Стерилизация сахарозы

Большинство фруктов содержат фермент инвертазу, ко- торая превращает сахарозу в глюкозу и фруктозу. Поскольку не вся инвертаза инактивируется во время стерилизации фруктов, то в процессе хранения возможна инверсия сахарозы. [c.146]

В состав среды для роста продуцентов витамина В2 входят достаточно сложные органические вещества — соевая мука, кукурузный экстракт, сахароза, карбонат кальция, хлорид натрия, гидрофосфат калия, витамины, технический жир. Грибы весьма чувствительны к изменению состава среды и подвержены инфицированию. Перед подачей в ферментер среду подвергают стерилизации, добавляя к ней антибиотики и антисептики. Подготавливают жидкую питательную среду и посевной материал культуры дрожжей в разных емкостях — ферментере и посевном аппарате. [c.54]

Так как при повышении летальной температуры резко снижается продолжительность ее воздействия на микроорганизмы, то в последнее время наметилась тенденция кратковременной стерилизации при температуре до 140°С. Чтобы затормозить скорость инверсии сахарозы и разложения инвертированного сахара, pH мелассного раствора поддерживают не ниже 6. Для достижения большего эффекта по отмиранию микроорганизмов концентрацию мелассы снижают до 60—45%. [c.64]

К этой минеральной среде добавляют в количестве 0,1—1% испытуемый источник углерода. Обычно испытывают глюкозу, левулезу, галактозу, лактозу, сахарозу, мальтозу (при наличии этих веществ в среде стерилизацию ведут при 100°С в аппарате Коха) соли органических кислот муравьиную, уксусную, масляную и другие спирты этиловый, глицерин, маннит фенольные соединения различные альдегиды, кетоны и другие источники углерода. [c.81]

Водопроводная вода — 1 л сахароза — 5 г пептон — 5 г. Реакция среды рН = 7,8- -7,3. Стерилизация текучим паром. [c.92]

Так как в сахарной свекле содержится сахароза, тепловая обработка свеклы заключается в стерилизации. Вследствие неодинакового технического оснащения спиртовых заводов применяют различные приемы тепловой обработки и переработки сахарной, свеклы. [c.78]

Стерилизацию эмбрионов (например, дрозофилы) проводят следующим образом. Яйца дрозофилы, отложенные в течение 1 —12 ч, собирают на лотках с кормом, содержащим убитые дрожжи. Смытые с корма 1ща переносят в капроновый мешочек, тщательно промывают водопроводной водой. Собранные яйца переносят в стакан, содержащий 30 %-ный раствор сахарозы, и оставляют на 1—24 ч в холодильнике. Плавающие эмбрионы осторожно переносят (переливают) в цилиндр с металлической сеткой (диаметр ячейки не более 500 мкм), через который проходят эмбрионы и мелкие частицы, а крупные кусочки корма и возможные личинки остаются. Затем эти эмбрионы переливают в другой цилиндр, содержащий металлическую сетку с диаметром пор не более 100 мкм, где задерживаются эмбрионы, а дрожжи и мелкие частицы смывают, пропуская через сетку около 0.5 л холодной водопроводной воды. Тщательно отмытые эмбрионы можно стерилизовать 70 %-ным этанолом 5—10 мин и 95 %-ным этанолом 10—20 мин. После отмывания эмбрионов стерильным солевым раствором или средой можно получить массу клеток для первичного культивирования и выделения пересеваемых линий клеток [31, 32]. Если перенести такие стерильные эмбрионы на [c.242]

При суховоздушной стерилизации для контроля режимов стерилизации можно применять сахарозу нли сахарный песок, которые плавятся прн 170°С. [c.317]

Среды для выращивания плесневых и дрожжевых грибов. Агар Чапека—Докса (г/л) сахарозы — 30, натрия нитрата — 3, калия гидрофосфа-та — 1, магния сульфата — 0,5, калия хлорида — 0,5, железа сульфата — 0,01, агар-агара — 15. Стерилизация при 112—120 °С втечение 15 мин, pH после стерилизации 7,1—7,4. Эта синтетическая среда применяется для культивирования грибов, изучения хламидоспор у грибов andida и морфологии аспергилл. [c.316]

К числу криопротекторов относят глицерин, гликаны, гликопротеины, ДМСО, сахарозу, ПВС, сыворотку крови и др. Их можно использовать по отдельности или в смесях. Лучший способ стерилизации растворов криопротекторов — мембранная фильтрация. [c.529]

Трехсахарный агар с мочевиной (среда Олькеницкого). Дистиллированной воды 100 мл, сухого питательного агара 2,5 г, лактозы 1,0 г, сахарозы 1,0 г, глюкозы 0,1 г, мочевины 1,0 г, соли Мора 0,02 г, тиосульфата натрия 0,03 г, 0,4% водного раствора фенолового красного 1 мл. Все тщательно смсшивают, устанавливают pH 7,2—7,4. Среду разливают в пробирки п стерилизуют текучим паром 20 мин 3 дня подряд. После стерилизации среду скащивают. Готовая среда имеет бледно-розовый цвет. [c.232]

Мясо-молочная промышленность [0-22, 0-23]. Подготовка стеклянной тары. Повышение производительности труда, совершенствование технологических процессов в результате использования технических моющих средств для мытья и стерилизации тары, трубопроводов и другого технологического оборудования.— Алкилсульфаты и сульфоэтоксилаты сульфонаты ЧАС оксиэтилированные спирты и кислоты эфиры сорбитана и сахарозы блоксополимеры. [c.333]

Г. Разведение в растворе. Жидкая питательная среда заливается в колбы на V4—Vs их объема и после стерилизации инокулируется смывом 5—7-диевиой культуры с косого агара, где полностью закончилось спорообразование. Инокулированные колбы помещают на качалку на 48 часов при температуре 28— 30 С и 105 оборотах в минуту. Через двое суток инокулят готов для его переноса в емкости большего размера. Инокуляцию лучше B ero производить 2,5%-ным вегетативным инокулятом [244]. В инокуляционных резервуарах оседает 1% инокулята (3 л на 300 л питательной среды). Для промышленного разведения используется среда, содержащая 2,5% сахарозы, 2,5—3,5% кукурузного экстракта и 0,68% КН2РО4 [247]. [c.206]

В производстве лизина используется меласса, содержащая термолабильный компонент — сахарозу. Поэтому ее стерилизуют отдельно. В реактор, снабженный мешалкой, подают мелассу и нагревают ее при постоянном размешивании до температуры 80° С, смешивая ее с водой согласно имеющейся рецептуре, затем ее быстро разогревают глухим паром до температуры 120—122° С в специальном аппарате и выдерживают при этой температуре определенное время, необходимое для полной гибели всей микрофлоры. Остальные компоненты среды также в реакторе с перемешиванием смешивают и растворяют в воде с подогревом, нагревают в специальном аппарате до температуры стерилизации, выдерживают при ней и охлаждают. Длительность стерилизации значительно меньше, но температура выше. В нелом же схема приготовления среды и стерилизации ее аналогична той, что приводилась ранее в части П. [c.393]

Долгоносики. Для стерилизации жуков сливового долгоносика onotra heius nenuphar) им давали корм, содержащий в 100 мл воды, кроме хемостерилизатора, 20 г яблочного пюре, 2 г сахарозы, 0,5 г холестерина, 0,3 г соли Вессона, 0,1 г хлористого холина, 3,0 г агара, 0,1 г сорбиновой кислоты и витамин В. Этот корм скармливали 14 дней после выхода жуков из куколок и до достижения ими половой зрелости [64]. [c.82]

Сахароза — инертное, стабильное вещество, однако при авто-клавировании ее растворы могут карамелизоваться. Между тем их стерилизация нередко необходима, так как сахароза ввиду ее биологического происхождения может содержать примеси различных ферментов, в частности рибонуклеаз. Растворы сахарозы лучше всего стерилизовать добавлением (на 30 мин) до 0,1% диэтилпирокарбоната (ДЭП) — мощного ингибитора рибонуклеаз. После обработки ДЭП разлагают на СО и этанол нагреванием раствора при 60 в течение нескольких часов. Следует помнить, что ДЭП очень ядовит [c.212]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология