Глицин адсорбция

Первоначально в качестве носителя был использован силикагель [58, 591. Его основной недостаток — нежелательная адсорбция, вызывающая размазывание веществ по колонке и значительные потери. Аналогичное явление наблюдают иногда и при хроматографировании на бумаге. О путях преодоления этих недостатков будет сказано ниже. Теперь же рассмотрим случаи, когда адсорбция, наоборот, способствует разделению веществ. На столбике крахмала с закрепленной на нем водой при использовании бутанола в качестве подвижной фазы аланин хорошо отделяется от глицина. Судя по коэффициентам распределения этих веществ, рассматриваемый случай относится к категории распределительной хроматографии. Однако оказалось, что аланин также хорошо отделяется от глицина при промывании колонки не бутанолом, а водой (рис. 412, а) [16]. Аналогичное явление было обнаружено и в случае другой пары веществ — лейцина и фенилаланина (рис. 412, б) [16]. Даже замена воды 0,1 н. соляной кислотой не ухудшала разделения. Таким образом, в данном случае разделительная способность столбика крахмала в значительной степени обусловлена адсорбцией. [c.449]

Основное возражение против концепции о группах СОО как центрах адсорбции состоит в том, что в этом случае между молекулами красителя были бы сравнительно большие промежутки. Согласно Мизу [20], чаще всего среди аминокислотных остатков в скелете желатины встречаются остатки пролина и глицина, и поэтому весьма маловероятно, чтобы группы СОО следовали [c.320]

В этих экспериментах использовалось свойство глинистых минералов служить концентрирующими агентами в их присутствии локальные коцентрации реагентов возрастали и скорости соответствующих реакций увеличивались. Однако, как отмечалось в гл. П1, адсорбция на глиноземах может иметь и неблагоприятные последствия. Димеризация глицина при участии дицианамида катализируется бентонитом — осадочной породой, содержащей монтмориллонит [75, 104]. В этом случае используется способность монтмориллонита адсорбировать амины [95]. Оказалось, [c.250]

Параллельно изучалась адсорбция глицина на золотом электроде. Концентрация глицина в растворе составляла 2-10 М, что количественно соответствовало максимальной из изученных концентраций глицилглицина 10 М. Установлено, что глицин не адсорбируется на поверхности электрода в кислых растворах. В нейтральных растворах адсорбция незначительна, и максимальное ЗНЯЧвНИв 0тах, отвечающее области потенциалов точки нулевого заряда, не превышает 0,1—0,2 монослоя вытесненного кислорода. [c.44]

В щелочных растворах заполнение поверхности золотого электрода глицином и глицилглицином практически одинаково, 0тах глицина близка к Этах глицилглицина и составляет 0,98 монослоя вытесненного кислорода. Так как концентрации глицилглицина и глицина в растворе эквивалентны, на величину и прочность адсорбции, очевидно, влияют различия в структуре гомологов, т. е. наличие пептидной группы в молекуле глицилглицина, которая может непосредственно участвовать в адсорбции, а также воздейст- [c.44]

Аминокислоты белковых гидролизатов разделяют на колонке 0,9x150 см в две стадии. Вначале 0,2 н. буферным раствором с pH 3,25 элюируют кислые и часть нейтральных аминокислот, а после выхода глицина (250 мл 8 ч 20 мин) насос переключают на подачу второго 0,2 н. буферного раствора с pH 4,25, которым элюируют остальные нейтральные и ароматические аминокислоты (тирозин и фенилаланин). В соответствии с константами диссоциации тирозин и фенилаланин должны элюироваться в меньших объемах их задержка объясняется адсорбцией на матрице ионита. Основные аминокислоты элюируются с большой задержкой, ускорить их выход можно лишь существенным увеличением концентрации буфера. Однако это в свою очередь вызывает дрейф нулевой линии, изменение объема смолы и ряд других отрицательных последствий. Поэтому элюирование заканчивают, а оставшиеся аминокислоты вымывают разбавленным раствором гидроокиси натрия. Вторую половину образца хроматографируют на короткой колонке (15 см) в 0,38 н. буфере с pH 5,28. При этом вначале получают суммарный пик кислых и нейтральных аминокислот, а затем в области между триптофаном и аргинином элюируют основные аминокислоты. При скорости подачи 30 мл/ч и 50 °С общее время анализа составляет 21 ч 30 мин (16 ч 30 мин и 5 ч). Хроматограмма стандартной смеси аминокислот приведена на рис. 32.12. [c.343]

За последние несколько лет разработаны новые методы фракционирования белковых гидролизатов. Среди этих методов самое большое значение имеет метод хроматографического анализа, основанный на неодинаковой способности аминокислот адсорбироваться на поверхности того или иного адсорбента. Так амино-дикарбоновые кислоты (аспарагиновая и глутаминовая) адсорбируются основными адсорбентами, например окисью алюминия [33, 34] или амберлитом Ш-4 [35]. Глутаминовую кислоту можно затем извлечь из адсорбента разбавленной уксусной кислотой, причем аспарагиновая кислота при этих условиях не переходит в раствор. Эту последнюю аминокислоту можно, однако, легко извлечь 0,5 н. раствором едкого натрия [33]. Основные диаминокислоты адсорбируются на поверхности кислых адсорбентов, например кислой окиси алюминия [34], амберлита Щ 100-Н, фенол-формальдегидной смолы [36] или сульфонированных фенольных амберлитов [37]. В процессе извлечения оснований из адсорбентов кислотами происходит реактивирование смолы, которую снова можно использовать для адсорбции [38]. Из фильтрата, содержащего моноаминокислоты, можно удалитв тирозин и фенилаланин, используя их способность адсорбироваться на животном угле [39]. Глицин, серин, треонин и цистеин адсорбируются кислой окисью алюминия после добавления к раствору формальдегида [40]. [c.28]

Шрамм и Примозиг [222] получили адсорбцию на АЬОз, активированном кислотой, путем ослабления основных групп, аминокислот обработкой формальдегидом, в результате чего аминокислота получает заряд при нейтральном pH. В 10%-ном растворе формальдегида основные группы глицина и серина изменяются сильнее, [c.69]

Истинная адсорбция. Вахтель и Кассиди [224—225] применяли активированный уголь для разделения глицина, лейцина, фенилаланина и тирозина с прекрасными выходами, за исключением тирозина и фенилаланина. [c.70]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология