Пептонная вода

Взятие и доставка материала. Исследуемым материалом могут быть испражнения, рвотные массы, желчь (у носителей), трупный материал (отрезки кишечника, желчного пузыря), пищевые продукты, смывы с объектов внешней среды, воды, гидробионты. Кал и рвотные массы от больных холерой берут стерильной ложкой или катетером в объеме 10 — 20 мл, переносят в стерильный широкогорлый сосуд и плотно закрывают пробкой. При этом надо учитывать высокую чувствительность холерных вибрионов к дезинфицирующим средствам (особенно кислотам). Часть материала (1 — 2 мл) непосредственно у постели больного для обогащения засевают в 1%-ю щелочную пептонную воду (50 мл). Для преодоления неблагоприятного влияния на вибрионов сопутствую- [c.164]

Обязательно исследуют воду (два объема по 500 мл) и пищевые продукты (не менее 200 г). Гидробионтов (рыб, лягушек) доставляют в лабораторию в закрытых банках или других сосудах и исследуют содержимое кишечника. Смывы с объектов окружающей среды берут тампонами, смоченными в 1%-й пептонной воде, с площади примерно 0,25 м и помещают в пробирки или флаконы с той же средой. [c.165]

На каждую емкость наклеивают этикетки, составляют направление с указанием фамилии и инициалов, возраста больного, его домашнего и служебного адреса, диагноза, дат начала болезни и госпитализации, а также даты и часа взятия материала, фамилии и инициалов лица, направившего анализ. Если немедленная доставка материала невозможна, то пробы засевают в 1 %-ю пептонную воду с теллуритом калия и на чашки со щелочным агаром. Банки и пробирки с материалом для исследования помещают, перекладывая их ватой или другим гигроскопичным материалом, в металлическую коробку, которую, в свою очередь, упаковывают в деревянный ящик, пломбируют, надписывают Верх, осто- [c.165]

Если на 1 -й пептонной воде появляется нежная голубоватого цвета пленка, которая при наклоне пробирки или флакона прилипает к стенке, то из пленки или просто с поверхности среды берут материал для повторной экспресс-диагностики. [c.167]

Быстрый метод массового исследования на носительство. Во время вспышки холеры проводят массовое обследование на носительство холерного вибриона. Для проведения большего количества анализов в лаборатории одновременно исследуют кал от 10 человек. Фекалии берут проволочными петлями или тампонами и помещают в колбу, содержащую 200 мл пептонной воды с агглютинирующей холерной (9-сывороткой в рабочем разведении и инкубируют при 37 С. Через 3 —4 ч размножившиеся холерные вибрионы начинают агглютинироваться и хлопьями оседают на дно. В этом случае берут материал у каждого из 10 человек и исследуют его отдельно. [c.171]

Бактериологическое исследование. Выделение, идентификация и подсчет возбудителей пищевого отравления в исследуемом материале является основным методом диагностики. Для обнаружения безусловно-патогенных микроорганизмов на соответствующие накопительные и селективные питательные среды засевают не-разведенный исследуемый материал. Для выявления условно-патогенных возбудителей готовят серийные разведения материала в 0,1%-й пептонной воде или ИХН и для посева на плотные среды берут 0,1 мл из разведений 10 -— 10 (в зависимости от степени предполагаемого обсеменения). Плотные материалы перед посевом измельчают в асептических условиях с добавлением ИХН или 0,1%-й пептонной воды. [c.256]

Методика исследования. Перед проведением исследования пробы гомогенизируют и готовят их серийные разведения (1 10, 1 100, 1 1000 и т.д.). Для получения гомогенных суспензий исследуемого материала иногда используют ИХН с добавлением тви-на-80 или 0,1%-ю пептонную воду. [c.424]

Пептонная вода к дистиллированной воде добавляют 1—2 % [c.32]

Среды Гисса используют для практической диагностики микробов кишечной группы. Их приготовляют следующим образом. На 0,5 л пептонной воды (приготовленной, как указано выше) добавляют 5—7 мл 1 %-ного спиртового раствора бромтимоловой синей и устанавливают pH около 7,2—7,4. Кипятят, фильтруют и доливают до первоначального объема. [c.601]

Вариант Гетеротрофные на МПА Споровые на МПА Ч-25% сусла Аммонификаторы на пептонной воде Азотобактер на Эшби. % обросших комочков почвы [c.113]

Аммонификаторы на пептонной воде [c.114]

Элективные питательные среды. Пептонная вода 1%, pH 8,0. Элективна для холерного вибриона, который размножается быстро, опережая рост других микробов. Щелочная реакция среды не препятствует росту холерных вибрионов, но тормозит рост других микроорганизмов. [c.45]

Для определения протеолитических ферментов производят посев культуры бактерий уколом в столбик 10—20% желатина, пептонную воду. Посевы в желатине инкубируют при 20—22°С в течение нескольких дней. При наличии протеолитических ферментов бактерии разжижают желатин, причем в этом месте образуется фигура, напоминающая воронку или елочку. [c.55]

В посевах в пептонную воду определяют продукты расщепления пептона после инкубирования в течение 2—3 сут при 37° С —ставят реакции на аммиак, индол, сероводород и др. [c.55]

Состав сред. Среда Кесслера 1% пептонная вода, 5% желчи, 0,25% лактозы, генциановый фиолетовый для подавления роста грамположительных бактерий. Железосульфитная среда Вильсона — Блера 3% питательный агар, 1% глюкозы, 2% сульфита натрия, 0,08% хлорида железа. [c.90]

Материал для исследования испражнения больного с подозрением на холеру а) микроскопировать готовые мазки из исследуемой культуры б) определить подвижность культуры, выращенной на щелочной пептонной воде [c.189]

Если используют пептонную воду, то образование аммиака выявляют с помощью реактива Несслера, На фарфоровую пластинку помещают несколько капель культуральной жидкости и добавляют к ним каплю реактива Несслера. В присутствии следов аммиака жидкость окрашивается в желтый цвет, при большом количестве аммиака образуется коричневый осадок. [c.159]

Исследуемый материал засевают на щелочные (элективные) плотные питательные среды (агары Монсура, T BS, СЭДХ, щелочной ПА) и жидкие среды обогащения — щелочную 1%-ю пептонную воду или 1% Ю пептонную воду с теллуритом калия (кроме материала от больных). [c.166]

Подходящими средами для определения индола являются 2,5% пептониая вода, 1% казеиновая вода с добавлением 0,3% хлорида натрия и 0,2% двуосновного фосфата натрия. Оптимальны среды с pH 7,4 (А. С. Блинкин, 1963). Однако для большей точности, чувствительности н быстроты получения ответа более пригодны среды с боль- [c.205]

Для выделения вибриона от носителей или больных стертой формой холеры используются среды, улучшающие рост вибриона и подавляющие сопутствующую флору (преимущественно Е. oli). При индивидуальных анализах на вибрионосительство материал засевают в 50 мл пептонной воды, при групповых анализах — в 100 мл. Все посевы помещают в термостат при 37 °С. [c.166]

Для окончательной идентификации выделенную культуру с косого агара пересевают в 1% пептонную воду (нитрозо-индоловая проба), на желатину (определение протеолитическо способности), на среды пестрого ряда (определение ферментативной активности) и на среду с кровью (определение гемолитической способности). Наряду с этим с той же культурой ставят пробу о. холерным бактериофагом и развернутую реакцию агглютинации. [c.167]

Нйтрозо-индоловую пробу ставят, с 18—24-часовой культурой на 1% пептонной воде, добавляя к ней несколько капель крепкой серной кислоты и небольшое количество 0,01% раствора азотисто-кислого натрия. При наличии индола появляется кольцо розового Цвета. Истинные холерные вибрионы образуют индол. [c.167]

Для испытания гемолитической способности исследуемую культуру засевают на 1% пептонную воду и после суточной инкубации к последней стерильно добавляют 2% отмытых эритроцитов барана. После этого ее дополнительно выдерживают 48 часов при 37°С. Типичные культуры холерногц вибриона не дают гемолиза., , . [c.167]

При выращивании бактерий на рыбном агаре, пептонной воде и мясо-пептонном бульоне, содержащих белки и пептиды, существенных изменений в характере роста микроорганизмов под действием цианида калия в интервале концентраций от 1 мг/л до 100 мг/л не наблюдалось. Отсутствие ингибир ующего эффекта KGN на среде, богатой органическими веществами, объясняется, вероятно, тем, что протеиновые вещества блокируют (нейтрализуют) таксичеокое действие цианида калия на хмикроорганизмы. Таким образом, зкстериментальные наблюдения показали, что состав среды оказывает существенное влияние на антимикробную активность KGN и чувствительность к нему бактерий, что необходимо учитывать при разработке микробиологического метода анализа воды. [c.33]

Дифференциально-диагностические среды. Среды Г и с-са. К 1% пептонной воде добавляют 0,5% определенного углевода (глюкоза, лактоза, мальтоза, маннит и дрЛ и индикатор Андреде (кислый фуксин в 1 н. растворе КаОН) разливают по пробиркам, в которые помещают поплавок (трубка длиной около 3 см, один конец которой запаян) для улавливания газообразных продуктов, образующихся при разложении углеводов. Стерилизацию проводят текучим паром или паром под давлением 0,5 атм поплавок при этом заполняется питательной средой. Среда при pH 7,2—7,4 бесцветна. При разложении углеводов приобретают красный цвет. [c.46]

Состав глюкозопептонной среды 1% пептонная вода, 0,5% глю-козы, 0,5% хлорида натрия, индикатор Андреде и поплавок. [c.87]

Для определения коли-титра цельное пастеризованное молоко засевают в шесть пробирок со средой Кесслера в три пробирки вносят по 1 мл молока а в остальные три—по 0,1 мл (1 мл молока, разведенного в 10 раз стерильной водой). Посевы инкубируют при 43°С в течение суток, после чего из забродивших проб делают посевы на среду Эндо и инкубируют при 37°С. Из выросших колоний красного цвета готовят мазки, окрашивают по Граму, микроскопируют и делают посев на среду Козера, а также в пептонную воду с 1% глюкозы. Пробирки с посевами на среде Козера инкубируют при 37°С, а на среде [c.91]

Бактериологическое исследование. Материал засевают в различные жидкие и на плотные питательные среды, в частности, во флаконы со щелочной пептонной водой (1% пептонная вода, 0,5% хлорида натрия, 0,01% ККОз и 0,2% КагСОз pH 9,0), на чашки со щелочным питательным агаром. Посевы на пептонной воде инкубируют при 37°С в течение 5—6 ч, на чашках — [c.189]

I Нитрозоиндоловая проба Пересев пленки на чашку со щелочным питательным агаром и вторично на щелочную пептонную воду [c.190]

Независимо от результатов исследования делают пересев на вторую пептонную воду. Наличие грамотрицательных вибрионов, агглютинирующихся О-сьшороткой, позволяет дать второй предварительный ответ. Независимо от полученных результатов продолжают исследование, как показано на схеме 13. [c.191]

Выделение чистой культуры и ее идентификацию проводят по 5- однотипным колониям, выросшим на щелочном агаре. Для ускорения хода анализа ставят развернутую реакцию агглютинации с бактериальной суспензией, приготовленной из колоний. Для этого -агглютинирующую О-сыворотку разводят в пробирках до титра пептонной водой (в объеме 0,5 мл). Затем в каждую пробирку вносят 1—2 капли суспензии бактерий. Результат реакции агглютинации учитьшают после 3 -часовой инкубации при 37° С. [c.191]

Иммобилизация вибрионов холерными сыворотками и типовыми холерными фагами. Капли испражнений или материала с поверхности пептонной воды обрабатьшают холерной О-сьшороткой, типовыми сьшоротками Огава и Инаба или типовыми холерными фагами. Готовят из них препараты <<раздавленная капля, которые исследуют в микроскопе, снабженном темнопольным или фазово-контрастным устройством. В положительном случае через 3- 5. мин движение вибрионов прекрщается. [c.192]

Характерные для кишечной палочки колонии отсеивают а) на скошенный мясо-пептонный агар б) на трехсахарный агар с мочевиной по Олькеницкому (рец. 87), на среду Ресселя (рец. 84, 85) или короткий пестрый ряд Гисса (рец. 44) (глюкоза, лактоза, маннит, мальтоза, сахароза, пептонная вода) для установления сахаролитических свойств и выявления индола и сероводорода в) в полужидкий (0,2— [c.207]

Четвертый день. 1. Учитывают характер роста исследуемых культур на средах Гисса, в пробирках с бульоном Хоттингера, пептонной водой, питательным желатином и лакмусовым молоком. [c.219]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология