ТЭАЭ-целлюлоза

Разделение фосфолипидов на классы обычно осуществляют с помощью адсорбционной хроматографии на колонках с кремневой кислотой, силикагелем или тонкослойной хроматографией на силикагеле. В ряде случаев проводят предварительное разделение кислых и нейтральных фосфолипидов на колонках с модифицированными целлюлозами (ДЭАЭ- и ТЭАЭ-целлюлозы) [7, р. 272]. Для вымывания отдельных классов фосфолипидов при хроматографировании на колонке с кремневой кислотой преимущественно применяют смесь хлороформ—метанол с возрастающим количеством метилового спирта (4 1, 3 2, 1 4). При этом элюируются фосфолипиды в следующей последовательности фосфатидилэтаноламины, фосфоинозитиды, фосфатидилхолины, сфингомиелины. [c.189]

К анионитам на основе целлюлозы относятся диэтиламиноэтилцеллюлоза (ДЭАЭ-целлюлоза), триэтиламиноэтилцеллюлоза (ТЭАЭ-целлюлоза) эктео-ла-целлюлоза, аминоэтилцеллюлоза (АЭ-целлюлоза). К катионитам на основе целлюлозы относятся карбоксиметилцеллюлоза (КМ-целлюлоза), сульфо-этилцеллюлоза (СЭ-целлюлоза), фосфорилированная целлюлоза. Характеристика некоторых используемых в тонкослойной хроматографии типов ионитов на основе целлюлозы приведена ниже [c.111]

Наиболее слабым анионитом является ПАБ-целлюлоза. Попытки синтезировать сильно основной анионит, содержащий четвертичные аммонийные группы, не увенчались успехом. ТЭАЭ-целлюлоза оказалась весьма близкой по своим свойствам к ДЭАЭ-целлюлозе [9]. [c.213]

На рис. 9 приводится пример фронтального процесса на ТЭАЭ-целлюлозе [49]. Смесь глюкозидаз в 0,070 М фосфатном буфере pH 6,0 непрерывно фильтровали через колонну с целлюлозным ионитом. Белки смеси, вследствие их неодинакового сродства к сорбенту, взаимно вытесняют друг друга и выходят в виде отдельных фронтов. Первый фронт образован наименее сорбируемой инвертазой, а последующие — тремя различными мальтазами. Увеличение ионной силы буфера приводило к тому, что глюкози-дазы не разделялись и выходили в виде одного фронта. Таким образом, вытеснение белков друг другом и разделение их на от- [c.220]

Рис. 9. Фронтальшлй анализ глюкозидаз на ТЭАЭ-целлюлозе в 0,07 М фосфатном буфере с pH 6,0 [49].

Условия опыта колонка (1x6 сж) с 0,5 г ТЭАЭ-целлюлозы. Раствор ферментов содержит 220 Е/мл инвертазы, 360 Е/мл мальтазы и 4,8 мг/мл белка. Скорость фильтрации 3 капли/мин,-, объем фракций — 1,9 мл. [c.221]

На рис. И показана элюция 0,25 М трис-НС1 буфером с pH 7,3 с ТЭАЭ-целлюлозы ферментов хрена, сорбированных из 0,02 М буфера [51]. Как видно из рис. И, ион СГ является сильным вытеснителем в отношении нероксидазы и слабым — для фосфатазы. [c.224]

Рис. 11. Разделение пероксидазы и фосфатазы хрена на ТЭАЭ-целлюлозе [51].

Для перевода аминогрупп хотя бы частично в аммониевые производится алкилирование амина, присоединенного к целлюлозе или к сетчатому декстрану. Алкилирование проводят этил-бромидом в этаноле при температуре кипения растворителя в течение 4 час. (ТЭАЭ-целлюлоза или ТЭАЭ-декстран). По-види-мому, степень конверсии третичного амина в аммониевое основание невелика, о чем можно судить по кривым потенциометрического титрования ДЭАЭ- и ТЭАЭ-целлюлозы (рис. 47). [c.128]

Начальные, промежуточные и конечные фракции асимметричного пика при хроматографии на ТЭАЭ-целлюлозе не показали заметного различия в антитрипсиновой активности, содержании нейтральных сахаров (по орцину) и в соотношении маннозы к галактозе [19]. Содержание сиаловой кислоты лри определении методом с дифениламином варьировало от 1% в первых л до 2% в последних фракциях, но было одинаковым (около 0,5%) при определении прямым методом Эрлиха (см. том 1, гл. 8). Выделение овомукоида [c.26]

Большую ценность в методическом отношении представляют работы Т. И. Тихоненко [105, 110], который применил для колоночной хроматографии в препаративных целях ДЭАЭ-целлюлозу в волокнистой форме, отличающейся высокой проходимостью матрицы для концентрированных белковых растворов. Одновременно была решена проб-лема обработки больших количеств вируссодержащего материала (до 6—25 л), концентрирования и очистки вирусов до степени, пригодной ддя работы на ультрацентрифуге, В дальнейшем подобная форма ионообменников (волокнистые ДЭАЭ- и ТЭАЭ-целлюлозы) была успешно применена для очистки и фракционирования/Бируса Сендай [9, 48, 49], вируса гриппа [54, 64, 89] и классической чумы птиц [124, 125] [c.122]

Для разрушения миксовирусов с целью освобождения внутреннего РНП часто также применяют обработку дезоксихолатом натрия по методу Сокола и Шрамека [753], Этот метод был успешно применен Ф. Л. Киселевым с сотр. [48] при выделении РНП из вируса Сендай, Очищенную вирусную суспензию обрабатывают ДХН в соотношении вирус — ДХН 1 4 при pH 7 в течение 5 минут при 20° Разрушенный вирус фракционируют либо центрифугированием в градиенте 20—60%-ной сахарозы, либо хроматографией на ТЭАЭ-целлюлозе [48]. В первом случае обнаруживаются три фракции, причем наверху пробирки локализуются компоненты вирусной оболочки, в центре пробирки (в зоне 40%-ной сахарозы) — вирусный нуклеопротеид и на дне пробирки — его агрегаты. [c.175]

Сходное разделение наблюдалось при хроматографии на ТЭАЭ-дел ЛЮ лозе. Адсорбция нативного РНП на ионо-обменнпке не происходит. При регенерации колонки щелочью из нее элюируются различные компоненты вирусной оболочки и свободные нуклеиновые кислоты. Последний метод особенно удобен, так как нативный вирус Сендай после адсорбции на этом ионообменнике элюируется 0,6 М Na l [238], Следовательно, возможные загрязнения, связанные с компонентами оболочки вириона, после обработки ДХН будут сорбироваться вместе с ними на ТЭАЭ-целлюлозе, в то время как освобожденный РНП не сорбируется на этом ионообменнике [c.176]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология