Питательные среды и методы выделения чистых культур

Бактериологический метод. Выделение чистой культуры микоплазм является наиболее точным способом подтверждения диагноза. Микоплазмы относят к прихотливым бактериям. Для их культивирования используют питательные среды с добавлением лошадиной сыворотки (источник холестерина) и дрожжевого экстракта (источник компонентов для синтеза нуклеиновых кислот). [c.251]

Питательные среды и методы выделения чистых культур [c.6]

Бактериологическое исследование основано на культивировании бактерий на питательных средах, выделении чистой культуры возбудителя и ее идентификации. Чистой культурой называют популяцию микроорганизмов одного вида, как правило выращенную из изолированной колонии на плотной питательной среде. Разрешающая способность метода составляет в среднем 1000 клеток в 1 мл. [c.25]

Выбор метода культивирования, состава питательной среды зависит главным образом от типа питания и дыхания (биологического окисления) микроорганизмов. На рис. 6 (цв. вклейка) показан наиболее распространенный способ посева исследуемого материала с целью выделения чистой культуры механическое [c.25]

Основным методом лабораторной диагностики спирохетозов является бактериоскопическое исследование мазков крови или нативных препаратов в темном поле, а риккетсиозов — серодиагностика, поскольку бактериоскопия крови не дает положительных результатов, а выделение чистых культур на искусственных питательных средах невозможно. [c.216]

Особые трудности возникают при выделении чистых культур облигатных анаэробов. Если контакт с молекулярным кислородом не вызывает сразу же гибели клеток, то посев проводят на поверхность среды в чашки Петри, но после посева чашки тотчас помещают в анаэростат. Однако чаще пользуются методом разведения. Сущность его заключается в том, что разведения накопительной культуры проводят в расплавленной и охлажденной до 45—50 агаризованной питательной среде. Делают 6—10 последовательных разведений. Затем среду в пробирках быстро охлаждают и заливают поверхность слоем стерильной смеси парафина и вазелинового масла (соотношение 3 1), что препятствует проникновению воздуха в толщу агаризованной среды. [c.77]

Для выделения чистых культур микробов из материалов, содержащих обильную смешанную микрофлору, предложено много различных методов. Наибольшее распространение получил метод механического разъединения микроорганизмов, находящихся в исследуемом материале, с целью получения изолированных колоний на поверхности или в глубине питательной среды. [c.52]

Микробиологический диагноз заболеваний, вызванных стафилококками. В лаборатории для диагностики стафилококковых заболеваний используют бактериологический метод исследования — посев патологического материала на питательные среды с последующим выделением чистой культуры и изучением свойств, характеризующих ее патогенность. [c.165]

Для размножения любой бактерии (независимо от целей) необходимо обеспечить подходящее биофизическое окружение и биохимические питательные компоненты. В гл. 6 приведены методы контроля таких биофизических факторов, как pH, температура, подача и удаление кислорода, и другие. В гл. 7 рассмотрены потребности в питательных веществах, состав синтетических и комплексных сред и количественные определения роста бактерий. Умелое обращение с биофизическими, биохимическими и биологическими факторами приобретает особую важность в получении накопительных культур и последующего выделения бактерий в виде чистой культуры (гл. 8). [c.163]

Для выделения бактерий в виде чистых культур известно сравнительно мало методов. Чаще всего это делают путем изолирования отдельных клеток на твердой питательной среде, используя метод посева штрихом или разлива по чашкам небольшого количества жидкой культуры. Однако получение отдельной колонии не всегда гарантирует чистоту культуры, поскольку колонии [c.318]

Бактериологический метод, предусматривающий посев исследуемого материала на искусственные питательные среды с целью выделения и идентификации чистой культуры возбудителя, в диагностике туляремии не находит применения. [c.265]

Бактериологическое исследование. Выделение чистой культуры и ее идентификация необходимы для подтверждения диагноза листериоза. Листерии растут на простых питательных средах, но более интенсивный рост отмечается на кровяном агаре или средах, обогащенных глюкозой, глицерином, дрожжевым экстрактом, сывороткой, печеночной тканью. Материал засевают на плотные среды. Для подавления роста сопутствующих микроорганизмов используют специально разработанные селективные среды с антибиотиками и/или красителями, хлоридом лития, фенилэтано-лом (агары Оксфордский, PAL САМ яла др.). Те же добавки используют в составе бульонных сред для обогащения исследуемого материала (накопление листерий ведут при 30 °С в течение 24 — 48 ч). Иногда используется также метод холодового обогащения (материал выдерживают при 4 °С в течение 10 — 50 сут). Посевы на плотных средах инкубируют при 37 С до 7 сут. [c.179]

Бартонеллы выделяют из исследуемого материала при посеве на специальные полужидкие и плотные питательные среды с добавлением гемина, 5—10% крови человека или животных (барана, кролика). Посевы инкубируют во влажной атмосфере с 5 — 10 % СОз при 35 — 37 °С В. ba illifomis — при 21—30 °С). Характерный рост бартонелл проявляется через несколько недель (иногда через 45 — 60 сут). Идентификацию и дифференциацию выделенных чистых культур проводят по характеру и оптимальной температуре роста, подвижности, биохимическим свойствам (каталаза, оксидаза, нитратредуктаза и др.), а также по составу жирных кислот в клетке, определяемому методом газо-жидкостной хроматографии. [c.243]

Выделение чистых культур уксуснокислых бактерий из накопительных обычно производят общепринятыми методами на двух агаризованных средах дрожжевой воде с 3 % глюкозы и с 3 % этанола. В обе среды добавляют 0,5 % СаСОз. После семи суток инкубирования посевов отбирают колонии на среде с глюкозой с отчетливыми зонами растворения мела вследствие образования глюконовой кислоты, на среде с этанолом — с белым диффузным ореолом, возникающим в результате вторичного образования СаСОз ввиду окисления бактериями Са-ацетата. Посевы из отобранных колоний производят на те же жидкие или агаризован-ные питательные среды если с глюкозой, то с добавлением СаСОз, если со спиртом, то без мела. Известны и другие относительно простые методы выделения уксуснокислых бактерий. [c.481]

Вьщеление микроорганизмов, важньк для гидрометаллургии, проводят путем высева соответствующих проб руды или растворов на питательные среды. Таким путем получают накопительные культуры. Даже при использовании элективньк сред накопительные культуры помимо выделяемых микроорганизмов содержат и другие виды. Поэтому выделение чистых культур зачастую представляет значительные затруднения. Ниже приводятся методы получения как накопительных, так и чистых культур те-рий, наиболее перспективных для использования в гидрометаллургии. [c.51]

Схема микробиологического исследования на стрептококки. В основу лабораторной диагностики стрептококковых заболеваний положен бактериологический метод исследования — посев патологического материала на питательные среды с последующим выделением чистой культуры стрептокок-iia, определением ее серологической группы по Ленсфилд, а при эпидемиологических исследованиях — типиронанием штаммов, относящихся к группе А. [c.176]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология