Нингидрин на аминосахара

Аминосахара можно обнаружить нингидрином зоны ацетилированных производных становятся видимыми при последовательном опрыскивании смесью нитрат серебра—гидроксид нат- [c.568]

При дезаминировании 2-аминосахаров в щелочной среде образуется аммиак [234], что было положено в основу количественного определения этих сахаров [230]. Необходимо вводить поправку на содержание в гликопротеине амидного азота (см. гл. 6). В этом случае также возможны ошибки, если реакцию проводить в присутствии нейтральных сахаров и основных аминокислот [230]. Определение 2-аминосахаров с нингидрином включает их дезаминирование с образованием соответствующих пентоз оно было обсуждено ранее (см. стр. 213). [c.216]

Нингидрин. Хроматограмму опрыскивают 0,05%-ным раствором нингидрина в н-ВиОН. Прогреварот при 105-110°С в течение 10 мин. Аминосахара дают красную окраску. Для определения свободных сахаров после опрыскивания этим реагентом можно опрыскать оксаниловой кислотой (разд. 22. пункт 3). [c.404]

Вайкер и Броссмер [10] наблюдали при анализе чистых сахаров методом ХТС на слое силикагеля Г, с применением основного растворителя к-пропанол — концентрированный аммиак—вода (60 + 20 + 10) по меньшей мере два пятна. Соответствующие опыты заставляют предположить, что при использовании аммиачных растворителей при каталитическом действии силикагеля происходит образование аминосахаров, реагирующих положительно с нингидрином и реактивом Моргана — Эльсона (№ 45). Это обстоятельство необходимо принимать во внимание при использовании указанных выше растворителей. [c.458]

Сущность метода. Положительную реакцию на нингидрин (образование с этим реактивом соединения, окрашивающего раствор в фиолетовый цвет) показывают в основном алифатические азотсодержащие вещества (амины и имины), аминосахара, амино- и иминокислоты, пептиды, содержащие в молекуле менее 10 аминокислотных групп, и др. Такие вещества, как п-фенилендиамин, п-аминофенол, аминотиолы, дают эту реакцию лишь в очень слабой мере (примерно в 10 раз слабее, чем основные вещества, перечисленные выше). Совсем слабо реагируют полипептиды и некоторые соединения, не содержащие азот (оксальдегиды, окси-кетоны, катокислоты). [c.67]

Аминосахара можно обнаружить обычными реагентами на сахара, а также нингидрином, смесью диметиламинобензальде-гида и ацетилацетона и др. Олигосахариды удается различать с помощью реагента, представляющего смесь (5 5 1 по объему) 4%-ного этанольного раствора анилина, 4%-ного этаноль-ного раствора дифениламина и фосфорной кислоты (уд. масса 1,7). Этот реагент необходимо готовить непосредственно перед употреблением. Хроматограмму опрыскивают им с обеих сторон, а затем нагревают ее 10 мин при 80 °С. После этого наблюдают хроматограмму под УФ-облучением. Сахариды с 1,4-связями образуют синие пятна, а соединения с 1,6-связями — коричневые. Рейхель и Шивек [106] обнаруживали и идентифицировали сахара по цветным реакциям с реагентами на основе хлорида титана (IV), так как различные сахара образуют с эти- [c.107]

На хроматограммах аминосахара выявляют следующими методами 1) обработкой 0,2%-ным раствором нингидрина в ацетоне 2) реакцией Эльсона-Моргана [92], методика Д-47 3) реакцией с аммиакатом серебра [92], методика Д-10 4) реакцией с анилинфталатом [92], методика Д-34. [c.190]

Эссер [131] разработал количественный метод определения аминосахаров. Обработанное нингидрином пятно соскабливают в раствор ацетата кадмия в метаноле и измеряют поглощение комплекса при 494 нм. [c.572]

Идентификация в некоторых системах глюкозамппа в присутствии галактозамииа или большого количества других веществ, реагирующих с нингидрином, затруднена. Исходя из этого, Гарделл и сотрудни]чИ дезаминируют аминосахара нингидрином, а образовавшиеся при этом пентозы [c.291]

С нингидрином реагируют не только а-, но и р- и у-аминокислоты, а также аминосахара, пептиды, белки, амины, аммиак, мочевина, креатин и другие ампносоединення. Кроме того, разные аминокислоты дают окрашивание различной интенсивности. Поэтому колориметрический нин-гидринный метод применим для количественного определения только индивидуальных аминокислот и не пригоден для суммарного определения смеси аминокислот, а также в случае сложных биологических смесей, где могут присутствовать аммиак и другие аминосоединештя. В помет,епии, где проводится определение, не должно быть следов аммиака. [c.44]

Для обнаружения аминосахаров на бумажных хроматограммах применяют различные реагенты. Среди них можно упомянуть реагенты, действие которых основано на восстанавливающей способности этих сахаров это те же реагенты, что и для нейтральных сахаров, например щелочной раствор нитрата серебра [116, 185]. Однако применяемый для нейтральных сахаров реактив анилин — дифениламин — фосфорная кислота [126] не реагирует с аминосахарами и, следовательно, может иметь ценное применение. Все восстанавливающие сахара дают интенсивное красное окрашивание за 24 час при комнатной температуре или за 5 мин при 100° во влажной атмосфере после опрыскивания 0,5%-ным раствором хлористого трифенилтетразолия в хлороформе с последующей обработкой 0,5 н. водно-спиртовым раствором едкого натра (получаемого при разбавлении насыщенного водного раствора едкого натра спиртом) [123]. К более специфичным способам обнаружения аминосахаров относится применение нингидрина [116, 186, 187] или реагентов Эльсона — Моргана [111, 116]. [c.212]

Метод позволяет после окисления нингидрином смеси двух сахаров идентифицировать 2—5 мкг одного из них в присутствии 100 мкг другого [194]. Образующиеся пентозы идентифицируют хроматографией иа бумаге (например, в смеси к-бутапол — спирт — вода, 4 1 1, по объему) или распределительной хроматографией на колонках [133]. При этом нет необходимости в предварительном отделении аминосахаров от нейтральных сахаров и аминокислот. Метод можно использовать для количественных определений ясно, однако, что таким способом нельзя отличить в-глюкозадшн от в-маппоза-мина или D-галактозамин от о-талозамина. [c.213]

Хроматографию проводили на бумаге Р111гак РЫ-З в системе растворителей н-бутанол пиридин вода (6 4 3). Для обнаружения моносахаров и аминосахаров использовали щелочной раствор азотнокислого серебра и 0,2% раствор нингидрина в ацетоне. Газожидкостную хроматографию проводили на хроматографе Руе-ип1сат104 с пламенно-иони-зационным детектором на стеклянных колонках А-(150-0,4 см), содержащих 3% РЕ-1 на газохроме р (100—120 меш). Моносахара анализировали в виде ацетатов полиолов (175—225°, 5°/мин). [c.86]

Аминосахара можно обнаружить обычными реагентами на сахара, а также нингидрином, смесью диметиламинобензальде-гида и ацетилацетона и др. Олигосахариды удается различать с помощью реагента, представляющего смесь (5 5 1 по объему) 4%-ного этанольного раствора анилина, 4%-ного этаноль-ного раствора дифениламина и фосфорной кислоты (уд. масса [c.107]

Реакция на аминосахар 5 мг вещества растворяют в 1 мл вОды, прибав-л>1Ют 1 мл свежеприготовленного 0,2%-ного раствора нингидрина в бутиловом сшфте и 0,5 мл пиридина и нагревают реакционную смесь на водяной бане. В течение 5 мин появляется фиолетовая окраска Положительную реакцию дают неомицин, канамицин, паромомицин (мономицин А). [c.477]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология