Агар кровяной

Бактериологическое исследование. Выделение чистой культуры и ее идентификация необходимы для подтверждения диагноза листериоза. Листерии растут на простых питательных средах, но более интенсивный рост отмечается на кровяном агаре или средах, обогащенных глюкозой, глицерином, дрожжевым экстрактом, сывороткой, печеночной тканью. Материал засевают на плотные среды. Для подавления роста сопутствующих микроорганизмов используют специально разработанные селективные среды с антибиотиками и/или красителями, хлоридом лития, фенилэтано-лом (агары Оксфордский, PAL САМ яла др.). Те же добавки используют в составе бульонных сред для обогащения исследуемого материала (накопление листерий ведут при 30 °С в течение 24 — 48 ч). Иногда используется также метод холодового обогащения (материал выдерживают при 4 °С в течение 10 — 50 сут). Посевы на плотных средах инкубируют при 37 С до 7 сут. [c.179]

Культивирование грибов осуществляют, как правило, при 22 — 28 °С Б течение 2 — 4 нед. Если грибы оказываются в смешанных культурах, их чистьте культуры получают после рассевов до изолированных колоний на кровяном агаре или после обработки соляной кислотой (для уничтожения бактерий). В последнем случае культуру гриба засевают в 3 пробирки с 5 мл бульона Сабуро с глюкозой, в которые добавляют 4, 2 и 1 каплю 1 N раствора НС1 соответственно. Через 24 —48 ч инкубирования при 25 °С по 0,1 мл бульона рассевают на агаре Сабуро с глюкозой. [c.317]

Бактериологическое исследование. Гной, отделяемое слизистой оболочки, мочу, мокроту, спинномозговую жидкость сеют в чашку Петри с 5%-м кровяным агаром (лучше использовать дефибрини-рованную баранью кровь) и в пробирку с сахарным бульоном. Для выделения стрептококков из контаминированного материала используют селективные среды (в кровяной агар и среду накопления вводят антибиотики — колистин, налидиксовую кислоту, которые подавляют рост сопутствующих микроорганизмов). Хотя стрептококки дают рост на воздухе, посевы лучше инкубировать в анаэробной атмосфере при 37 °С. Инкубация в атмосфере СО2 стимулирует рост бета-гемолитических стрептококков, не относящихся к группе А. С этими целями применяют анаэростат или эксикатор с горящей свечой. [c.110]

Исследование крови. Посев крови в сахарный бульон или специальную среду для выделения гемокультур стафилококков производят так же, как при стафилококковых заболеваниях. При наличии стрептококка на дне флакона появляется хлопьевидный придонный осадок. В мазках обнаруживаются длинные цепочки стрептококков. Микроскопия позволяет дать предварительный ответ о наличии или отсутствии стрептококка. Для вьщеления чистой культуры и определения характера гемолиза делают пересев в чашку с кровяным агаром. Через сутки (3-й день исследования) появляются типичные мелкие колонии, окруженные зоной гемолиза. Дальнейшие этапы исследования описаны выше. [c.112]

В качестве примеров синерезиса можно указать на хорошо всем известное явление сжатия свернувшегося молока с выделением сыворотки ( отсекание сыворотки), а также на образование кровяного сгустка. Явление синерезиса наблюдается у самых разнообразных лиогелей студни агар-агара, крахмала, желатина. [c.277]

Для определения каталазы на поверхность 24-часовой культуры на скошенном агаре наливают 0,5— 1,0 мл 3%-го раствора перекиси водорода (нельзя использовать кровяной агар, так как катал аза эритроцитов может дать ложноположительную реакцию). Появление пузырьков газа расценивают как положительную реакцию. В качестве контроля следует параллельно исследовать культуру, заведомо содержащую каталазу. [c.33]

Бактериологическое исследование. В 1 -й день исследования петлей или шпателем материал засевают в чашки с 5%-м кровяным, а также желточно- или молочно-солевым агаром, которые инкубируют 18 — 24 ч при 37 °С и столько же на свету при комнатной температуре (для более четкого пигментирования колоний). Солевые среды ввиду высокого содержания хлорида натрия являются селективными для стафилококков, рост большинства сопутствующих микроорганизмов на них подавляется. [c.105]

Для выделения гемокультуры стафилококков посев крови в сахарном бульоне вьщерживают при 37 °С в течение 18 — 24 ч. Стафилококк вызывает равномерное помутнение среды. На 2-й день (или позже, в зависимости от темпов размножения) из бульонной культуры готовят и микроскопируют окрашенные по Граму мазки, затем пересевают ее на скошенный МПА и в чашку с кровяным агаром для выявления гемолитической активности. На 3-й день получают культуру на скошенном агаре и изучают так же, как культуру, выделенную из гноя или других материалов. [c.107]

При пищевых отравлениях исследуемый материал микроскопируют, затем сеют в чашки с МПА и в бульон, содержащий 1 % глюкозы (для обогащения). Материал, загрязненный сопутствующей микрофлорой, засевают на кровяной агар, содержащий 6 — 7 % хлорида натрия. На такой среде подавляется рост энтеробактерий и бацилл, а стафилококки растут хорошо и проявляют гемолитическую активность. Посевы инкубируют при 37 °С. На следующий день изучают колонии, выделяют и, далее, идентифицируют чистые культуры. Стафилококки, вызывающие пищевые отравления, образуют золотистый, реже белый пигмент, вызывают гемолиз и коагулируют плазму. [c.107]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистой культуры 5 — 10 мл крови сеют в сывороточный бульон (1 часть сыворотки + 3 части МПБ, pH 7,2 —7,4), в сахарный бульон или в специальную среду с дефибринированной кровью лошади и дрожжевым экстрактом. После 18 —24-часовой инкубации материал пересевают на 10%-й кровяной агар в чашку. Спинномозговую жидкость центрифугируют и осадок сеют на кровяной агар. [c.114]

Непосредственный посев материала на питательные среды (мокрота, гной) обычно не дает положительного результата, так как в присутствии сапрофитов, особенно гнилостных микроорганизмов, рост пневмококков подавляется. Поэтому гной и мокроту предварительно обрабатывают (выбирают комочки, растирают их в фарфоровой ступке, добавляя 1 мл ИХН) и для проведения биопробы вводят внутрибрюшинно белым мышам. Они очень чувствительны к пневмококку и погибают от септицемии через 18 — 72 ч. Труп мыши вскрывают, кровь из сердца, кусочки внутренних органов и перитонеальную жидкость сеют в чашку с кровяным агаром и в пробирку с сывороточным бульоном для подращивания. Колонии пневмококка напоминают колонии стрептококка мелкие, почти плоские, непрозрачные, с ореолом зеленого цвета, реже полного гемолиза. Характерно вдавление в центре колонии. [c.114]

Из подозрительных колоний готовят мазки, окрашенные по Граму, и в случае однородности микроорганизмов остаток колонии пересевают для накопления чистой культуры на сектор кровяного агара. [c.115]

Бактериологическое исследование. Биопсийный и другой материал засевают на кровяной агар или основные среды, которые инкубируют при 37 °С в аэробных условиях или в атмосфере с 10 % углекислого газа. В течение 1 — 3 дней на плотных средах появляются мелкие колонии (диаметром 0,1 —0,5 мм). На кровяном агаре они более крупные и диссоциируют на У- и Л-форму типичный гемолиз отсутствует. [c.182]

Бактериологическое исследование. Материал засевают на специальные плотные среды непосредственно или из транспортной, накопительной среды. Для выделения чистых культур используют анаэробный кровяной агар, обогащенные среды с настоем мозга и факторами роста и/или селективные среды (анаэробный кровяной агар с желчью и канамицином). Посевы инкубируют при 37 °С [c.183]

Розовый пигмент на кровяном агаре + [c.206]

Для культивирования жгутиковых, развивающихся в растениях и насекомых, пригодна питательная среда, содержащая 2% пептона и 0,6% Na I, но для некоторых видов необходима добавка крови. Для видов, выделенных из кровососущих насекомых, пригодна NNN-агаровая среда, состоящая из 25—29% крови, 0,6% Na l и 1,4% агара. Кровяные формы жгутиковых следует культивировать в стерильных условиях, так же, как и формы из кровососущих насекомых, применяя антисептическое вскрытие насекомых и используя для посева на среду простейших из их желудка. В тех случаях, когда жгутиковые (в лептомонадной стадии) находятся в среде, загрязненной бактериями, их отделение производится в спирально изогнутых капиллярах по методу Стона и Рейнольдса. Капилляры заполняются водой с пептоном с добавкой пенициллина (100—500 ед. на 1 мл) и стрептомицина (10 —500 ед. на 1 мл.). В нижний конец капилляра засасывается небольшое количество материала, содержащего лепто-монадные стадии, и оставляется в вертикальном положении. Лептомонады передвигаются в жидкой среде кверху по капилляру и, как только пройдут три его витка, освобождаются от бактерий. После этого нижняя часть капилляра, где еще могут находиться бактерии, отламывается, а из верхней части очищенные от бактерий простейшие переносятся с каплями жидкости на стерильную питательную среду. [c.399]

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал засевают на чашки с питательным агаром, кровяным агаром и в пробирку с питательным бульоном. Посевы инкубируют при 37°С в течение 18—20 ч. В бульоне культура Вас. anthra is растет в виде хлопьевидного осадка на агаре вирулентные штаммы образуют колонии в R-форме, имеющие под малым увеличением микроскопа вид львиной гривы или головы медузы . Авирулентные или слабовирулентные бактерии образуют S-формы колоний. [c.208]

Рис. 2.1. Гемолитические реакции стрептококков на кровяном агаре обширные зоны ji-гемолиза вокруг колоний Strepto o us pyogenes (свеТ лые) и небольшие зоны а-гемолиза зеленящих стрептококков (темные)

Материал со среды накопления засевают штрихами (или шпателем) на чашки с кровяным анаэробным агаром, которые поме-ш ают в анаэростат или другие приспособления для культивирования анаэробов и инкубируют при 37 °С 24 ч — 72 ч (метод Цейс-слера). [c.37]

Для посева экссудата, гноя из невскрывшихся абсцессов, флегмон используют МПА или 5%-й кровяной агар, инкубируют при 37 °С в течение 18 — 24 ч, выделяют чистую культуру и проводят ее идентификацию вышеописанными методами. [c.107]

Подозрительные колонии пересевают на кровяной агар или в бульонную среду для накопления чистой культуры и ее дальнейшей идентификации. В ходе идентификации учитывают культу-рально-морфологические особенности культуры, ставят каталаз-ный тест, определяют группу, вид и серовар стрептококка. [c.110]

Бактериологическое исследование. Для выделения энтерококков применяют посевы на 5%-й кровяной агар, а для материалов, контаминированных сопутствующей микрофлорой, — на селективные среды, содержащие азид натрия или антибиотики (колистин, налидиксовую кислоту, цефалексин, азтреонам). Для обогащения материала применяют посев на сахарный бульон (МПБ + + 0,2 % глюкозы). Посевы инкубируют на воздухе при 37 °С 24 — 48 ч. На кровяных средах энтерококки образуют мелкие или средних размеров округлые колонии серо-белого цвета с ровным краем, иногда с зоной р-гемолиза Е. fae alis) или а-гемолиза. На жидкой среде дают диффузное помутнение. [c.115]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистых культур материал засевают на плотные среды для анаэробов (непосредственно или из транспортной, накопительной среды). На кровяном анаэробном агаре (с кроличьей кровью) превотеллы образуют сухие или блестящие колонии, которые дают красное свечение при УФО, а с 5 —7-го дня у них появляется пигментирован-ность (от светло-коричневого до черного цвета). Коричнево-чер- [c.185]

Бактериологическое исследование. Взятый материал засевают на МПА, кровяной агар, МПБ с 3 — 5 % глицерина. Для подавления роста сопутствующей микрофлоры используют селективные среды, содержащие красители — кристаллический фиолетовый (1 200 000), бриллиантовый зеленый (1 1 000 000) и др., а также антибиотики (гентамицин, колистин и др.). Для выделения возбудителя мелиоидоза можно использовать среду МакКонки с добавлением колистина или без него. [c.132]

Характерными признаками возбудителя сапа являются потребность в присутствии глицерина для роста, отсутствие подвижности, способности расти при 42 °С и разжижать желатину, для возбудителя мелиоидоза — биполярность при окраске методом Грама и другими антилиновыми красителями, гемолиз кроличьих эритроцитов на 2%-м кровяном агаре, свертывание молока, окисление лактозы, мальтозы, ксилозы и других сахаров. [c.133]

Бактериологическое исследование. При бактериологической диагностике коклюша и паракоклюша производят посев мокроты методом кашлевых пластинок . Для этого в момент приступа кашля перед ртом больного на расстоянии 8—12 см помещают открытую чашку Петри с питательной средой (картофельно-глицериновый агар по Борде, молочно-кровяной или казеиновоугольный агар) и выдерживают в течение 6 — 8 кашлевых толчков. Чашку закрывают и помещают в термостат при 37 °С. Если кашель отсутствует, отделяемое слизистой оболочки с задней стенки глотки собирают клювовидным тампоном через рот или тампоном через нижние носовые ходы и сеют на чашки с указанными выше питательными средами. При взятии материала следует избегать попадания на тампон материала (микрофлоры) со слизистой оболочки щек, языка, миндалин (для этого используют шпатель). Следует учитывать также, что на сухом ватном тампоне бордетеллы быстро отмирают в результате высушивания и действия токсичных для них компонентов ваты. Если нет возможности немедленно посеять материал, его берут тампоном, смоченным в ИХН. Материал доставляют в лабораторию как можно быстрее и засевают на селективные среды в течение 2 ч после взятия. При посеве взятый тампоном материал тщательно растирают по поверхности агара (от периферии к центру чашки) для получения хорошо изолированных колоний. Такое исследование проводят дваж- [c.134]

Бактериологический и биологический методы исследования. Для окончательного подтверждения диагноза производят посев на питательные среды и заражение животных. Материал сеют в чашки с МПА, в пробирки с МПБ (pH 7,2 —7,6), кровяной агар и помещают в термостат при 37 °С. Контаминированные образцы (материал из внешней среды, от животных, из старых трупов) подвергают обработке для уничтожения вегетативных форм микроорганизмов одним из способов а) прогревают при 63 °С в течение 15 мин б) заливают 95%-м этанолом 1 1 и обрабатывают при комнатной температуре 30 — 60 мин (плотные материалы предварительно эмульгируют в деионизированной воде 1 2). В качестве селективной среды для исследования контаминированных проб можно использовать питательный агар с полимиксином В, лизо-цимом, ЭДТА и ацетатом таллия РЬЕТ-атар). Одновременно с посевами материалом заражают путем подкожного введения двух белых мышей. [c.187]

Бактериологическое и биологическое исследование. После микроскопии материал засевают на специальные жидкие и плотные среды (анаэробный кровяной агар, среда Вильсона —Блера, среда Китта—Тароцци, желточная среда). Для приготовления неселективной среды для клостридий используют в качестве основы агар для бруцелл с 5 % бараньей крови, колумбийский или сердечно-мозговой агары, в которые добавляют дрожжевой экстракт, витамин К и гемин. В качестве селективных сред (для контаминированных образцов) можно использовать анаэробный кровяной агар с добавлением неомицина или фенилэтилового спирта. Перед посевом плотные материал гомогенизируют (растирают в стерильной ступке со средой накопления) и делят на две части, одну из которых прогревают в водяной бане при 80 °С в течение 10 мин (для уничтожения вегетативных клеток сопутствующих микроорганизмов). Обе части материала исследуют одновременно. В качестве альтернативного метода (особенно при подозрении на присутствие термочувствительных штаммов С. perfringens) используют обработку материала этиловым спиртом, к 1,0 мл исследуемого гомогената или экссудата добавляют такое же количество 95%-го этанола и перемешивают их при комнатной температуре в течение 1 ч, после чего этим материалом засевают указанные выше питательные среды. [c.191]

В другом варианте для посева используют обычный анаэробный кровяной агар, но предварительно материал подвергают спиртовой или тепловой обработке для уничтожения вегетативных форм микроорганизмов (при сохранении спор клостридий). Для этого 1 мл материала смешивают с таким же количеством 95%-ГО этанола и в течение 1 ч перемешивают при комнатной температуре, после чего смесь высевают на анаэробный кровяной агар или другие неселективные среды. Прогревание ведут в течение 10 мин при 80 °С с последующим высевом на те же среды. На кровяных средах возбудитель образует негемолитические кремово-желтые или бело-серые колонии размером 2 — 4 мм с мозаичной внутренней структурой, неровными краями и матовой поверхностью. [c.195]

Метод фильтрации основан на способности подвижных кампилобактеров активно проходить через мембраные фильтры с порами диаметром 0,45 — 0,65 мкм. Преимуществом метода является возможность использования неселективных сред (например, применяют кровяной агар). Фильтр укладывают на поверхность плотной среды в чашке, наносят на него 10— 15 капель суспензии фекалий и инкубируют чашку при 37 °С в течение 1 ч, после чего фильтр осторожно снимают, а чашку продолжают инкубировать в микроаэрофильных условиях. Проникшие через фильтр клетки кампилобактеров образуют на поверхности среды колонии. Чувствительность метода невысока (около 10 КОЕ/мл), поэтому его рекомендуют сочетать с посевом на селективные среды или другими методами исследования. [c.220]

О качестве проведенной дезинфекции изделий медицинского назначения судят по отсутствию золотистого стафилококка (S. aureus), синегнойной палочки Р. aeruginosa) и БГКП. Для этого методом смывов исследуют 1 % (не менее 3 — 5 единиц) одновременно обработанных изделий одного наименования. По 0,1 мл смывов, взятых марлевыми салфетками (5x5 см), наносят на поверхность желточно-солевого, кровяного агаров и среды Эндо и инкубируют засеянные чашки при 37 °С. Дезинфекцию считают эффективной, если через 48 ч на чашках не вырастают колонии указанных микроорганизмов. [c.436]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология