Кислый фуксин

Все золи по знаку заряда их дисперсной фазы при явлениях электрофореза и электроосмоса могут быть разделены на положительно и отрицательно заряженные. Положительный заряд дисперсных частиц имеют гидрозоли таких гидроксидов, как Ре(ОН)з, А1(0Н)з, а также водные растворы основных красителей (метиленовый синий, метиленовый зеленый, основной фуксин) и др. Отрицательный заряд частиц дисперсной фазы имеют гидрозоли золота, серебра, платины, а также водные растворы кислых красителей (эозин, флуоресцеин, кислый фуксин). [c.313]

ОКРАШИВАНИЕ БЕЛКОВ КИСЛЫМ ФУКСИНОМ [c.55]

Наиболее доступным реактивом все же является глицерин. Он особенно удобен для пропитки электрофореграмм, окрашенных для выявления гликопротеидов, но его нельзя применять в том случае, когда электрофореграммы окрашены кислым фуксином, так как он экстрагирует слишком много красителя из бумаги. [c.65]

Остер и сотр. 128, 29, 125, 126] исследовали флуоресценцию, фосфоресценцию и скорость фотовосстановления красителей в твердых и вязких восстановительных средах. Было найдено, что из десяти изученных красителей три (кислый фуксин, кристаллвиолет и розанилин) в стеклообразной глюкозе (но не в растворе) вступают в реакцию фотовосстановления, зависящую от температуры. Эти же красители обнаруживают замедленную флуоресценцию. На основании спектральных и кинетических данных авторы нашли, что реакцию контролируют три фактора, зависящие от температуры. [c.305]

Приготовление шкалы окрасок достигается соответствующим разведением основного 0,1%-ного водного раствора кислого фуксина дистиллированной водой, на, 1000 мл которой прибавлено 0,5 мл 20%-ной серной кислоты. [c.126]

Фуксин (и его сульфокислоты— кислый фуксин) является одним из старейших красителей этого класса он получен польским химиком Я. Натансоном в 1855 г. При его промышленном получении долгое время применялась в качестве окислителя мышьяковая кислота, замененная впоследствии нитробензолом (окисление в присутствии хлорного железа и железных опилок). [c.429]

К положительно заряженным дисперсным системам в обычных условиях относятся, например, гидрозоли таких гидроокисей, как Ре(ОН)д, А1(0Н)д, Сг(ОН)д, а также водные растворы основных красителей—основного фуксина, кристаллического фиолетового, метиленового синего, метиленового зеленого и др. К отрицательно заряженным системам относятся, например, гидрозоли золота, серебра, платины, сернистого мышьяка, канифоли, а также водные растворы кислых красителей—кислого фуксина, эозина, флуоресцеина, бриллиантового зеленого и др. [c.115]

Зафиксированный материал сразу заливают парафином, ИЭТ определяют на микротомных (очень тонких) срезах препараты окрашивают метиленовой синькой и кислым фуксином в буферных смесях. [c.7]

Ваго для окрашивания полиэдров вирусов в тканях применяет окрашивание в течение 2—10 минут смесью двух растворов. Раствор А 10 мл анилинового масла в 200 мл дистиллированной воды смешивают с кислым фуксином до насыщения. Раствор Б 1%-ная метиленовая синяя. Затем перед окрашиванием смешивают 3 мл раствора Б со 100 мл раствора А и окрашивают препарат при 60° С в течение 10 минут. После этого препарат промывают в горячем этиловом спирте и докрашивают 5—15 минут в 1%-ном растворе метаниловой желтой. [c.54]

Примечание. Избирательную поглотительную способность силикагеля можно продемонстрировать на опыте с красным кислым фуксином. Его окраска от силикагеля бледнеет значительно слабее. [c.66]

Образцы селитры с рядом добавок различных концентраций кислый фуксин, разложенный доломит и азотнокислый натрий), применяемых в промышленности, сравнивались с чистой селитрой. Вопреки приводившемуся в литературе мнению, данные рентгеноструктурного анализа показали, что эти добавки не влияют на структуру элементарной ячейки селитры. [c.154]

Окрашиваюи ий раствор 2,0 г кислого фуксина растворяют в смеси, состоящей из 500 мл метанола, 400 мл дистиллированной воды и ЮЭ мл ледяной уксусной кислоты. [c.55]

Повторное разделение одного и того же материала дает разные результаты. Причина плохой воспроизводимости может заключаться в изменении условий опыта. Чтобы сделать условия опыта стандартными а) необходимо помнить, что фильтровальная бумага должна быть одного и того же типа б) необходимо стандартизовать факторы, влияющие на электрофорез (направление потоков буферного раствора, температура и т. п.) (см. стр. 52) в) краситель должен быть одним и тем же г) не следует менять способа количественной оценки электрофореграмм. При использовании метода элюирования мы советуем окрашивать белки кислым фуксином. Несвязавшаяся с белком часть этого красителя легко удаляется из бумаги, а связавшийся краситель затем легко элюируется. С другой стороны, при фотоэлектрометрии электрофореграмм очень удобно применять окрашивание амидовым черным 10В, так как он прочнее других красителей связывается с белками и примерно в 10 раз сильнее поглощает свет. Несмотря на то что при отмывании электрофореграмм амидовый черный невозможно полностью удалить из бумаги, фотоэлектрические измерения после окрашивания этим красителем достаточно точны. [c.66]

Наиболее подходящая толщина слоя носителя — 0,5 мм. Для нанесения носителя на пластинки могут быть использованы описанные выше приборы, позволяющие получать слой разной толщины. Если суспензию носителя раскатывать стеклянной палочкой, на обоих концах которой наклеено несколько витков изоляционной ленты, также образуется достаточно ровный слой. Свежеприготовленные пластинки в течение 20—25 мин подсушивают на воздухе. Их можно довольно долго хранить во влажной камере, если исключена возможность бактериального роста. При нисходящей тонкослойной гель-фильтрации пластинку располагают в камере под углом 10—15° Как правило, гель-фильтрацию проводят в водных растворах, поэтому хроматографическая камера может быть изготовлена из пластмассы. Она состоит из кюветы для буферного раствора, рамки, поддерживающей пластинку под соответствующим углом, и крышки. Подача буферного раствора на пластинку осуществляется с помощью фитиля из фильтровальной бумаги. В качестве маркеров удобно использовать окрашенные высокомолекулярные вещества (например, меченные флуоресцеином ферритин или 7-глобулин), которые не задерживаются частицами геля. Гель-фильтрацию проводят до тех пор, пока маркер не пройдет по крайней мере 10 см от линии старта. После этого пластинку извлекают из рамки и покрывают слой носителя листом фильтровальной бумаги (например, Шляйхер-Шуль 2043 или ватман 3 ММ), вырезанным по размеру пластинки. Некоторые исследователи рекомендуют применять в этом случае лист сухой фильтровальной бумаги. В нашей лаборатории используется смоченная и тщательно отжатая фильтровальная бумага, так как с ее помощью легче прикрыть слой носителя без образования под бумагой пузырьков воздуха. После этого бумагу снимают (иногда вместе с частичками геля), высушивают при температуре около 120°С и окрашивают красителями, выявляющими белок, или реактивом Паули. Наряду с другими красителями можно воспользоваться, например, амидовым черным ЮВ, кислым фуксином и т. п. Во время отмывания несвязавшегося красителя частички геля отделяются от бумаги, и после высушивания она может быть использована для документации. [c.239]

Окраска лактофуксином. Мазок заливают на 4 — 5 мин смесью, содержащей 0,1 г кислого фуксина на 100 мл молочной кислоты. На розовом фоне отчетливо видны элементы гриба голубого цвета. [c.314]

Азур-эозин, бриллиантовый зеленый, генциановый фиолетовый, кармин, кристаллический фиолетовый, метиленовый голубой, сафранит Т, фуксин кислый, фуксин основной, эозин-метилен овый синий [c.383]

Индикатор Андредэ. 0,5 г кислого фуксина растворяют в 100 мл дистиллированной воды, добавляют 16,4 млн. раствора едкого натра. После прибавления щелочи фуксин обесцвечивается и приобретает слабо-розовую окраску. Стерилизуют 5 минут при температуре 110°С. К углеводным средам прибавляют 1% индикатора. В нейтральной и слабощелочной среде цвет слабо-розовый. При образовании кислоты фуксин восстанавливает свой цвет (красный). [c.190]

E ker, Lo khart (1959) применили предварительное фиксирование препаратов после фильтрования. В результате этого клетки окрашиваются кислым фуксином в течение 1 мин. [c.84]

Образец (0,1 мл 0,2> -ного раствора красителя) наслаивали сверху, катод—вв Диапазон pH от Ш (вверху) до 3. Время 15 мив. Слева направо кислый фуксин теин, эригарнп, светлый зеленый кармин, орсеин [c.335]

Применение.-В сочетании с. кислым фуксином и малахитовым зеленый для окраски раковых тканей. В ботанических исследованиях для орраски цитоплазмы и других частей растительной ткани. [c.137]

Свойства, Прозрачная бесцветная жидкость со слабым приятным ароматическим запахом. Температура плавления 11,8°С, температура кипения 101,3 "С, Смешивается с водой и большинством органических растворителей. Жиры, масла, СМОЛЫ, каучук, хлорид железа(1П), иод, пикриновая кислота, сулема, гема токсилин и жировые красители растворяются в диоксане. Большинство красителей, нерастворимых в безводном диоксане, растворяются в присутствии воды, как например, анилиновый голубой, эозин, световой зеленый, метиленовьй голубой, сафранин, кислый фуксин [Ромейс, 81—82]. [c.139]

При анализе с помощью хлорида титана (П1) обычно получаются достаточно точные результаты. Этот метод применим для количественного определения азокрасителей, нитро-и нитрозокраси-телей, хинониминовых и трифенилметановых красителей, а также некоторых красителей антрахинонового ряда и производных индиго. Некоторые азокрасители, нитрозокрасители и красители, обладающие хиноидной структурой, растворяющиеся в воде, спирте, уксусной кислоте и в других смешивающихся с водой растворителях, можно титровать непосредственно раствором соли титана (1П) до обесцвечивания. Большинство азокрасителей лучше определять, восстанавливая их избытком хлорида титана (III). Кислотные и основные трифенилметановые и хииониминовые красители (например, сафранин, метиленовый голубой, малахитовый зеленый, фуксин, родамин, кислый фуксин), образующие бесцветные или бледно-желтые лейкосоединения, также можно определять прямым титрованием. Иногда при этом прибавляют спирт, чтобы предотвратить помутнение во время титрования (например/ при анализе эозина и родамина). [c.322]

Оиределение двуокиси серы в воздухе основано на появлении фиолетовой окраски при действии SOg на кислый фуксин — фор-мальдегидный раствор. Для определения цианистого водорода была применена суспензия иодистого серебра. При взаимодействии этих веществ образуется бесцветный серебряноцианистый комплекс. В данном случае измеряется степень помутнения суспензии после ее взаимодействия с цианистым водородом. [c.338]

Для выделения линии 366 ммк описан ряд комбинированных светофильтров, в которые обычно вводят раствор п-нитрозоди-метиланилина (ПНДА), пропускающий ультрафиолетовые излучения и поглощающий фиолетовые и синие для устранения видимой области спектра в этих комбинациях используют раствор метилового фиолетового 4Р или смеси кислого фуксина с метиловым голубым [90]. Однако растворы органических красителей мало устойчивы к ультрафиолетовому облучению и при выцветании начинают пропускать видимый свет. Раствор ПНДА в сочетании с синим увиоле-вым или кобальтовым стеклом [9] более светопрочен, но такие стекла мало доступны. Светоустойчив светофильтр-конденсор [c.75]

Биомицин выявляли на хроматограммах при помощи биоавтографии [26 , 770, 787, 791], использовали также реакции с нингидрином [262, 1239] и Сакагути [92] и краски эритрозин В, кислый фуксин и т.. д. 1063]. [c.242]

В хромосомах действительно есть особое вещество. Это — так называемая дезоксирибонуклеиновая кислота, которую принято называть сокращенно ДНК. ДНК характерна для хромосом. Ее не находят ни в остальной части ядра, ни в цитоплазме. Это было доказано много лет назад с помощью общеизвестной реакции Фёльгена. Немецкий биохимик Р. Фёльген обнаружил, что если нагреть ДНК с сильной кислотой, а затем обработать определенным образом кислым фуксином, то она [c.105]

Большое число исследований Грейг и ее сотрудников свидетельствует о том, что ацетилхолин оказывает существенное влияние на проницаемость многих тканей для ионов и что в этих тканях антихолинэстеразные яды, вызывая нарушения ацетилхолинового равновесия, приводят тем самым к расстройству обмена ионов. Так, эзерин в концентрации 10 М снижает проницаемость эритроцитов для натрия и калия [29, 31, 32]. Ацетилхолин обладает тем же действием [28, 48, 57]. Эзерин снижает также устойчивость эритроцитов к гемолизу и уменьшает проницаемость мозга для кислого фуксина [30] и барбитала [33[. Другие эфиры — триацетин и аце-тилпропионат — тоже снижают проницаемость эритроцитов, причем активность исследованных эфиров изменяется в том же порядке, как и их способность гидролизоваться под действием холинэстеразы эритроцитов [31 [. [c.178]

Патентуется прибор для одноразового определения активного хлора в воде. Внутри пластикового шприца нанесено пятно из колориметрических реагентов на хлор. Смешанный колориметрический индикатор содержит кислый фуксин, о-то-луидин, КВт,, алюмокалий-сульфат и поливинилпирролидон. [c.24]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология