Биомасса, измерение плотности

Для определения биомассы можно использовать также методы учета сухого вещества в единице объема (высушивание до постоянного веса), нефелометрические измерения плотности суспензий, а также рефрактометрические методы измерения сухого вещества по показателям рефракции (Фихман, 1967). [c.203]

Косвенные методы. 1. Для определения клеточной массы весьма полезны методы, основанные на измерении мутности клеточных суспензий. На практике обычно определяют оптическую плотность суспензии (измерение экстинкции, турбидиметрия). Для некоторых целей более точные результаты дает определение светорассеяния (нефелометрия). Однако прямая (линейная) зависимость между обоими этими показателями и бактериальной массой наблюдается лишь при очень низких плотностях клеточных суспензий. Поскольку рассеяние света зависит от диаметра, формы и показателя преломления рассеивающих частиц, в том числе клеточных включений, приходится от случая к случаю проверять соотношение между оптическими величинами и более прямыми показателями, такими как сухая биомасса, содержание в ней азота или содержание углерода. 2. Показатели интенсивности метаболизма, непосредственно связанные с ростом (поглощение О , образование СО2 или кислот), могут служить адекватной мерой бактериальной массы. К такого рода определениям прибегают в тех случаях, когда другие методы оказываются непригодными, например при очень малой плотности клеточных суспензий. Для измерения можно применять титрометрические, манометрические, электрохимические и другие методы. [c.192]

Представленная на рис. 10.1 кривая роста идеализирована и отвечает условиям постоянной морфологии клеток при их асинхронном бинарном делеции. При этом одновременно с ростом биомассы происходит увеличение числа клеток и постоянная утилизация субстратов. Вариации в кривой роста — обычное явление. Морфологические изменения культуры, такие, как увеличение мутности, коэффициента преломления, размера отдельных клеток или их агрегации, могут приводить к кажущимся изменениям кривой роста, если скорость роста определять с помощью оптических измерений. Так, бактериальные клетки из культур в стационарной фазе часто более прозрачны, чем клетки из культур в экспоненциальной фазе. В результате кривая роста, построенная в виде зависимости логарифма оптической плотности от времени, отражает кажущееся снижение концентрации клеток в стационарной фазе по сравнению с концентрацией, достигнутой к концу экспоненциальной фазы. В этом случае измененная (аберрантная) кривая роста отражает скорее изменение морфологических характеристик клеток, чем изменение их количества. [c.380]

Количество биомассы используемых клеток удобно определять по калибровочной кривой, отражающей зависимость между оптической плотностью при 420 нм (определяемой с помощью колориметра) суспензии клеток в 0,05 М натрий-фосфатном буфере. pH 7,2, и сухим весом бактерий. Культуры должны быть разбавлены соответствующим образом, так чтобы зависимость между оптической плотностью и сухим весом была линейной (разд. 25.2.2). В описываемых ниже экспериментах в качестве относительной меры при измерении био- [c.392]

Количество водорослевых клеток обычно выражают в миллионах клеток на 1 мл или миллиардах клеток на 1 л. Если окраска суспензии водорослей не меняется, т. е. не происходит изменения зеленого цвета культуры, то подсчет клеток в камере можно заменить измерением плотности суспензии на ФЭК с последующим сравнением оптической плотности и с числом клеток в определенном объеме по заранее составлетГному калибровочному графику. Кроме того, результаты наблюдения выражают в весовых единицах, определяя биомассу водорослей по количеству сухого вещества клеток в литре суспензии водорослей. Для этого определенный объем суспензии водорослевых клеток (25—50 мл) отфильтровывается на предварительно взвешенный мембранный фильтр № 3 или № 4 и доводится до постоянного веса в сушильном шкафу при температуре 105—110°С. Биомассу выражают в миллиграммах сухого вещества в I л. [c.224]

Б начале процесса почкования значительно уменьшается объем родительской клеткп. Измерение объемов клеток с образующимися почками показало, что объем клеток уменьшается с 350 до 230 мк причем эта потеря объема не компенсируется объемом развивающейся почки (Johnson, 1965). Возможно, что уменьшение объемов клеток в начале почкования связано с изменениями вакуолярного аппарата. Измерения плотности клеток в начале почкования показывают, что плотность клеток коррелирует с размерами вакуолей. Большие вакуоли, характерные для покоящихся клеток, в начале почкования сморщиваются и распадаются на более мелкие, и одновременно с этим увеличивается плотность клеток. По мере роста почки вакуоли увеличиваются в размерах и сливаются, а плотность клеток уменьшается. При этом биомасса клеток по содержанию в них сухого вещества остается постоянной па протяжении почти всего цикла почкования и быстро возрастает только к моменту созревания почки. Концентрация белка экспоненциально увеличивается по мере роста почки, а концентрация нерастворимых углеводов, главным образом структурных полисахаридов, увеличивается в течение роста ночки и синтеза клеточной стенки (Wiemken et al.. 1970). Эти авторы предполагают, что цикл почкования у дрожжей сопровождается циклическими изменениями вакуолярного аппарата, которые, в свою очередь, связаны с циклическими изменениями в исиользовании эндогенных и экзогенных субстратов в течение этого процесса. [c.12]

Удивительно, что точность (4-6 знаков) измерений плотности, обеспечиваемая )тими приборами, долго не находила сколько-нибудь заметного применения в био-югии. Недавно, однако, показано [7-10], что АРД-приборы могут функционировать сак линейные измерители биомассы микробов в исключительно широком интервале тлотностей культур (рис. 28.6). Следовательно, их можно применять как для контроля выросших культур, так и для мониторинга их роста [10]. Преобразователь досгаточно [c.453]

Наиболее уязвимым местом культивирования в турбидостате является точность регулирования биомассы. Больщинство старых методов регулирования плотности популяции основано на оптическом измерении (в рассеянном или проходящем свете) с помощью фотоэлектрического датчика. Недостатком этих методов являются помехи, вызываемые пеной и пузырьками, которые образуются при аэрации, а также ростом клеток на стенках ферментера и, что более важно, на оптическом измерительном устройстве. Если от помех, вызываемых пузырьками, можно избавиться, используя внещнюю проточную кювету, то пена создает серьезные проблемы. Зарастание бактериями оптических поверхностей можно частично преодолеть их протиранием, однако это малоэффективный прием. Возлагаются надежды на новые методы волоконной оптики, однако они еще не апробированы. [c.410]

После окончания диалога (рис. 36, см. цв. вклейку) начинается отсчет времени проведения эксперимента через интервалы, указанные исследователем, на экран дисплея выводятся значения прироста оптической плотности и удельной скорости роста по всем 50 датчикам блока измерения. Через 5—8 ч работы АРМа на дисплей выдаются графики зависимости концентрации биомассы Е. oli О 139 при росте на различных источниках углерода (рис. 37) и сообщение НАИЛУЧШИМИ ИСТОЧНИКАМИ УГЛЕРОДА СРЕДИ ИССЛЕДУЕМЫХ ДЛЯ РОСТА Е. 0L1 О 139 ЯВЛЯЮТСЯ С1, С2 [c.96]

Турбидостатный режим культивирования базируется на прямом контроле концентрации биомассы. Наиболее распространенным методом ее определения является измерение светорассеивания с помощью фотоэлементов. Повышение концентрации клеток и соответственно оптической плотности автоматически ускоряет проток жидкости и наоборот. По своей конструкции турбидостаты отличаются от хемостатов лишь системами контроля скорости протока. [c.32]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология