Готовые среды

Среда Ресселя с мочевиной (по Равич-Биргер). К 4 г сухой питательной среды Гисса с индикатором ВР и лактозой прибавляют 0,1 г химически чистой глюкозы и 1 г мочевины, растворяют в 100 мл горячей дистиллированной воды, разливают в стерильные пробирки и стерилизуют текучим паром. Горячую среду скашивают, как среду Ресселя. Цвет готовой среды должен быть ярко-розовый. [c.189]

Готовую Среду после стерилизации скашивают, как среду Ресселя, и посев на нее производят по общепринятой методике. [c.369]

Картофельно-глицериновый агар по Борде. Сварить 100 г мелко нарезанного картофеля с 200 мл 4%-го глицерина растворить 5 г агара в 150 мл 0,6%-го хлорида натрия к 150 мл агара прибавить 50 мл отвара и стерилизовать. Накануне посева расплавить и остудить до 50 °С среду и прибавить 30 — 50% дефибрированной крови кролика. Для подавления сопутствующей флоры в готовую среду рекомендуют добавлять 15 — 25 ЕД пенициллина. [c.135]

Готовую среду разливают в стерильные пробирки или флакончики и проводят коагуляцию при 80 — 85 "С в течение 45 мин. [c.210]

Готовую среду разливают в стерильные пробирки или флакончики по [c.211]

Рисовый отвар по Блинову. 20 г очищенного риса кипятят в 1 л дистиллированной воды в течение 30 мин, пропускают через бумажный фильтр и доводят фильтрат до 1000 мл дистиллированной водой, добавляют 20 г маннита, 10 г серина, 5 г натрия сульфата, 20 г агар-агара. Готовую среду осветляют лошадиной сывороткой (70 мл на 1000 мл среды). Стерилизуют при 110— 112 °С в течение 20 мин. [c.317]

Готовую среду разливают в пробирки по 12 мл (для разливки на одну чашку) или в бутылки и стерилизуют текучим паром дробно при 112° С 15—20 мин. [c.80]

Готовая среда должна иметь кремовый цвет с легким розовым оттенком. Ярко-розовую или красную среду употреблять не следует, так как в ней лейкосоединение, содержащее фуксин, уже разрушено. Пригодность среды Эндо можно испытать, поместив на поверхность чашки кружок фильтровальной бумаги, смоченный 2% раствором формалина. Если вокруг кружка в течение 10 минут появится ореол красного цвета с металлическим блеском в зоне до двух миллиметров, среда может быть признана хорошей. [c.186]

Готовую среду разливают в узкие пробирки (серологические) до 74 их высоты, стерилизуют в автоклаве при 0,5 атм в течение 10 минут и хранят в вертикальном положении до застывания. Стерильность среды проверяют путем инкубации ее в термостате при 37°С в течение двух суток. [c.188]

Перед посевом среду растапливают и на 1 л ее добавляют 10 мл 0,5%-ного спиртового раствора бромтимоловой синей. Готовая среда пмеет оливковый оттенок. При отсутствии этого индикатора можно пользоваться фенолфталеином (1 мл 0,5%-ного спиртового раствора на 100 мл среды). В случае применения фенолфталеина pH среды при ее изготовлении доводят до 7,9—8,0. Среда с фенолфталеином имеет слабо розовый оттенок. [c.603]

В готовую среду Эндо перед разливкой в чашки помимо 0,2 см 10 %-ного спиртового раствора основного фуксина и 0,2 см 5 %-ного спиртового раствора розоловой кислоты вводят 10 см стерильного снятого молока (можно использовать сухое молоко, приготовленное по прописи на этикетке, или 15 см стерильного 30 %-ного водного раствора желатина на 100 см среды. При изготовлении среды Эндо следует учитывать воду, вводимую впоследствии с молоком или желатином. Вокруг колоний микробов, обладающих протеолитической активностью, образуются зоны просветления в результате преципитации при выпадении в осадок параказеина или углубления (кратеры) при разжижении желатина. В последнем случае после 16—18 ч инкубации чашки вынимают из термостата и оставляют на 1—2 ч при температуре 20 "С или в холодильнике для образования кратеров. [c.199]

При невозможности укомплектовать лабораторию готовой средой Эндо, ее приготовляют непосредственно перед испытанием. [c.239]

В табл. 7.2—7.7 приведен состав комплексных (кодовая буква А) и полусинтетических (кодовая буква В) сред для бактерий, перечисленных в табл. 7.1. Имеющиеся в продаже готовые среды помечены звездочкой. Для получения твердой среды к бульонной среде добавляют 1,5—2% агара. Дополнительные компоненты сред и детальные пояснения даны в сносках, обозначенных строчными латинскими буквами. [c.260]

Растворы Б и В охлаждают в течение 5 мин при комнатной температуре и сливают при перемешивании. Затем добавляют раствор А и перемешивают. Готовую среду разливают в чашки Петри. [c.65]

Расплавляют определенное количество 2% мясо-пептонного стерильного агара, охлаждают его до температуры 45°С (не выше ) и прибавляют 5—10% дефибринированной стерильно взятой крови лошади, кролика или барана. Добавление крови производят, соблюдая правила стерильности. Готовую среду разливают в стерильные чашки Петри (предварительно нагретые в термостате), дают ей застыть и подсушивают в термостате. Слой агара должен быть равномерно окрашен в красный цвет. [c.356]

В стерильной склянке смешивают говяжью сыворотку и яичный белок, нагревают до 50 С и добавляют к расплавленному и охлажденному до 50 °С пептонному агару. Содержимое колбы тщательно перемешивают, после чего в нее добавляют раздельно стерильный подогретый раствор гемина и уксусной кислоты в указанных выше количествах. Готовую среду (pH 7,4—7,6) разливают в чашки Петри. [c.381]

Готовые среды разливают в соответствующую посуду и с рилизуют в автоклаве при 0,1 МПа и температуре (120 1) °С течение 15 мин. [c.220]

Хинозольная среда Бучина. Среда готовится из порошка согласно прописи на этикетке, ее кипятят 2 — 3 мин, охлаждают до 50 °С и добавляют 50 мл дефибринированной крови (кролика или человека). Готовая среда имеет темно-синий цвет. [c.201]

Среда LIT для культивирования Trypanosoma ruzi имеет следующий состав (г/л) печеночного экстракта, хлоридов натрия и калия — по 4,0, фосфата натрия — 8,0, триптозы (триптона) — 5,0, глюкозы — 2,0 г, бычьей крови — 200 мл. Среду инактивируют в течение 1 ч при 62 °С. После охлаждения добавляют 20 мл гемоглобина (10 мл осажденных эритроцитов быка + 90 мл дистиллированной воды), доводят pH среды до 7,2 и стерилизуют фильтрацией через фильтр Зейца под давлением. Готовую среду разливают в пробирки или колбы Эрленмейера по 10 мл, куда засевают по одной капле исследуемого материала и инкубируют при 26 — 28 °С, оберегая посевы от высыхания. [c.347]

Розоловый односахарный агар. К 1 л мясо-пептонного агара (pH = 7,4—7,6) несколько меньшей Ьлотности, чем обычно, но достаточной для того, чтобы он не рвался под шпаделем при посеве, добавляют 50 мл стерильной желчи, 10 г лактозы, 2л л 5% спиртового раствора розоловой кислоты и 2 мл 1 % раствора бромтимолблау. Содержимое перемешивают и после растворения ингредиентов стерилизуют в автоклаве при 0,5 атм в течение 10—15 минут. Готовую среду разливают по чашкам. [c.186]

Содержимое колбы тщательно смешивают и после растворения всех 11нгредиентов проверяют среду на буферную способность. Для этого 1—2 капли среды наносят на стекло, дают ей застыть. Затем на один край застывшей среды наносят каплю 10% раствора соляной кислбты, а на другой — каплю 10% едкого натра. Если от кислоты среда желтеет сразу, а от щелочи краснеет, то она приготовлена правильно. Если пожелтение наступает медленно, то надо среду сразу же подкислить и снова проверить ее буферность. Цвет готовой среды должен быть коричнево-красным. [c.188]

Примечание. Розоловый дифференциальный агар можно готовить и без бромтимолблау. В этом случае цвет готовой среды должен быть бледно-розовым. [c.188]

В комплект походных полевых лабораторий включены сухие препараты питательных сред, изготовляемых Дагестанским НИИ среда Эндо, сухой питательный агар, сухие препараты с индикатором ВР и углеводами и др. Однако для приготовления среды на месте необходимо как минимум иметь дистиллировакную воду и нагревательный ноибор. Готовая среда имеет ограниченный срок годности. Поэтому весЬхМа перспективно комплектовать походные лаборатории, особенно переносного типа, пористыми адсорбционными подкладками, пропитанными питательной средой и готовыми к употреблению. [c.156]

На средах с теллуритом калия определяют редуцирующие свойства в отношении этого вещества и устойчивость к нему Str. fae alis. При работе с теллуритом калия необходимо соблюдать условия его внесения после сте-рилизацип в готовую среду, остуженную до температуры не выше 55°С. При содержании в среде теллурита калия в концеитрации 0,02% (1 5000) Str. fae alis растет в виде крупных аспидно-черных колоний, а другие виды образуют более мелкие серо-черные колонии. Дифференциация не очень четкая. [c.220]

Для онределения БГКП в воде водоемов и в сточных водах к 100 мл готовой среды можно добавить 0,2 мл 10% спиртового раствора основного фуксина, 0,5 мл 5% водного раствора фенола и 1,8 мл этилового спирта. [c.229]

Трехсахарный агар с мочевиной (среда Олькеницкого). Дистиллированной воды 100 мл, сухого питательного агара 2,5 г, лактозы 1,0 г, сахарозы 1,0 г, глюкозы 0,1 г, мочевины 1,0 г, соли Мора 0,02 г, тиосульфата натрия 0,03 г, 0,4% водного раствора фенолового красного 1 мл. Все тщательно смсшивают, устанавливают pH 7,2—7,4. Среду разливают в пробирки п стерилизуют текучим паром 20 мин 3 дня подряд. После стерилизации среду скащивают. Готовая среда имеет бледно-розовый цвет. [c.232]

Спорообразующпе бактерии почвы хорошо развиваются на обычном МПЛ. Однако дифференцировку их видового состава по структуре макроколоний рекомендуется производить на сре е, состоящей на 50 о из МПА и иа 50% из суслоагара (готовая среда должна иметь pH 7,0—7,2). [c.562]

К раствору цитратной среды Козера добавляют 2—2,5% агара. Предварительно агар размачивают в воде. Среду Козера с внесеиныл в нее агаром нагревают до момента полного растворения агара. Готовую среду фильтрованием освобождают [c.602]

Приготовленные концентрированные (основные) растворы неорганических солей, добавляемые к синтетическим средам, следует хранить при низких значениях pH или в присутствии минимальных количеств нетоксичных хелатирующих агентов (например, этилендиаминте-трауксусной или нитрилотриуксусной кислоты), препятствующих выпадению солей в осадок. Присутствие хелатирующих веществ в готовой среде является важным фактором, определяющим доступность ионов металлов поэтому, если необходимо добиться интенсивного роста бактерий, концентрация этих агентов должна быть тщательно сбалансирована с количеством микроэлементов [91]. Хелатирующими свойствами обладают также такие компоненты ростовых сред, как аминокислоты, цитрат, малат и др. [c.201]

Готовые среды, имеющиеся в продаже, отмечены звез- [c.229]

Предварительно промытый агар вносят в воду и нагревают до расплавления, затем добавляют пептон, соли и глюкозу. Дают агару закипеть, после чего вносят феноловый красный, предварительно растворенный в 0,1 N растворе едкого натра. Учитывая количество щелочи, пошедшей на растворение индикатора, приливают к смеси остальное количество се до общего объема 25 мл. Смеси дают снова закипеть. Среду разливают в пробирки по 5 мл и стерилизуют при 0,5 атм 20 мин. После охлаждения среды до 50 °С в каждую пробирку добавляют по 0,5 мл 20% раствора мочевины (20 г мочевины растворяют в стерильной дистиллированной воде и кипятят в водяной бане в течение 30 мин). Полученную среду охлаждают в наклонном положении для получения скошенного агара. Цвет готовой среды желтоватозеленый. При щелочеобразовании цвет среды становится красно-фиолетовым. [c.372]

К 100 мл холодной воды (pH 7,6—7,8) добавляют согласно прописи на этикетке порошок сухой хинозольной среды, тщательно размешивают его и нагревают на слабом огне до полного расплавления агара. Среду кипятят 2—3 мин до образования крупнопузырчатой, быстро оседающей пены. К приготовленной и охлажденной до 50 °С среде прибавляют 5 мл (лучше 10—15 мл) дефибринированной крови (кролика, барана или донорскую кровь). Среду тщательно перемешивают, разливают в чашки Петри слоем 3—4 см. Готовая среда темно-синего цвета, может сохраняться 3—4 сут при 4-10 °С. [c.374]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология