Агар желточный

Желточно-солевой агар (Ж С А). Содержит повышенные концентрации хлорида натрия (8—10%), которые не препятствуют размножению стафилококков, что создает элективность этой среды для данных микробов. Среда дифференцирует стафилококки, продуцирующие лецитовител-лазу, от стафилококков, не выделяющих этот фермент, по [c.45]

Среды, засеянные кровью, выдерживают в термостате в течение 10 сут, производя каждые 2 сут высевы на 5% кровяной агар и желточную среду Чистовича (рец. 63). [c.166]

Стафилококки могут находиться в воздухе операционных перевязочных, родильных палат и других больничных помещений. Для их обнаружения делают посевы воздуха на желточно-солевой агар. [c.108]

Состав сред. Кровяной агар с генциановым фиолетовым 2% питательный агар с 5—10% дефибринированной крови лошади, кролика или барана и генциановый фиолетовый (1 50 ООО). Желточно-солевой агар 2% питательный агар с 10% хлорида натрия, 20% (по объему) желточной взвеси (1 желток куриного яйца на 200 мл изотонического раствора хлорида натрия . [c.86]

Для приготовления желточно-солевого агара готовят впрок мясо-пептонный агар (pH 7,2—7,4) с содержанием 10% хлорида натрия. После разливки во флаконы по 100— 200 мл агар стерилизуют в автоклаве в течение 20 мин при температуре 120°С. Перед употреблением растапливают, охлаждают до 45—50°С и добавляют 20% (по объему) стерильной желточной взвеси (1 желток куриного яйца на 150— 200 мл стерильного изотонического раствора хлорида натрия). Среду быстро перемешивают, разливают в стерильные чашки, которые продолжительное время могут сохраняться в холодильнике. [c.358]

Бактериологическое исследование. В 1 -й день исследования петлей или шпателем материал засевают в чашки с 5%-м кровяным, а также желточно- или молочно-солевым агаром, которые инкубируют 18 — 24 ч при 37 °С и столько же на свету при комнатной температуре (для более четкого пигментирования колоний). Солевые среды ввиду высокого содержания хлорида натрия являются селективными для стафилококков, рост большинства сопутствующих микроорганизмов на них подавляется. [c.105]

Теллурит-желточный агар (Унифицированные методы СЭВ, 1975). [c.243]

Нетребовательны к питательным средам, хорошо растут на простых средах, дают пигментные колонии. Элективной средой для стафилококков является желточно-солевой агар, реже — молочно-солевой агар. [c.91]

Желточный агар (разд. 20.3.14) в чашке засевают штрихом для получения изолированных колоний. Положительный результат образование мутной (непрозрачной) зоны вокруг колоний. См. также Липаза (разд. 20.1.33). [c.29]

Метод 1 [7j. Желточный агар (разд. 20.3.14) в чашке Петри засевают штрихом. После инкубации снимают крышку чашки и внимательно просматривают поверхность при косом освещении. Положительный результат образование маслянистого блестящего с переливами или перламутрового слоя над колонией и вокруг нее на поверхности агара. [c.29]

Для идентификации выделенного микроба с бактериями туляремии из микробной культуры, выращенной на желточной среде Мак-Коя, производят высев а) в 3 пробирки для накопления чистой культуры б) в 1 пробирку на скошенный мясо-пептонный агар. Посевы помещают в термостат и инкубируют при 37 °С в течение 1—2 сут. [c.267]

В микробиологии применяются солевые среды (молочно-солевой агар, желточно-солевой агар и соляно-кровяной агар). Они обладают высокой элективностью за счёт содержания поваренной соли,, просты. в изготовлении. Однако эти среды имеюУ ряд недостатков замедленный рост на этих средах- стафилококков, необходимость дополнительной инкубации при комнатной темцературе, ингибирование роста клеток, подвергнутых тепловой обработке. Эо и недостатки снижают эффективность использования этих сред прй исследовании пищевых продуктов. / г [c.312]

На 2-й день изучают выросшие колонии стафилококки образуют выпуклые, ровные непрозрачные колонии средней величины белого, лимонно-желтого или золотистого цвета (гемолитические или негемолитические). Пигментообразование лучше заметно на молочно-солевом агаре. На желточно-солевом агаре большая часть патогенных стафилококков вызывает лецитиназную (ле-цитовителлазную) реакцию, проявляющуюся в образовании вокруг колонии зоны помутнения с радужным венчиком в отраженном свете. При микроскопии в мазках обнаруживают грамположительные кокки, расположенные гроздьями. [c.105]

Выделить культуры возбудителя от больного путем непосредственного посева материала на среды почти никогда не удается. Более надежным является биологический метод. Материал (по возможности взятый до начала антибиотикотерапии) вводят 3 — 5 мышам или 2 морским свинкам подкожно, накожно, внутрибрюшинно и/или через рот. Зараженных животных содержат в особых условиях (как при диагностике чумы). Если экспериментальные животные на протяжении 7—15 дней не погибают, их забивают и трупы вскрывают. При наличии туляремии обнаруживают патологоанатомические изменения продуктивный процесс с некрозом, увеличенные лимфоузлы, селезенка, печень, геморрагический компонент не выражен. Кровь, костный мозг, участки внутренних органов и лимфатических узлов трупа животного сеют, втирая в поверхность одной из сред желточной, МакКоя, глюко-зоцистинового агара с кровью и антибиотиками. [c.125]

Бактериологическое и биологическое исследование. После микроскопии материал засевают на специальные жидкие и плотные среды (анаэробный кровяной агар, среда Вильсона —Блера, среда Китта—Тароцци, желточная среда). Для приготовления неселективной среды для клостридий используют в качестве основы агар для бруцелл с 5 % бараньей крови, колумбийский или сердечно-мозговой агары, в которые добавляют дрожжевой экстракт, витамин К и гемин. В качестве селективных сред (для контаминированных образцов) можно использовать анаэробный кровяной агар с добавлением неомицина или фенилэтилового спирта. Перед посевом плотные материал гомогенизируют (растирают в стерильной ступке со средой накопления) и делят на две части, одну из которых прогревают в водяной бане при 80 °С в течение 10 мин (для уничтожения вегетативных клеток сопутствующих микроорганизмов). Обе части материала исследуют одновременно. В качестве альтернативного метода (особенно при подозрении на присутствие термочувствительных штаммов С. perfringens) используют обработку материала этиловым спиртом, к 1,0 мл исследуемого гомогената или экссудата добавляют такое же количество 95%-го этанола и перемешивают их при комнатной температуре в течение 1 ч, после чего этим материалом засевают указанные выше питательные среды. [c.191]

Определение Staphylo o us aureus. Определенное количество исследуемого материала засевают для накопления стафилококков в солевой бульон, например 1 мл(г) в пробирку с 5 мл среды, инкубируют при 37 °С в течение 24 ч. При наличии роста (помутнении среды) делают высевы на желточно-солевой агар для получения изолированных колоний, которые затем идентифицируют по культуральным свойствам, морфологии (в мазке по Граму), ферментации глюкозы и маннита, наличию плазмокоагулазы. [c.425]

О качестве проведенной дезинфекции изделий медицинского назначения судят по отсутствию золотистого стафилококка (S. aureus), синегнойной палочки Р. aeruginosa) и БГКП. Для этого методом смывов исследуют 1 % (не менее 3 — 5 единиц) одновременно обработанных изделий одного наименования. По 0,1 мл смывов, взятых марлевыми салфетками (5x5 см), наносят на поверхность желточно-солевого, кровяного агаров и среды Эндо и инкубируют засеянные чашки при 37 °С. Дезинфекцию считают эффективной, если через 48 ч на чашках не вырастают колонии указанных микроорганизмов. [c.436]

Метод рекомендует использование мембранных фильтров с параллельным выращиванием колоний на теллурит-желточном агаре Инесса и на кровяном агаре для увеличения выделения стафилококков. После инкубации посевов 24 ч при 37°С подозрительные колонии пересевают на кровяной агар для установления гемолиза и на среду Эсбер — Фаулконнера для установления сбраживания маннита и коагуляции плазмы. Учитывают окрашенные в желтый цвет мутные колонии. Анализ заканчивают через 48 ч. Метод двухэтаппый, требует сложных сред. [c.191]

Теллурит-полимиксин Желточный агар для выделе-аия патогенных стафилококков (01Т81еу е. а., 1964, модификация). [c.243]

Бактериологическое исследование и биопроба. Применяются для выделения чистой культуры бактерий туляремии. Наиболее чувствительными животными являются белые мыши и морские свинки, которые заболевают со смертельным исходом даже при подкожном введении единичных бактерий. Выделение бактерий туляремии проводят на свернутой яично-желточной среде, глюкозоцистиновом кровяном агаре. Вирулентные штаммы образуют 8-формы колоний — мелкие, гладкие, беловатого цвета с голубоватым оттенком. [c.203]

При исследовании гноя открытых ран, отделяемого ран или свищей, мокроты, рвотных масс, промывных вод желудка, пищевых продуктов, изъятых при пищевых отравлениях, и другого подобного материала, в котором можно предполагать содержание обильной, посторонней микрофлоры, лучше всего пользоваться желточно-солевым агаром Чистовича (рец. 61) или молочно-солевым агаром Петрович (рец. 62). Эти среды обладают элективными свойствами, обусловленными высоким содержанием хлорида натрия, а желточно-солевой агар, кроме того, позволяет бс Лее четко, чем кровяной агар, дифференцировать патогенные и непатогенные штаммы стафилококка. Для засева солевых сред берется большое количество материала, который втирают в поверхность пита- [c.165]

Для лучшего выявления пигмента посевы на молочно-со-левом агаре выдерживают 2—3 дня при комнатной температуре. На кровяном агаре вокруг колоний стафилококка может обнаруживаться гемолиз. На желточно-солевом агаре большая часть патогенных стафилококков, образующих лецитиназу, дает лецитовителлазную (желточную) реакцию, проявляющуюся в образовании вокруг колонии зоны помутнения с радужным венчиком по периферии. [c.166]

Идентификация бактерий туляремии основывается на совокупности следующих признаков характерной морфологии и окраске микробных клеток в мазках, специфичности микробного роста на свернутой желточной среде Мак-Коя, отсутствии роста на мясо-пептонном агаре, агглютинации микроба специфической туляремийной сывороткой, патогенности бактерий в отношении белых мышей с воспроизведением типичной натологоанатомической картины. [c.268]

Мясо-пептонный питательный агар готовят по общеприня -той прописи и добавляют к нему 20% желточной взвеси (1 желток на 150—200 мл стерильного изотонического раствора хлорида натрия). Желточную взвесь готовят, соблюдая правила асептики. [c.358]

Теллурит-полимиксин-желточный агар Крис-л и. В состав основной среды входят 10 г трнптона, 5 г дрожжевого экстракта, 5 г маннита, 20 г хлористого натрия, 2 г хлористого лития, 18 г агара. Сразу доливают до 1000 мл дистиллированной воюй, уст.анавливают pH 7,3, а затем стерилизуют при температуре 1.2ГС в течение 15 мин. [c.312]

Метод определения с использованием солевых сред. Готовят десятикратные разведення исследуемых продуктов в соответствии со стандартным методом. В качестве питательных сред используется молочно-солевой и желточно-солевой агары (сТй. табл. 148). По 0,1 мл исследуемых разведений наносят на поверхность питательной среды в чашки Петри и тшатель1ю растирают по поверхности среды, стерильным шпателем. Чашки с засеянными средами помещают в термостат при температуре 37°С на 24—48 ч. Просматривают посевы на чашках с молочно-солевым или желточно-солевым агаром и из отдельных типичных колоний готовят препараты, окрашивая их но Граму, и il Iipo кoпиpyют. [c.373]

Культивирование. Легионеллы являются аэробами, хорошо растут в присутствии 5 % углекислого газа, весьма требовательны к условиям культивирования растуг только на специальных сложных питательных средах (угольно-дрожжевой агар). На 3—5-й день на плотной среде легионеллы образуют характерные колонии с коричневым пигментом, диффундирующим в агар. Легионеллы являются факультативными внутриклеточными паразитами, поэтому их можно также культивировать в желточном мешке куриного эмбриона и культуре клеток. [c.243]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология