Глутатион ртутью

Стандартный раствор для титрования (титрант) представляет собой 0,001 М раствор хлорида ртути(II) 1 мл этого раствора соответствует 0,033 мг сульфгидрила, 0,121 мг цистеина или 0,307 мг глутатиона. [c.349]

Изучению анодных волн в растворах биологически важных органических соединений, особенно веществ, содержащих сульфгидрильные группы, посвящено много работ [9—23] (в частности, цистеина и глутатиона) изучались также производные мочевины [24—27] и тиомочевины [14, 18, 24, 29—34]. Почти во всех случаях анодные волны в растворах этих веществ, вызванные образованием нерастворимых солей со ртутью, осложняются адсорбцией и поэтому не подчиняются выведенным в этой главе уравнениям. Тем не менее анодные волны в растворах этих веществ широко используются в аналитических целях. [c.156]

Совсем недавно Майлс с сотрудниками получили необычную смолу чрезвычайной селективности. Они синтезировали эту смолу меркурированием растворимой в спирте фенолформальдегидной смолы ацетатом двухвалентной ртути, растворенным в этаноле полимерный продукт реакции осаждается в виде желтого порошка, содержащего около 35% ртути. Эта новая смола обладает способностью удалять селективно меркаптаны из водных растворов впоследствии меркаптаны быстро и легко элюируют раствором 2-меркаптоэтанола или сероводорода. Глутатион, цистеин и кофермент А — все задерживаются этой смолой, и нет сомнения, что такие необычные свойства помогут найти ей широкое применение в исследовании биологических жидкостей, не говоря уже о использовании в анализе нефтяных фракций. [c.96]

Имеются доводы в пользу того, что TRH может быть аномалией по отнощению к биосинтезу. Трипептид мог образоваться in vitro из исходных аминокислот и экстрактов гипоталамуса. Его синтез не ингибировался белок-блокирующими антибиотиками, но ингибировался добавлением иодацетамида или хлорида ртути, которые инактивируют больщинство ферментных систем [26]. Можно предположить, что этот синтез можно провести ферментативно с помощью TRH-синтетазы, весьма сходной с глутатион-синтетазой (см. разд. 23.4.2.1). [c.293]

Защита меркаптогруппы цистеина. Для защиты НЗ-грулпы jui-стеина в пептидном синтезе обычно используется S-бензильная группа. Оказалось, однако, что при снятии защиты натрием в жидком аммиаке часто наблюдаются нежелательные побочные реакции. Яиг и сотр. [1, 2) рекомендуют использовать S-бепзилтиометильиую группу, которую можно удалить под действием ацетата ртути в 80% -ной муравьиной кислоте (для подавления образования тиазолидин-4-карбоновой кислоты добавляют этпленглнколь). С применением этой защитной группы был осуществлен синтез аналнт чески чистого глутатиона с почти количественным выходом. [c.517]

Назовем некоторые группы ингибирующих веществ, имеющих широкое значение. В действии многих ферментов важную роль играют атомы тяжелых металлов эти ферменты, естественно, будут инактивировать вещества, действующие на тяжелые металлы, например H N, H2S, азид или окись углерода. Они подавляют, например, дыхание тканей, так как в цитохромоксидазной системе катализ происходит с участием атомов железа и меди. Активность множества ферментов связана с наличием в них сульфгидрильных групп, и поэтому реактивы, влияющие на эти группы, будут характерными ингибиторами. Такие вещества могут алкилировать тиоловые группы, превращать их в меркаптиды или окислять в, дисульфидные. Таковы, соответственно, галоидопроизводные уксусной кислоты, органические соединения ртути, мышьяка или вещества типа окисленного глутатиона (дисульфиды). Некоторые ферменты могут угнетаться очень небольшими количествами солей тяжелых металлов — серебра, меди, ртути, свинца. Предполагают, что атомы металлов соединяются с тио-ловыми или карбоксильными группами. Высокоспецифичными ингибиторами ряда ферментов являются вещества такого типа, как [c.64]

Газохроматографический метод определения ртутноорганических соединений в биологических объектах разработан также в Японии [413а]. В данном случае для связывания пестицидов применяют глутатион, а быстрое хроматографирование соединений, содержащих ртуть, достигается на коротких колонках с ПЭГ. Из неподвижных фаз эффективным оказался ДЭГС. На этой фазе нам удалось разделить метил- и этилмеркурхлорид. Использовали колонку 30 сл X 3 мм, заполненную силанизированным целитом 545 (80—100 меш) с 30% ДЭГС, а хроматографирование веществ проводили при температуре 150—160°. Однако время удерживания фенилмеркурацетата достигало 30 мин. даже при температуре колонки 180°. Менее эффективными были фазы SE-30 и ПЭГ с молекулярным весом 6000. В последнем слзгчае пики исследуемых соединений были ассиметричны, наблюдалось хвостование . [c.146]

Стриккс и Чакраварти описали методику амперометрического титрования для определения меркапто-групп в биологических материалах с использованием этилмеркурхлорида в качестве титранта. Было показано, что этот реагент лучше хлорида ртути(II), так как последний образует комплекс с глутатионом. [c.301]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология