Вирус лейкемии

Как уже говорилось (разд. 3.5.5), локусы главного комплекса гистосовместимости (МНС) расположены в хромосоме 6 человека и гомологичны генам комплекса Н2 мыши [113]. Иммунизация инбредных линий мышей разными, явно неродственными антигенами (синтетическими полипептидами, сывороточными белками, антигенами клеточных поверхностей) индуцирует высокие уровни антител в одних линиях и низкие уровни (или отсутствие ответа) в других. Количество индуцированных антител контролируется локусами иммунного ответа (1г), которые являются частью комплекса Н2. Заражение мышей вирусом лейкемии вызывает рак, более легкий в одних линиях, чем в других [766]. Эти различия контролируются генами, которые, подобно генам 1г, относятся к комплексу Н2 [741 740 765 783]. Позже было продемонстрировано сцепление комплекса Н2 с генетическими факторами предрасположения к аутоиммунному тиреоидиту мышей [859] и восприимчивости к лимфоцитарному вирусу хориоменингита. [c.267]

В течение нескольких лет предполагали, что в трансформации каким-то образом участвует синтез ДНК. Было показано, что клетки, обработанные специфическими ингибиторами синтеза ДНК и зараженные вирусами лейкемии, могут обеспечивать про- [c.260]

Кошки Вирус лейкемии [c.110]

Рис. 14.43. Молекулярные векторы ретровирусов на основе провирусной ДНК вируса лейкемии мышей,

Микроинъекцию клонированных генов проводят в один или оба пронуклеуса только что оплодотворенной яйцеклетки мыши. После инъекции яйцеклетку немедленно имплантируют в яйцевод приемной матери или дают возможность развиваться в культуре до стадии бластоцисты, после чего имплантируют в матку. Таким образом были инъецированы гены интерферона и инсулина человека, ген глобина кролика, ген тимидинкиназного вируса герпеса и кДНК вируса лейкемии мышей. Выживает обычно от 10 до 30 % яйцеклеток, а доля мышей, родившихся из трансформированных яйцеклеток, составляет от нескольких до 40 %. [c.127]

Очень сходная картина была получена для белков вирусов лейкемии Френда у мыгпей 147). [c.86]

ДНК липосомами, тенями эритроцитов или протопластами) г) физический (с помощью микроинъекций или электропорации). Метод слияния развит в настоящее время недостаточно хорошо. Микроинъекции ДНК использовали во многих экспериментах в биологии развития позвоночных [535], но при этом, как правило, нужно вводить очень большое и трудно контролируемое количество материала. В настоящее время наиболее перспективным представляется перенос, связанный с использованием ретровирусов единичные копии можно включить в один (хотя и случайный участок почти в 100% клеток-мишеней. Кроме того, в этом случае известна структура встраиваемой последовательности. На рис. 9.5 показана одна из используемых систем-вирус Молони (вирус лейкемии мышей). На рис. 9.6 представлена схема эксперимента. [c.169]

Некоторые PHК-содержащие вирусы животных вызывают опухоли. К ним относится вирус саркомы Рауса и группа вирусов, вызывающих лейкемию у мь1шей. Последние для нас очень интересны, поскольку и у людей, больных лейкемией, обнаруживают вирусные частицы, так называемые С-частицы, очень напоминающие вирусы лейкемии мыши. Поведение этих РНК-содержащих опухолеродных вирусов, и вирусов, содержащих ДНК, например вируса полиомы, практически одинаково. Попав в клетку, они либо производят многочисленное потомство и вызывают гибель клетки, либо трансформируют нормальную клетку в раковую. [c.260]

Еще одним подходом, дающим надежду на увеличение эффективности переноса генов, является использование в качестве векторов ретровирусов. Основное преимущество этих векторов заключается в том, что они способны эффективно инфицировать большое число различных клеточных типов. Общий вид вирусного вектора, используемого для трансгеноза, изображен на рис. 66. Ретровирусные векторы обеспечивают интеграцию единичной копии трансгена в эмбрионы на разных стадиях развития. Первые эксперименты, продемонстрировавшие внедрение и наследование у мышей экзогенно введенного мышиного вируса лейкемии Молони (MoMLTV), были проведены еще в середине 70-х годов прошлого века Енишем с сотрудниками [c.191]

Равновесное центрифугирование в градиенте плотности солей тяжелых металлов широко применяется при очистке и фракционировании многих вирусов Этот метод был использован для очистки вируса ящура [179, 809], европейской чумы свиней [418], полиовирусов [502,657], E HO 349], риновирусов [252], реовирусов [322, 722], оспы 449], полиомы [854], герпеса [199], гриппа [181] Однако следует отметить, что равновесное центрифугирование в градиенте плотности s l не всегда применимо для очистки вирусов Это обусловлено прежде всего тем, что он оказывает инактивирующее действие на некоторые вирусы животных, в частности на вирусы лейкемии и некоторые миксовирусы [49, 690]. [c.68]

Мак Комбс с сотр, [556] использовали миллипоровые фильтры при изучении ультраструктуры клеточной куль-туры и вирусов. Клетки тканевой культуры адсорбируют или выращивают на миллипоровых фильтрах. Затем ультрафильтр заливают в аралдит и обрабатывают ацетоном в результате чего он становится прозрачным. Это создает удобство для выбора, резки и ориентации исследуемого образца под световым микроскопом. Миллипоровые фильтры позволяют также исследовать электронномикроскопически неочищенные суспензии вирусов с количеством частиц порядка 4 10 в 1 мл. При помощи адсорбции на ультрафильтрах были исследованы in vitro неочищенный вирус вакцины, очищенные вирусы лейкемии мышей Раушера и сателлиты аденовирусов. [c.85]

Это метод был впервые применен для извлечения инфекционной РНК из вируса карликовости томатов [699], Кроме того, его использовали для выделения РНК из вируса ящура [233], полиовируса [627], реовируса типа 2 512], гриппа [140, 663, 664], Синдбис [468], Менго [720], везикулярного стоматита [175] и вирусов лейкемий [353], а также ДНК из вируса вакцины [190] и полиомы [855]. [c.162]

Миксовирусы, вирусы лейкемии, осин и некоторые другие имеют довольно сложное строение. Нуклеиновая кислота у них образует с белками комплекс, так называемый внутренний нуклеонротеид. Для таких вирусов возможно выделение нуклеиновой кислоты или белка непосредствен-но из внутреннего нуклеопротеида. Такой подход к изучению комдонентов вирусной частицы имеет то преимущество, что дает возможность достичь более высокой степени очистки нуклеопротеида, чем цельной вирусной частицы. [c.173]

Использовать в качестве молекулярного вектора герпесвирус кошек (FHV) попытались Г. Коль с соавторами (1990 г.). В ген тимидинкиназы FHV рекомбинационно встраивали либо ген env, либо ген gag вируса лейкемии кошек (FeLV), объединенный с ранним промотором цитомегаловируса человека. Клетки, инфицированные гибридными вариантами FHV, продуцировали соответствующие чужеродные белки. Заражение кошек гибридами приводило к формированию в их организме иммунного ответа на синтезируемые белки FeLV. Таким образом, герпесвирус юшек можно рассматривать как основу для создания живых поливалентных вакцин против ряда инфекционных заболеваний этих животных. [c.388]

Для упрощения экспериментальной работы с дефектными гибридными ДНК вируса лейкемии мьш1ей Д. Балтимор с соавторами (1983 г) сконструировали линии клеток, комплементирующих /иранс-функции данного вируса. При этом был реализован более простой подход по сравнению с использованным при создании линий ВЗ и СЗ для вируса некроза селезенки. В молекуле ДНК клонированного в плазмиде провируса Mo-MLV делетировали фрагмент [c.405]

Рис. 14.42. Стратегии получения линий клеток а-в), продуцирующих вирус лейкемии мышей, у которого часть капсидов содержит гибридные последовательности MLVTK или MLVKT.

Рис. 14.45. Гибридные провирусы на основе вируса лейкемии мышей Молони.

Рис. 14.47. Схема функционирования самоинактивирующегося ретровирусного молекулярного вектора на основе провирусной ДНК вируса лейкемии мышей Молони

Справочник химика 21

Химия и химическая технология