Промотор, определение границ

Во всех трех системах подходы, использующиеся для характеристики промотора, одинаковы. Исследователь стремится in vitro внести в матрицу определенные изменения и только после этого помещает ее в систему транскрипции. Если оказывается, что определенный фрагмент ДНК способен инициировать транскрипцию, то делается вывод, что он способен выполнять функцию промотора. Затем определяют границы последовательности, образующей данный промотор. Для этого уменьшают размеры фрагмента с каждой из сторон до тех пор, пока в некоторой точке не пропадает инициирующая активность. Обычная схема такого эксперимента приведена на рис. 11.6. Левую границу промотора, находящуюся против хода транскрипции, можно легко определить, прослеживая постепенное удаление оснований с соответствующего конца фрагмента до тех пор, пока промотор не перестанет функционировать. Для определения границы промотора, находящейся по ходу транскрипции, необходимо сконструировать ДНК, в которой укороченный промотор повторно пришивается к транскрибируемой последовательности (поскольку иначе отсутствует продукт, необходимый для тестирования). [c.150]

Как видно из приведенных данных, Н2504, ВРз и некоторые другие катализаторы ориентируют вступающую алкилирующую группу главным образом в /гара-положение. Феноляты алюминия, окись алюминия, напротив, способствуют образованию орто-замещенных алкилфенолов. Преимущественно о-алкилфенолы образуются также при термическом алкилировании фенолов олефинами (в отсутствие катализаторов). Однако четкой границы между орто- и пара-направляющими алкилирование катализаторами провести нельзя. В определенных условиях они могут менять свою селективность. Так, Н2504, которая является типичным -алкили-рующим катализатором, рекомендуется [21] для получения о-трет-бутилфенола при непрерывной ее дозировке в реакционную массу в процессе алкилирования. Хлористый алюминий также способствует /г-алкилированию и обычно применяется в реакциях Фриделя— Крафтса, но вместе с тем описан [22] катализатор, приготовленный из фенола и хлористого алюминия с грег-бутил хлоридом в качестве промотора, обладающий избирательностью о-алкилирования. Селективность процесса может быть изменена н в отношении диалкилпроизводных. Так, указанный катализатор [22] в безводной среде дает продукт [23], совершенно не содержащий 2.6-диалкилфенола, однако в присутствии даже следов воды (6,2-10- —34-10- моля) выход 2,6-ди-грег-бутилфенола прн алкилировании фенола изобутиленом достигает 85—92%. [c.217]

Очень сложно влияние железа. В сплавах меди с очищенным кремнием железо в концентрации 0,5% способствует снижению избирательной активности. В сплавах же на основе технического кремния, содержащих алюминий и кальций, вполне допустима примесь железа до 4—5%, а в присутствии высокоэффективных промоторов — до 10 /о. В определенных концентрациях и в сочетании с отдельными элементами железо может быть использовано в качестве стабилизатора активности контактных масс [15, 16], поскольку некоторые вредные примеси концентрируются по границам фаз кремний—Ре312 (Ре512 образуется как в кремнии, так и в кремнемедных сплавах). [c.10]

А. М. Рубинштейн [49] показал, что подавляющее большинство твердых катализаторов является поликристаллитами с друзами размером приблизительно от 20—30 до 1000 А носители и некоторые промоторы препятствуют спеканию и росту кристаллов. П. Д. Данков и А. М. Рубинштейн нашли, что изменение каталитической активности в зависимости от дисперсности катализаторов проходит через максимум, соответствующий определенному размеру первичных кристалликов, что потом было связано с размером пор поликристаллитов и с электронным строением первичных кристаллов. А. А. Баландин [5] и А. М. Рубинштейн [49] систематически изучали зависимость каталитической активности от строения решетки кристалла от различия в ограпении кристаллов, а отсюда — в константах решетки, от деформации решетки, контролируемой рентгеноструктурным методом. Ими были установлены наиболее активные места в структуре смешанных катализаторов — межфазовые границы [66]. [c.88]

Прогресс в бактериофагии обусловлен прежде всего приложением к бактериофагам (в том числе фагам промышленных бактерий) принципов генетических исследований и сосредоточением усилий многих исследователей иа изучении относительно небольшого числа фагов (лямбдоидные фаги, группа Т-четных фагов и др.), послуживших основными фаговыми моделями при разработке принципов молекулярной генетики. Исследование ряда модельных фагов достигло сейчас очень высокого уровня. Для некоторых из них полностью расшифрована нуклеотидная после-довательнось генома, установлены границы генов, определено положение многих мутаций в последовательности нуклеотидов, выявлены промоторы, операторы, терминаторы, определены возможные рамки считывания и соответствующие им белковые продукты и т. д. Вместе с тем продолжается выявление и новых фагов. Некоторые из них становятся удобными моделями для решения определенных проблем. Например, липидсодержащие бактериофаги используют как модель для изучения структуры мембраны бактериофаги, геном которых представлен несколькими фрагментами РНК, служат хорошей моделью при изучении некоторых сторон репликации вирусов с такими же геномами бактериофаги-транспозоны — прекрасная модель в изучении механизмов транспозиции, играющих существенное значение в канцерогенезе, эволюции и т. д. [c.215]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология