Забор крови

Для многих исследований требуется небольшое количество крови (0,01—0,05 мл), поэтому берут ее из безымянного пальца руки либо из ребра мочки уха. После выполненной физической работы забор крови ре- [c.464]

Место забора крови [c.27]

При ЭТОМ ОВЦЫ пытаются вырываться. Мы используем следующие приемы для фиксации животных и забора крови. [c.446]

В коническую колбу вносят 5 мл раствора двухромовокислого калия. В чашечку (или кулек) помещают 1 мл исследуемой крови и тотчас же пробку закрывают. При заборе крови для исследования кожу нельзя очищать спиртом, а только раствором сулемы. Забор ведут в шприц, предварительно смоченный антикоагулянтом. [c.208]

Залог успешного забора крови — хорошая фиксация животного. Его удерживают за шею, заднюю ногу или туловище. Выполняя этот прием,, не следует захватывать шерсть, так как [c.445]

При проведении анализа крови на содержание лактата необходимо учитывать, что увеличение его концентрации в крови происходит не сразу, а через несколько минут после окончания работы. Поэтому забор крови следует делать примерно через 5 мин после завершения нафузки. При взятии крови в более поздние сроки концентрация лактата окажется заниженной, так как часть его будет извлечена из кровяного русла клетками миокарда и печени. [c.161]

Рнс. 24-3. Забор крови у овцы. Шейное углубление представляет собой борозду, располагающуюся медиально по отношению к брахиоцефальной мышце, которая выступает при повороте головы животного. Детали см. в тексте. [c.447]

Забор крови для биохимического анализа чаще всего производится до выполнения физической нагрузки и после ее завершения (примерно через 5 мин). Иногда для изучения динамики биохимических сдвигов [c.239]

ДНК в образцах проб крови (как ядерная, так и митохондриальная фракции) при правильном осуществлении процесса забора крови, транспортировки и хранении может храниться довольно долго (не менее 6 месяцев в высушенном виде на марле или бинтах до нескольких лет на РТА-картах). Общее требование к помещению для хранения образцов проб крови это должно быть отдельное непроходное помещение с моющимися поверхностями, необходимо обес- [c.56]

А. Пяща. Обычно забор крови для анализа делают натощак после 8—12 ч голода. За редким ис- [c.368]

Если забор крови производится через 3- [c.368]

A. Предосторожности. Если исследование откладывается более чем на час, в пробу следует добавить фторид натрия (3 мг/мл крови). Фильтраты могут храниться в замороженном состоянии до 24 ч. Ошибки в интерпретации возникают, если перед забором крови пациент ел сладкое или ему парентерально вводили раствор глюкозы, при этом анализ оценивали, как взятый натощак. [c.374]

А. Пища. Обычно забор крови для анализа делают натощак после 8—12 ч голода. За редким исключением, разрешается пить воду. [c.368]

Если забор крови производится через 3—4 ч после завтрака, полученные результаты стандартных тестов отличаются от величин натощак . Если же кровь берут через 3—4 ч после обеда, показатели отклоняются в ещё большей степени. Для правильного определения триглицеридов в сыворотке или плазме необходимо 10—14-часовое голодание. [c.368]

Рис. 25-4. Забор крови у Xenopus. А. Так надо держать животное. Б. Надрез. В. Положение вены. Г. Введение пипетки. Д. Забор крови.

Взятие проб в ходе гуморального ответа и окончательный забор крови [c.75]

Рис. 25-5. Забор крови у головастика.

Б. Высверливание скорлупы, инъекции и забор крови [c.426]

После отбора необходимого количества крови быстро выдергивают иглу и большим пальцем в течение 10—20 с с силой надавливают место прокола вены. Если этого не сделать, возможно образование гематомы, что затруднит повторный забор крови. [c.448]

Б. Забор крови у взрослых лягушек 1. Приготовление пипеток [c.476]

Для успешного забора крови принципиальное значение имеет правильная подготовка стеклянных пипеток (рис. 25-3). Кончик пастеровской пипетки оттягивают дважды. Сначала пипетку вносят в слабое пламя бунзеновской горелки и, не дожидаясь. пока стекло совсем размягчится, начинают оттягивать кончик так, чтобы стенки образующегося капилляра были как можно тоньше. Затем капилляр располагают на несколько сантиметров выше слабого пламени горелки и производят второе, окончательное оттягивание его кончика. Обламывая самый кончик оттянутого капилляра пинцетом, получают острие. Мягкий вход пипетки в вену в значительной степени зависит от качества этого острия, которое в свою очередь определяется толщиной стенок капилляра и формой острия. Размер отверстия кончика пипетки следует подбирать в зависимости от размера вены животного. Для того чтобы свести к минимуму разруше- [c.476]

Для стерильного забора крови конец пастеровской пипетки запаивают, в противоположное отверстие кладут кусочек ваты и стерилизуют пипетку. Непосредственно перед использованием кончик пипетки оттягивают и обламывают в стерильных условиях. Опыт нащей работы с применением антибиотиков в средах и соблюдением простых мер по хранению пипеток в чистом месте свидетельствует о том, что в процессе забора крови загрязнения проб не происходит. [c.477]

Рис. 25-3. Стеклянные пипетки для забора крови у Xenopus. Наверху — хорошая пипетка, внизу — плохая.

От крупных животных можно легко и быстро получать кровь сердечной пункцией. Это очень быстрая процедура. Однако риск убить животное или не попасть в сердце и не взять кровь значительно больше, чем при заборе крови из вены задней лапки. Перед сердечной пункцией лягушку обездвиживают (наркозом или надевая на нее нейлоновый чулок) и кладут на спинку. В сердце под углом 45 °С к поверхности живота вводят иглу № 22. После этого иглу плавно вытягивают из животного, мягко оттягивая поршень шприца до тех пор, пока в него не начнет поступать кровь. [c.478]

В. Забор крови и перитонеальной жидкости [c.478]

Могут быть использованы животные в возрасте 3—4 мес любого пола. Используемая схема иммунизации зависит от природы иммуногена в такой же степени, как и при получении поликлональной антисы воротки. Важно установить, что у Мышей, клетки которых предполагается ис пользовать в экспериментах по слиянию, в ответ на введение данного иммуногена образуются антитела. Забор крови для контрольного исследования производят из хвостовой вены спустя неделю после заключительной иммунизации. Если в сыворотке обнаруживают антитела в адекватном титре, то за 3—4 дня до извлечения селезенки для слияния клеток производят последнее введение иммуногена. Иногда трудно интерпретировать результаты тестирования крови, поскольку сыворотка содержит сло жную смесь антител. Неоднозначно, что все данные антитела были образованы секретирующими клетками селезенки, а также, что именно эти антиген-реактивные клетки будут преимущественно синтезировать 1 в ходе иммунного ответа [c.121]

Для анализа сцепления прежде всего берут пробы крови у членов нескольких семей, пред-ставленньгх двумя-тремя поколениями, либо у членов одной большой семьи, представленной несколькими поколениями, с данным генетическим заболеванием (при этом необходимо проинформировать всех испытуемых о целях анализа и получить их согласие). Клетки крови культивируют, что позволяет постоянно получать ДНК для дальнейших процедур без повторного забора крови. Проводят генотипирование ДНК каждого индивида по нескольким поли- [c.456]

При гуморальном ответе животного на эритроциты другого вида образуются IgM и IgG. Затем антиэритроцитарные антитела нагружают на эритроциты-мишени, которые при введении донору эритроцитов, вызывают образование антиглобулинов. Этот простой подход позволяет избежать очистки иммуноглобулинов и дает хорошие результаты. Например, введя кролику внутривенно 1 мл отмытых в физиологическом растворе эритроцитов барана (10%-ная суспензия, объем на объем), можно легко получить соответствующие антиэритроцитарные антитела. При взятии крови через 10 дней после первой инъекции главным образом получают IgM. Повторное введение антигена через 1 нед и 2 раза в неделю в течение последующих несколькнх недель с забором крови через 2—5 дней после последней инъекции преимущественно обеспечивает получение IgG. Сыворотки затем могут быть смешаны. [c.53]

I. ampyloba ter jejuni, серотипы 1, 2 и 4 [37]. Бактериальные культуры отбирают на логарифмической фазе роста в концентрации 10 клеток/мл. Суспензию отмывают, обрабатывают формалином и доводят оптическую плотность до 0,375 при 625 нм. Авторам удавалось получить антисыворотки с очень высоким титром, вводя суспензию сначала по 1 мл, а затем по 2 и 3 мл в/в два раза в неделю (курс 3 нед). Забор крови осуществляли через неделю после последней инъекции. Для повышения специфичности антнсыворотку сорбировали грам-отрицательными бактериями других видов и иных серотипов данного вида [37]. [c.84]

Получение зфф ективн1ых антисывороток определяется стратегией пробных заборов крови после каждой инъекции, которые позволяют проследить за возрастанием титра антител и изменением их специфичности и авидности. От результатов, полученных в ходе этих пробных исследований, зависит процедура последующих инъекций (время проведения, доза, использование адъюванта, способ введения), а также выбор наиболее хорошо отвечающих животных и необходимость в той или иной абсорбции. [c.92]

После забора крови лягушку в течение одного дня держат в воде, содержащей антисептик (2,5 мл лактата этакридина на 1л). [c.478]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология