Ауксины, разделение

Прогресс в исследовании фитогормонов в значительной мере объясним успехами в технике их очистки и препаративного выделения. Начиная с 1952 г. в практике изучения природных ростовых веществ используется хроматографическое разделение растительных экстрактов. В сочетании с биотестами указанный прием позволил обнаружить в тканях растений ауксины, гиббереллины и кинины. И до настоящего времени эти методы анализа остаются ведущими в исследовании свойств природных регуляторов роста. [c.9]

При изложении материала этого раздела основное внимание будет уделено разделению и очистке природных ауксинов и ингибиторов роста. [c.21]

Стремясь сохранить комплексы ауксинов и ингибиторов неповрежденными, в последние годы все чаще стали отказываться от разделения полученных экстрактов на кислую, нейтральную и щелоч- [c.25]

Фиксация и экстракция растительного материала, содержащего ауксины и ингибиторы, очистка экстракта, его хроматографическое разделение и проявление хроматограмм с помощью цветных реакций и биотеста. [c.49]

Для хроматографического разделения ауксинов и ингибиторов используют бумагу фабрики им. Володарского — ленинградскую медленную № 2 (вес 1 мг бумаги равен 120 или 85 г). [c.11]

Нагрузка стартового пятна зависит, во-первых, от количества примесей, содержаш,ихся в экстракте, во-вторых, от степени биологической активности ауксинов и ингибиторов. Разделение ауксинов и ингибиторов можно проводить как в восходящем, так и в нисходящем токе растворителя. [c.11]

Состав растворителей в зависимости от хроматографической бумаги, а также состава разделяющих веществ может быть и иным. Из числа применяемых растворителей для разделения ИУК и ее производных следует упомянуть смесь изопропанола, аммиака и воды (10 1 1). Данный растворитель как по характеру распределения ауксинов, так и по скорости хроматографирования мало отличается от первого использованного растворителя, за исключением того, что по хроматографической бумаге он двигается несколько быстрее. При изменении соотношения отдельных его составных частей меняется скорость движения фронта растворителя и Я/ распределяемых веществ. [c.34]

Индолы отличаются друг от друга зарядом (кислые, основные и нейтральные индолы) и степенью гидрофильности, в соответствии с чем следует подбирать хроматографические системы растворителей. Для разделения большинства индолов растительного происхождения, например ауксинов, их промежуточных продуктов и производных, достаточно двух систем щелочной смеси С1 изопропиловый спирт — аммиак — вода (10 1 1) и кислой смеси Сг тетрахлорметан — уксусная кислота (50 1). Последнюю систему, учитывая ее липофильный характер, следует применять для разделения на бумаге, хорошо насыщенной неподвижной фазой. Для этого надо до хроматографирования слегка опрыскать бумагу 30%-ной уксусной кислотой, дать испариться избытку кислоты и поместить еще влажную хроматограмму в камеру. Можно также оставить до следующего дня бумагу в камере, атмосфера которой насыщена парами тетрахлорметана, уксусной кислоты и воды. [c.132]

Калдвей и Шталь [303] пользовались хорошо известной пробой Авены для анализа ауксинов, разделенных методом ТСХ. Пятна вместе с адсорбентом диоксидом кремния соскребали с пластинки и равномерно размазывали по блокам агара. Эти блоки выдерживали в темноте по крайней мере 30 мин, чтобы ауксины успели продиффундировать в агар до начала опыта. Степень извлечения введенной индолуксусной кислоты составляла примерно 85%. При этом наблюдался синергетический эффект влияния силикагеля и кальция на рост жесткокрылых Tribi um [304, 305], поэтому в анализах подобного рода эту активность следует учитывать. [c.352]

В стерильных и полустерильных условиях ткани высшего растения способны превращать L-триптофан в индольные ауксины, однако содержание свободных ауксинов при этом остается достаточно низким. Присутствие в растительных тканях комплексов ИУК (в особенности ИУК-глюкозы), дающих при электрофоретическом разделении ИУК, позволяют заключить, что и в высшем растении из L-триптофана образуется большое количество ИУК, которое подвергается дальнейшим превращениям. [c.66]

С целью выяснения состава первичных продуктов, возникающих при контакте грибов с растениями-хозяевами, суспензию грибных клеток наносили на срезанные листья растений-хозяев по методу, оцисанному ранее [3]. Трехдневная инкубация суспензии грибов на листьях ольхи вызывала образование специфических продуктов, хроматографическое разделение которых показало, что они являются фенольными соединениями и принадлежат тканям листа. Анализ при помощи хроматографии на бумаге и цветных реакций проб позволил отнести их к флавоноидам и фенолкарбоновым кислотам. Количество ауксинов, образованных грибом в контакте с тканями хозяина, в два-три раза npeBbtoiano тот уровень, который синтезировался одним грибом, т. е. ткани хозяина оказывали стимулирующее влияние на синтез ИУК. [c.259]

Этим методом можно обнаружить активность таких соединений, как индолил-З-уксусная кислота (ИУК), абсцизовая кислота, а также фенольные ингибиторы. Строение этих соединений приводим на стр. 8. Предлагаемый метод определения биологической активности свободных ауксинов и ингибиторов основан на хроматографическом разделении эфирного экстракта из растительного материала с последующей оценкой степени стимуляции и торможения отдельных зон хроматограмм при помощи биологических тестов. Ниже приводим описание реактивов последовательных процедур метода. [c.7]

Выбор оптимальной навески — второй этап подготовительной работы для создания наилучших условий для хроматографического разделения эфирных экстрактов. Основная цель этого приема — обнаружение в выбранной навеске биологической активности сти муляторов и ингибиторов. Для этого выбирают растительный ма териал, богатый ауксинами (растущие побеги и корни, набухШиё по 1Ки, пpopa taющиe семена и т. д.) или природными ингибитора [c.13]

Для разделения веществ используют восходящую или нисходящую хроматограмму на бумаге Filtrak FN-1 или Ленинградская № 2. В первом направлении применяют растворители бутанол, воду и, 25%-ный аммиачный раствор (25 25 2). Следует отметить, что данный состав растворителя в количественном отношении может быть несколько изменен. Например, хорошее разделение ауксинов получается при следующем соотношении отдельных частей раство- [c.33]

Исследования ауксинов проводили хроматографическим методом с последующим испытанием разделенных веществ при помощи колеоптильного теста. Использовали методику, предложенную Кефели и Турецкой (1963). Экстракцию ауксинов из растительного материала производили подкисленным серным эфиром. После нанесения экстракта на хроматограмму и очистки толуолом его разгоняли в кислой системе растворителей (н-бута-нол — ледяная уксусная кислота — вода в соотношении 40 12 28). [c.150]

В роли такого интермедиата могут выступать универсальные гормоны роста растений — ауксины. Предполагается, что возбужденные состояния флавинов сенсибилизируют деструкцию ауксинов, превращая их в 3-метилоксииндол. Этот вывод основывается на опытах с добавлением к проросткам овса меченого по углероду ауксина (индолилуксусной кислоты) с последующей экстракцией и хроматографическим разделением внутриклеточных веществ после воздействия синим светом, вызывающим фототропную реакцию. Из всех обнаруженных продуктов только 3-метилоксииндол ингибировал рост растений. Подобная реакция происходит и при освещении смеси рибофлавин — ауксин отмечается поглощение кислорода и выделение углекислого газа за счет сенсибилизированного пигментом окислительного декарбоксилирования индолилуксусной кислоты [c.170]

В клетках экспланта, состоящего из неделящихся, специализированных клеток, в самом начале культивирования могут наблюдаться изменения в метаболизме, вызываемые и травматическими синтезами, и дедифференцировкой, и подготовкой к процессу деления. Для разделения этих процессов можно рекомендовать прединкубацию эксплантов на среде без гормонов в течение 3—6 сут. Это позволяет исключить не только изменения, связанные с травмой, но и возможное не контролируемое влияние эндогенных гормонов экспланта на изучаемые процессы. При соблюдении указанного условия становится ясной роль в индукции клеточного деления фитогормонов группы ауксинов и цито-кининов, дедифференцировке специализированных клеток и в поддержании каллусных клеток в делящемся состоянии, приводящем к образованию первичного каллуса. При этом наблюдаются сложные взаимодействия между ауксинами и цитокинина-ми. Присутствие в среде одного ауксина определяет переход специализированной клетки из покоящейся фазы Со к вступлению в 5-фазу клеточного цикла. Однако для завершения фазы синтеза ядерной ДНК, синтеза белков, стимулирующих переход [c.15]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология