Культуры накопительные

При выделении чистых культур аэробных микроорганизмов высев из накопительной культуры проводят на поверхность Плотной среды. Нанесенную каплю накопительной культуры (или из соответствующего разведения ее) осторожно распределяют стерильным стеклянным шпателем по поверхности плотной среды, после чего этим же шпателем протирают поверхность среды последующих 3—4 чашек. [c.78]

Особенно тщательно изучен процесс получения куминовой кислоты из п-цимола. С помощью накопительных культур из почвы были выделены пять штаммов, близкие к Ps.desmolyti a. Все они ассимилировали п-цимол и кумол. Один из них рос также на п-ксилоле, толуоле и этилбензоле. При росте на среде с п-цимолом все пять культур накапливали куминовую кислоту, причем наиболее продуктивный штамм в довольно большом количестве - до 1г/л через 24 часа культивирования. [c.115]

Для получения накопительной культуры термофильных целлюлозоразлагающих бактерий можно пользоваться питательной средой следующего состава (в г на 1 л водопроводной воды) [c.103]

В накопительных культурах сульфатвосстанавливающих бактерий (СЕВ),, выделенных из пластовых вод месторождений нефти Азербайджана, происходиг ускорение процесса коррозии углеродистых сталей в результате воздействия биогенного сероводорода. [c.26]

Для ингибирования бактериальной коррозии, стимулируемой накопительными культурами СВБ, и подавления жизнедеятельности последних разработаны методы защиты с применением ингибиторов-бактерицидов из классов нитропарафинов, селенсодержащих би- и тетрациклических органических соединений, вводимых в интервале концентраций 0,1...0,2 г/л. При этом практически полностью предотвращается образование сероводорода. [c.89]

Из активного ила и осадков сточных вод нефтехимических производств были получены накопительные культуры сульфатвосстанавливающих (СВБ) и денитрифицирующих (ДБ) бактерий. [c.52]

В результате последовательных пассажей накопительных культур были получены 11 устойчивых анаэробных консорциума, способных к деструкции бензойной кислоты до 500 мг/л. [c.52]

В качестве объекта следует воспользоваться накопительной культурой маслянокислых бактерий. Ее получают таким образом за 3—4 суток до занятий в пробирки помещают мелконарезанный картофель с шелухой (7з пробирки), на кончике ножа вносят мел и заливают доверху водопроводной водой. Пробирки помещают в водяную баню и нагревают при 70°С в течение 10 мин, затем охлаждают и ставят в термостат при 30°С. [c.52]

Высев из накопительной культуры микроорганизмов, относящихся к факультативным аэробам или факультативным анаэробам, для получения изолированных колоний проводят методом глубинного посева. [c.78]

Для получения накопительной культуры среды после хорошего встряхивания (взбалтывания) разливают по 30 мл в эрленмейеровские колбы емкостью 100 мл, заражают небольшим количеством почвы (четверть чайной ложки) и ставят в термостат при температуре 25—30°С. Спустя 7 дней (а иногда 14 или 21 день) в среде для первой фазы нитрификации появляется азотистая, а в среде для второй — азотная кислота. После исчезновения аммиака (для первой фазы) и азотистой кислоты (для второй фазы) опыт заканчивают. [c.118]

Для знакомства с фотоавтотрофными бактериями из накопительной культуры готовят препарат в раздавлен-ной капле и просматривают его с иммерсионной системой объектива. В подвижных клетках серобактерий просматриваются включения серы. [c.132]

Из образовавшегося сгустка вновь делают пересев в стерильное молоко и снова выдерживают в термостате при 37—40°С (таких посевов можно сделать 3—4). Постепенно ацидофильная палочка, образуя молочную кислоту и получив оптимальные условия для развития, подавляет развитие гнилостных бактерий, содержащихся в кале. Такую накопительную культуру ацидофильной палочки высевают на плотную питательную среду и [c.208]

Бактериологическое исследование. Материал засевают на специальные плотные среды непосредственно или из транспортной, накопительной среды. Для выделения чистых культур используют анаэробный кровяной агар, обогащенные среды с настоем мозга и факторами роста и/или селективные среды (анаэробный кровяной агар с желчью и канамицином). Посевы инкубируют при 37 °С [c.183]

Получение накопительной культуры. Накопительные культуры сульфатвосстанавливающих бактерий получают путем засева образцами природного материала жидкой среды В с лактатом или среды Виддаля и Пфеннига с ацетатом (или другими субстратами). Почернение среды и появление запаха сероводорода в процессе инкубации указывают на рост этих бактерий. Для получения активной накопительной культуры следует сделать ряд последовательных пересевов на жидкие питательные среды 2-4-суточным посевным материалом, лучше из осадка, так как здесь, как правило, наблюдается скопление сульфатвосстанавливающих бактерий. Посевной материал берут в количестве 2—4% по объему. [c.61]

Получение накопительной культуры. Накопительные культуры бактерий, выщелачивающих марганец, получают на среде Бромфильда (№ 20), содержащей 5—10 г/л глюкозы или сахарозы. Питательную среду засевают пробами марганцевых руд, отходами обогащения и тд. [c.62]

Получение накопительной культуры. Накопительную культуру B.mu ilaginosus получают посевом водных суспензий образцов почв и горных пород на жидкую среду Эшби (N 27). Для облегчения вьщеления чистой культуры суспензию образца в стерильной водопроводной воде прогревают в течение 10 мин при 80°С на водяной бане, затем быстро охлаждают и используют для посева. [c.64]

Накопительную культуру сульфатвосстанавливающих бактерий (СВБ) получали аналогичным образом в элективной питательной среде Постгейта "С". Проявление роста СВБ в виде почернения среды за счет выделения сероводорода и образования сульфида [c.139]

Чистой культурой бактерий называют культуру, полученную из одной клетки. Она необходима для изучения морфологических, физиологических особенностей организма и для установления видовой принадлежности (для таксономии). С этой целью сначала из различных мест обитания необходимо получить накопительную культуру, в которой преобладают представители данной группы микроорганизмов. Для этого создак т элективные (избирательные) условия среды, обеспечивающие преимущественное развитие выделяемых микроорганизмов. [c.78]

Поиск штаммов, деградирующих ДБТ и 4,6-ДМДБТ, осуществляли двумя методами с использованием накопительных культур, выделенных из почв, загрязненных нефтепродуктами, и скрининг среди штаммов из лабораторной коллекции микроорганизмов [c.125]

В качестве первого шага исследований необходимо было выделить микроорганизмы фенолдеструкторы. Микроорганизмы для деструкции фенола были выделены из стоков коксохимического и нефтехимического производства обычными методами ступенчатой селекции (накопительной культуры) путем выращивания популяции в колбах на качалке на минеральной среде с фенолом с постепенным повышением его концентрации в среде культивирования. В результате первоначально были получены два консорциума микроорганизмов с доминированием дрожжей (при pH 5,0) и с доминированием бактерий (при pH 7,0). Эти изоляты были способны разлагать фенол в аэробных условиях при выращивании в колбах на качалке при концентрации фенола 2 г/л в среде с минеральными компонентами питания при 28-32°С менее чем за 20 ч. [c.231]

Модельное сообщество микроорганизмов создавали смешиванием в равном соотношении накопительных культур углеводородоокисляющих, сульфатвосстанавливающих и гетеротрофных бактерий. [c.139]

Образцы стерилизовали 6 %-ным раствором перекиси водорода в течение 6 ч, 2 раза отмывали стерильной водой, вводили в ячейку из оргстекла размером 210x250 мм с плотно пригнанной крышкой и фиксировали в ней двойными манжетами из вакуумной резины, обеспечивающими герметичность соединений. Ячейку также предварительно стерилизовали раствором перекиси водорода. После сборки ячейку стерильно заполняли средой Постгейта и инокулировали накопительной культурой сульфат-редуцирующих бактерий, выделенной из грунта траншей трубопровода, проложенного в дерновоподзолистой почве на севере Европейской части СССР. Каждые 4 дня 3/4 культуральной среды стерильно заменяли свежей средой Постгейта. Культуры сульфатредуцирующих бактерий выращивали при температуре 299-291 К. В указанных условиях концентрация свободного сероводорода составляла в среднем 19 мг/л, что соответствовало [c.27]

На основании полученных данных можно определить количество газа, выделяющегося при изотермической выдержке кокса в накопительной камере УСТК. За 40 мин потеря массы кокса в результате вьщеления летучих веществ составит 0,46-0,55%, объем газа 13,5-30,5 м т кокса следующего состава,% (объемные доли) водород 75-92, азот 2-13, оксид углерода 3,5-11. Такое снижение выхода валового кокса объективно обусловлено процессами, протекающими в коксе при его изотермической выдержке и не связано с техническим состоянием УСТК и технологической культурой его эксплуатации. [c.95]

Таким обр ом, уменьшение выхода валового кокса и образование избыточного теплоносителя обусловлены не только угаром" кокса, но и процессами уплотнения его структуры при изотермической выдержке и частично при охлаждении. Потери кокса, в отличие от угара, не связаны с техническим состоянием и культурой эксплуатации УСТК и зависят от скорости, конечной температуры коксования и времени изотермической выдержки кокса в накопительной камере. [c.99]

Внесение клеток микроорганизмов или какого-либо Исследуемого материала (образца почвы, пробы воды) в стерильную питательную среду для получения чистой Или накопительной культуры называется посевом. Перенесение уже выращенных клеток из одной среды в другую (стерильную) называется пересевом, или пассированием (лат. passus — чередование). [c.20]

Чистая культура из накопительной может быть получена ИЛ1И из одной клетки, или из отдельной колонии. В последнем случае из накопительной культуры или после ее разведения делают высев на плотную среду по методу Коха. [c.78]

Накопительную культуру разводят в стерильной среде с расчетом, чтобы в одной капле были единичные клетки Затем на поверхности стерильного покровного стекла готовят висячую каллю, нанося ее на стекло стальным пером, и микроскопируют ее. При этом отмечают висячую каплю, в которой обнаружена только одна клетка, и помещают ее в стерильную чашку Петри, на дне которой находится увлажненная фильтровальная бумага. После 12—24-часовой инкубации в термостате отмеченный препарат микроскопируют. Если в капле произошло размножение клетки, ее осторожно снимают с покровного стекла кусочком стерильной фильтровальной бумаги и переносят в пробирку со стерильной жидкой средой. [c.79]

В накопительной культуре термофильных целлюло зоразлагающих бактерий чаще всего выявляются длинные крупные палочки с грушевидной опорой иа (конце — lostridium dissolvens. [c.104]

После 4—6-дневной инкубации опыт снимают. Для знакомства с микроорганизмами, окисляющими углеводороды, из накопительной культуры готовят фиксированный и окрашенный препарат. Углеводороды хорошо окисляют представители микобактерий (Мусор1апа Ьи-Ша), АгШгоЬас1ег и нокардии. [c.109]

Материалы и оборудование. При постановке опыта основная жидкая питательная среда для накопительний культуры без источника углерода, склянка с керосином или вазелиновым маслом, почвенный образец, колбы на 250 и 100 мл, цилиндр иа 100 мл, алюминиевая чанная ложка, вата для пробок, пипетки моровские на 1 мл. [c.109]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистых культур материал засевают на плотные среды для анаэробов (непосредственно или из транспортной, накопительной среды). На кровяном анаэробном агаре (с кроличьей кровью) превотеллы образуют сухие или блестящие колонии, которые дают красное свечение при УФО, а с 5 —7-го дня у них появляется пигментирован-ность (от светло-коричневого до черного цвета). Коричнево-чер- [c.185]

При снятии опыта-, микроскопы и все необходимое для микро скопировання, колбы с накопительными культурами. [c.109]

Для получения накопительной культуры фотоавтотрофнык серобактерий среда Ван-Ниля, склянки с притертыми пробками, илы из разных водоемов. [c.132]

Для получения накопительной культуры суль-фатредуцирующих бактерий можно использовать жид ую среду Ван-Дель- [c.133]

Для получения накопительной культуры Leptothrix rassa по Виноградскому в высокий стеклянный цилиндр вносят небольшое количество сена, свежеосажденный гидрат окиси железа Ре(ОН)з и немного ила в качестве инокулята, затем цилиндр заполняют водопроводной водой или водой исследуемого водоема и оставляют при комнатной температуре. [c.138]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология