Вирусы Коксаки

Изучение противовирусной активности проводили в НИИ эпидемиологии и микробиологии НАН Белоруси (Минск). Определение токсичности исследуемых соединений и их антивирусной активности проводили в культуре, которая перевивалась с клеток почки зеленой мартышки - BGM в логарифмической фазе роста культуры (третьи сутки ш vitro). В качестве ростовой среды использовали Даль-беко модифицированную среду Игла (ДМЕМ) с 10% эмбриональной сывороткой крупного рогатого скота и добавлением антибиотика гентамнцина в дозе 100 мкг/мл. Противовирусную активность препаратов по отношению к РНК-содержащим вирусам Коксаки БЗ (Nan y), ЕСНО-30, и ДНК-содержащего вируса простого герпеса [c.284]

Полиовирусы (1 — 3-й типы), большинство вирусов Коксаки В, E HO, некоторые типы вирусов Коксаки А (7, 9, 14, 16, 21-й) при размножении в культуре клеток почек обезьян проявляют ЦПД (см. рис. 3.2). В культуре клеток почек эмбриона человека, амниона [c.297]

Вирусы Коксаки группы А и В, полиовирусы и другие энтеровирусы [c.297]

Вирусы Коксаки групп А и В [c.297]

Вирусы Коксаки А из материала от больных наиболее успешно удается вьщелить только на однодневных мышах-сосунках, так как они не размножаются в большинстве культур клеток обезьян и человека. [c.298]

Идентификацию штаммов вирусов Коксаки А, В и E HO, обладающих гемагглютинирующими свойствами, осуществляют с помощью РТГА с использованием антигенов из зараженных клеточных культур и 1%-й взвеси эритроцитов человека группы 0(1). [c.298]

Оптимальные значения pH удаления коагуляцией бактериофага Т-4 составляли 5,1—5,5, бактериофага М-2—5,9—6,1, вирусов коксаки и бактериальных —5,5—5,6 [185, 192, 195]. [c.234]

Вирусы относятся к ультрамикробам, которые настолько малы, что проходят через мембранные фильтры, задерживающие обычные бактерии. Так, размер частиц вируса полиомиелита составляет 8—17 нм, вируса Коксаки и E HO — 20—30 нм, инфекционного гепатита — 40-56 нм. Вирус полиомиелита выделен также в форме кристаллического протеина, обладающего инфекционными свойствами. Для вирусов характерны отсутствие клеточного строения, простота химического состава (обычно гидратированный белок и специфическая нуклеиновая кислота), своеобразие обмена веществ (не имея своей ферментативной системы, они являются паразитами живой клетки животных и растений). Вирусы не размножаются на искусственных питательных средах накапливаются они и проходят определенный цикл развития в соответствующих живых клетках. Действие многих антибиотиков и химиотерапевтических веществ на них малоэффективно. [c.186]

Значительная часть патогенных возбудителей удаляется при обработке-воды коагулянтами. Джилкриз и Келли [155] установили, что при экспериментальном заражении речной воды коагуляция сернокислым алюминием-удаляет вирусы на 40%, кишечную палочку — на 85%, а бактериофаги кишечной палочки — на 90%. Чанг с сотрудниками [156, 157] отмечает, что прибавка к воде сульфата алюминия удаляет вирус Коксаки на 98,6%. Обнаружено, что процессы обеззараживания протекают параллельно с осветлением воды. При этом реагенты не инактивируют микроорганизмы, а лишь-увлекают их в осадок. [c.349]

Франкова, Дожанская и другие [158, 159] также изучали удаление вирусов Коксаки А при обработке воды сульфатом алюминия. Они показали, что чем больше концентрация вируса, тем большая доза коагулянта требуется, чтобы сделать воду пригодной для питья. Дозы А12(504)з до 100 мг/л снижают содержание вируса в воде, но не делают ее безопасной для питья. При введении в воду вируса в виде суспензии тканевой или мозговой культуры достаточно полное удаление ее достигается при дозе реагента 200— 500 мг/л. В воде, зараженной культурой вируса, очищенной пропуском через мембранные фильтры, коагуляция удаляет вирус лишь в небольшой степени. Добавление поливинилового спирта (0,01%) при обработке воды А12(504)з значительно повышает эффективность очистки. Высокий эффект коагуляции достигается при pH, соответствующем изоэлектрической точке. В этом случае вода может быть очищена до степени, делающей ее пригодной для питья. [c.349]

Энтеровирусы человека. Некоторые вирусы человека могут передаваться через воду при ее загрязнении фекалиями [146]. К ним относятся возбудитель инфекционного гепатита, энтеровирусы (полиовпрус, вирусы Коксаки и E HO), аденовирусы и реовнрусы. Классификация вирусов человека включает приблизительно 100 типов, и все они, за исключением неизвестных возбудителей инфекционного гепатита, были найдены в сточных водах и загрязненных открытых водоемах [147]. [c.190]

Полновнрусы, вирусы Коксаки и E HO выживали в водах пз 4 фермерских прудов прн 20 н 4°С до 9 нед [161]. В той же воде при добавле[пп1 в нее 95 г хлорида магнпя вирусы выживали до 12 нед, в присутствии солей марганца — до 5 нед, в присутствии солей железа менее 3 нед. [c.192]

А. Выживаемость в морской воде. Большие количества вирусов содержатся в фекалиях [24] и могут длительно выживать в природных водах. Ни первичная обработка, ни вторичная очистка сточных вод не снижают существенно содержание в них кишечных вирусов, хлорирование также в этом плане часто неэффективно [25]. При хранении умеренно загрязненных сточных вод при средних температурах наблюдается инактивация 99% вирусов Коксаки через 7 дней. Более длительно они выживают при низких температурах [26]. На рис. 51 показано влияние температуры воды на выживаемость различных кишечных вирусов [27]. Большинство вирусов выживало в водах эстуария более 56 дней зимой и менее 32 дней летом. В загрязненной воде нолиовирусы выживали 35 [c.233]

Вода, используемая для питья и купания, может служить источником распространения большинства вирусов. Группа Pi orna наиболее часто присутствует в сточных водах. Она включает нолиовирусы, вирусы Коксаки и E HO. В фекалиях нередко обнаруживаются аденовирусы. [c.278]

Изучение динамики инактивации аттенуированного (LS 2 ав) и вирулентного (Магоней) штаммов вируса полиомиелита, серотип, а также вирусов Коксаки А-7, В-3 и ЕСНО-7 показало, что исследованные вирусы были одинаково чувствительны к действию продуктов электролиза поваренной соли. Вирулицидное действие продуктов электролиза зависит от тех же факторов, что и бактерицидное. Исходная концентрация вирусов в обрабатываемой воде определяла в значительной мере дозу, а также продолжительность контакта, обеспечивающие желаемый эффект. Кроме того, установлено, что эффект инактивации продуктами электролиза энтеровирусов и фагов кишечной палочки зависит от активной реакции (pH) среды. Аналогичные результаты были получены при инактивации вируса хлором. Так, при одинаковом содержании остаточного хлора в воде с pH 7,3—7,6 инактивация вируса и фага кишечной палочки проходит [c.101]

В течение первых 5 мин озонирования озон расходовался главным образом на окисление мертвых органических веществ. При этом в течение первой минуты озонирования так называемые легкоокисляемые вещества были полностью окислены. Инактивация основной массы энтеровирусов произошла на б—7-й минуте озонирования — в момент появления следов остаточного озона в воде. Через 15 мин озонирования в воде оставалось около 0,3% первоначального количества вирусов полиомиелита и около 0,1% вирусов Коксаки, концентрация остаточного озона составляла 0,2 мг/л. Фактически процесс инактивации энтеровирусов приблизился к полному завершению. Динамика инактивации энтеровирусов, наблюдавшаяся в опытах, указывает на то, что вирусы Коксаки В типа 3 несколько менее устойчивы к действию озона, чем вирусы полиомиелита серотина 3. [c.114]

Таким образом, концентрация остаточного озона в воде порядка 0,2 мг/л свидетельствует о высокой степени инактивации энтеровирусов (99,7—99,9%). Вирусы Коксаки В типа 3 менее стойки к действию озона, чем вирусы полиомиелита серотипа 3. Озонирование воды является эффективным методом обеззараживания в отношении энтеровирусов. [c.114]

Фекальными отходами людей могут быть обусловлены следующие болезни бактериальные инфекции — тифоидная лихорадка, паратиф, холера, шигеллоз (бациллярная дизентерия) вирусные инфекции — полиомиелит, вирусы Коксаки, инфекционный гепатит (существует много других кишечных вирусов) протозоальные инфекции — гистолитическая амебная дизентерия гельминтозы — солитеры рыбный, бычий и свиной, острица, червеобразная аскарида, власоглав человеческий, крючкообразный глист. [c.135]

В. П. Широбокову [184] удалось показать, что крымский бентонит (Курцивское месторождение), переведенный в Na-форму и обработанный по методу Френкель-Конрата 11851, адсорбирует из водной взвеси больше 99% исходного количества вирусов. При этом для полной адсорбции используются небольшие концентрации бентонита, в частности, даже концентрация бентонита 0,025% обеспечивает практически полное удаление вируса Коксаки В- . [c.309]

ЕСНО-вирусы. Вирусы Коксаки [c.133]

Вирусы Коксаки - типичные пикорнавирусы. [c.134]

Некоторые вирусы Коксаки способны вызывать гемагглюти-нацию эритроцитов человека. [c.134]

Инфекционный процесс, вызванный вирусами Коксаки, сопровождается синтезом типоспецифических антигенов, обнаруживаемых в сыворотке через неделю после начала заболевания. Лабораторная диагностика [c.135]

Л, В. Григорьева [12] для исследования бытовых стоков и вод открытых водоемов на вирусное загрязнение применяла также сыворотку крови, которую добавляли в воду. Белки сыворотки с адсорбированными на них вирусами высаливались сернокислым аммонием и очищались диализом в проточной водопроводной воде. Л. В. Григорьева и Т. В. Старовойтова [13], использовавшие указанные методические приемы, выделили вирусы Коксаки из 29,4% образцов сточных вод и из 14,0% проб воды из рек Украины. [c.70]

В. П. Широбоков [69], в частности, использовал крымский бентонит Курцивского месторождения. Автору удалось показать, что на геле бентонита адсорбируется больше 99% исходной инфекционности вирусов Коксаки. При этом требуется очень небольшое количество бентонита, даже при концентрации его в 0,025% происходит практически полная адсорбция вируса Коксаки В1 из вируссодержащей суспензии. Учитывая, что предлагаемый бентонитовый метод концентрирования вирусов прост, не требует сложного и дорогостоящего оборудования и поэтому доступен любой вирусологической лаборатории, он может оказаться перспективным при разработке методов индикации вирусов из воды. В этом убеж- [c.72]

Установлено [74], что вирус полиомиелита может быть жизнеспособным в водопроводной воде более 100 дней. Энтеровирусы в сточной воде могут сохраняться месяцами. Так, вирус Коксаки А5 не терял полностью инфекционных свойств в течение четырех месяцев, если температура была не выше 8—10° С [84]. При температуре 4° С вирусы Коксаки А5 выживали в сточной воде в течение 200 дней, что в 1,5—2 раза больше, чем в естественной, и в 7—11 раз больше, чем в морской воде. Большую выживаемость вирусов в сточной воде исследователи объясняют защитным влиянием органических примесей, содержащихся в бытовых сточных водах. Так, вирус в осадке сточной воды обнаруживался даже на 300-й день, если он сохранялся при температуре 4° С [12]. [c.77]

Длительность выживания вирусов Коксаки в авто-клавированной водопроводной воде, по данным [12], зависит от температуры хранения и концентрации вируса в известной мере она обусловлена также индивидуаль- [c.77]

Исследования [84] показали, что вирус Коксаки удается разрушить с помощью активного хлора, содержащегося в дозе, большей чем 0,2 мг/л. Изучено влияние хлора на вирусы полиомиелита. Вирусы полиомиелита [c.78]

Проанализированы литературные данные об устойчивости вирусов к действию препаратов хлора [76]. Оказалось, что вирус Тейлора устойчивее вируса Коксаки А2 Последний устойчивее вируса полиомиелита I типа Выше указывалось также, что аттенуированные штаммы вирусов устойчивее вирулентных. Если проводить хлори рование питьевой воды дважды, то вирусы полностью инактивируются. При этом дозировка реагента до очистки должна обеспечивать остаточный хлор в концентрации 1 мг л. Время контакта воды с хлором не менее 30 мин. После очистки проводят повторное хлорирование воды. Надежды на успешную инактивацию вирусов могут не оправдаться, если вирусная частица окружена органическими или неорганическими примесями. Известно [106], что примеси образуют на поверхности вирусной частицы защитную оболочку, ограждающую ее от действия хлора. [c.79]

Вирусологическими, бактериологическими и санитарно-химическими исследованиями процесса очистки бытовых сточных вод на лабораторных моделях сооружений подземной фильтрации и в естественных условиях ими установлено, что бытовые стоки хорошо освобождаются от вирусов. В качестве тест-организмов использовались вирусы Коксаки А5, А14 и бактериофаг кишечной палочки № 163. Хотя после искусственного инфицирования сточная жидкость содержала Ю ИДбо вируса мл, в 0,1— 1,0 жл фильтрата сточной жидкости, полученного после сооружений, обнаружить вирусы не всегда удавалось. Поэтому исследователи для концентрирования вирусов использовали ионообменники, в частности ЭДЭ-10П. Однако выделить вирусы из фильтрата позже 20 дня со времени внесения не удавалось. В то же время случаи выделения в упомянутый срок составляли не более сотых долей процента (0,042% и близкие к этому цифры). [c.83]

Эффективность удаления микроорганизмов из воды при коагуляции была предметом многочисленных исследовании. Установлено [84], что ири экспериментальном заражении речной воды коагуляция с помощью квасцов удаляет вирусы на 40%, кишечную палочку на 85%, а бактериофаги кишечной палочки — на 90%. Добавлением к воде 25 мг л сернокислого алюминия вирус Коксаки удаляется на 98,6%. Если эта доза сернокислого алюминия используется в двухэтапном процессе коагуляции, то при этом вода освобождается от вируса иа 99,9%, от кишечной палочки на 99,99% [75]. Этими исследованиями обнаружено, что процессы обеззараживания протекают параллельно с осветлением воды. При этом реагенты не инактивируют микроорганизмы, а лишь увлекают их в осадок. Эти наблюдения в известной мере проливают свет на механизм действия коагулянтов и других материалов, использующихся для очистки и обеззараживания воды. Все же механизм удаления вирусов недостаточно изучен. Известно [100], что энтеровирусы можно концентрировать на гидроокиси алюминия. Приведенные данные позволяют предполагать участие [c.88]

Одну пару камер разъединяли через 2, 4, 6, 8, 12, 24, 48 ч контакта, затем зараженную зеркальную и клеточные культуры помещали отдельно в разные термостаты. Демонтирование камер, фиксирование, окраску и морфологические исследования стекол проводили через 18, 24, 48 ч раздельного культивирования. Оказалось, что минимальное время контакта, необходимое для появления зеркального ЦПЭ, равно 4 ч для вируса РРУ и 6 ч для аденовируса, вируса Коксаки А-13 и сулемы. Более короткая экспозиция четкого эффекта не дает. Зеркальный эффект при [c.29]

В качестве экстремального агента в работе использовали три различных вида вируса Коксаки А-13 (штамм 401 и 639), вирус классической чумы птиц и аденовирус (штамм 5) химический клеточный яд — двухлористую ртуть (сулему) и ультрафиолетовую радиацию (экспозиция 40—45 с лампа БУВ-30, расстояние [c.31]

В качестве экстремальных агентов использовались вирус Коксаки А-13, вирус классической чумы птиц РРУ), двухлористая ртуть (сулема), ультрафиолетовая радиация. [c.32]

Вирусы Коксаки А-13 размножаются в первичных культурах клеток тканей и органов эмбриона человека и приматов, в культурах почечной и амниотической тканей человека. [c.35]

Цитопатнческос действие вируса Коксаки А-13 выражается в дегенерации клеточных культур, завершающейся полной деструкцией клеток с последующим их отслоением и освобождением 03 них вирусных частиц. Р1а окрашенных препаратах ЦПЭ характеризуется пикнозом ядер, исчезновением ядрышек, появлением в центре клеток РНК-содержащих эозинофильных масс, которые, увеличиваясь в размерах, смещают ядро к периферии клетки. [c.35]

Биологической особенностью вирусов Коксаки А-13 является способность вызывать у новорожденных мышей вялые параличи, обусловленные распространенным миозитом с острым воспалением и некрозом (типа ценкеровского) скелетных мышц. [c.35]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология