Пурины хлорной кислотой

Нуклеиновые кислоты тоже гидролизуют сильной кислотой. Например, нагревания в течение 1 ч при 100 °С в 12 н. хлорной кислоте достаточно для расщепления молекулы до составляющих ее оснований. В ДНК Ы-гликозидные связи более лабильны, чем в РНК, связи с пуринами более лабильны, чем с пиримидинами. Последнее обстоятельство позволяет провести весьма полезную операцию если оставить ДНК на ночь на холоду при pH 2, произойдет полная ее апуринизация. Образующийся полимер известен как апуриновая кислота (табл. 2-11). [c.166]

Хемилюминесценцией сопровождаются некоторые окислительно-восстановительные процессы взаимодействие гипохлоритов натрия или калия с аммиаком, роданидом аммония, 2,6,8-триокси-пурином, оксамидом, аспарагином взаимодействие хлорноватой, бромноватой кислот или их солей со щелочными растворами спиртов (метиловый, этиловый, пропиловый, изобутиловый, амиловый, цетиловый) взаимодействие хлорной кислоты с гидратом окиси кальция, персульфата калия с формальдегидом и параформальдегидом, брома с водным аммиаком. [c.7]

Сам ксантин почти не изменяется при кипячении со щелочами, метилированные же ксантины расщепляются, и тем легче, чем больше в них метильных групп [1]. Открытие большинства пуринов основано на реакции окисления, при котором разрывается имидазольное кольцо. В случае мочевой кислоты образуется аллоксантин, дающий с аммиаком аммонийную соль пурпурной кислоты, так называемый мурексид, легко распознаваемый по красно-фиолетовой окраске. Окисление ведут хлорной водой, бромной водой, азотной кислотой [c.350]

Расщепление пиримидиндезоксинуклеотидов и пиримидиннуклеозидов с умеренным выходом осуществляют получасовым нагреванием при 175 с 98—100%-ной муравьиной кислотой в толстостенной стеклянной трубке, запаянной с одного конца [94, 100]. Можно также проводить гидролиз с 72%-ной хлорной кислотой. Максимальный выход пуринов, и пиримидинов получают при нагревании в течение 1 час при 100° [59, 100]. [c.441]

Другой удобный, но менее употребительный метод определения дезоксипентозы основан на появлении розовой окраски при нагревании ДНК с цистеином и серной кислотой [15]. Следующий метод, при помощи которого в известных условиях можно определять дезоксипентозу как пурин-, так и пиримидиннуклеотидов, сводится к цветной реакции дезоксипентозы с триптофаном и хлорной кислотой [16]. [c.104]

После того как РНК и ДНК разделены нри помощи метода Шмидта—Таннгаузера или метода Огура — Розен, количество пуринов и пиримидинов, а следовательно, и количество нуклеиновых кислот в каждой фракции легко определить при помощи кварцевого спектрофотометра, измеряя поглощение в ультрафиолете [21, 38, 39]. При этом следует соблюдать некоторые меры предосторожности [41]. При проведении подобного рода измерений для экстрагирования и осаждения рекомендуется использовать хлорную кислоту, поскольку у нее поглощение в ультрафиолетовой области менее выражено, чем у трихлоруксусной кислоты (последняя характеризуется значительным поглощением в области 260 ммк). [c.104]

Определению нуклеотидного состава нуклеиновой кислоты тем или иным методом должен предшествовать ее гидролиз. РНК и ДНК можно гидролизовать до входящих в них оснований обработкой 98%-ной муравьиной кислотой при 175° в течение 30 мин или 12 н. хлорной кислотой при 100° в течение 1 час [8, 9]. Ни один из этих методов не является строго количественным, поскольку в первом случае наблюдается низкий выход урацила, а во втором — разрушение части тимина. ДНК можно гидролизовать также обработкой 6 н. НС1 при 120° в течение 2 час, однако при этом теряется часть пуринов [25]. Удовлетворительный гидролиз РНК до смеси пуриновых оснований и пиримидиновых нуклеотидов достигается в результате нагревания с 1 н. соляной кислотой при 100° в течешге 1 час [5]. Количественный гидролиз РНК до нуклеозид-З -фосфатов легко вызвать обработкой 0,3 н. NaOH при 37° в течение 16 час. Следует избегать употребления слишком крепкой щелочи, чтобы не вызвать дезаминирования цитидиловой [c.29]

По методу Огура и Розен [38], предназначенному первоначально для работы с растительными тканями, прежде всего удаляют кислоторастворимые вещества и липиды. Затем выделяют РНК, обрабатывая остаток ткани 1 н. хлорной кислотой в течение 18 час нри 4°. Для выделения ДНК полученный остаток обрабатывают 0,5 н. хлорной кислотой при 70° в течение 20 мин. При работе с животными тканями нагревание рекомендуется проводить до 80° в течение 30 мин в присутствии 1 н. хлорной кислоты. Содержание нуклеиновой кислоты в каждом из экстрактов определяют затем по содержанию фосфора, пентозы (или дезоксипентозы) или пуринов и ниримидинов. Недостаток этого метода заключается в том, что некоторое количество ДНК может экстрагироваться холодной хлорной кислотой и переходить во фракцию РНК [35]. [c.102]

Основания пуринов и пиримидинов, которые, как считают, находятся в гуминовом остатке, можно выделить при гидролизе 72%-ной хлорной кислотой (H IOJ в течение 1 ч при температуре 100° С. К гидролизной жидкости добавляется 2 н. раствор едкого калия до установления pH 4. Осадок, в котором находятся хлорат [c.20]

Госфармакопея заменяет хлорную воду, которая не всегда имеется в свежем виде в лаборатории, смесью соляной кислоты и бертолетовой соли. При этом дается следующая пропись 0,2 г коффеина обливают в фарфоровой чашечке 2 мл соляной кислоты, прибавляют кристаллик бертолетовой соли и смесь выпаривают на водяной бане досуха. Остается желтое или красноватое пятно, которое при смачивании раствором аммиака окрашивается в пурпуровый цвет. Вместо хлорной воды можно взять соляную кислоту и перекись водорода. Эта реакция характерна для всей группы производных пурина. [c.446]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология