присутствии реактива Кастельфранко и сотр. [19], состоящего из аскорбиновой кислоты, сульфата меди и молекулярного кислорода [30], выделения СОг не наблюдалось, хотя амитрол и разлагался. Плиммер и сотр. [30] пришли к выводу, что рибофлавин (и свет) или реактив Фентона ускоряют окисление амитрола, которое приводит с раскрытию цикла и образованию СОг, мочевины, цианамида, а возможно, и молекулярного азота [схема (2)]. Реактив, содержащий медь и аскорбиновую кислоту, очевидно, восстанавли- [c.186]

При заболеваниях, сопровождающихся увеличением желчеотделения, может увеличиться элиминация лекарств и их метаболитов с желчью. Изменения метаболизма лекарств и их экскреции с желчью могут происходить и при нормально функционирующих печени и желчевыводящих путей. Состав пищи влияет на гепатобилиарную элиминацию препаратов. Употребление в пищу некоторых белковых продуктов, таких как яичный желток, молоко, мясо и др., вследствие повышения желчевыделения может усилить выделение лекарств с желчью. Аналогично действуют и пилокарпин, питуитрин, сульфат магния. Препараты (салицилаты, рибофлавин) приводят к такому же эффекту за счет усиления секреторной функции печени. [c.241]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология