Табак, определение воды

Всесоюзный институт табака и махорки предложил простой способ определения никотина в махорке. 3 г измельченного табака обрабатывают в колбе на 200— 300 мл небольшим количеством известкового молока (до образования кашицы) и 80 мл толуола. Колбу соединяют с обратным холодильником и нагревают на водяной бане до кипения толуола. Кипятят 10 мин и затем колбу охлаждают холодной водой. Толуольную вытяжку фильтруют, и если толуол, стекающий через фильтр, остается [c.126]

Определение количества никотина в табаке на фабриках никотина производится обычно по методу Тота (ТоШ). Результаты не всегда совершенно точны, но достаточны для целей производства. Растирают 6 г порошка табака с 20 сл 20%-ного едкого натра в ступке, которую затем покрывают стеклянной пластинкой, и дают стоять % часа. По. истечении этого срока быстро прибавляют столько порошка гипса, чтобы получить сухой порошок. Его переносят в склянку и заливают смесью из 50 сл эфира и 50 сл петролейного эфира. Взбалтывают в течение часа по крайней мере 50 раз, отфильтровывают 20 сл% прибавляют к ним 50 сл воды и 5 сл1 0,Ш серной кислоты., Избыток кислоты оттитровывают обратно 0,Ш щелочью, индикатором служит иод-эозин. 1 С/И 0,1/У серной кислоты соответствует 0,0162 г никотина. [c.348]

Определение следов мышьяка имеет очень большое значение, поскольку в малых количествах мышьяк присутствует во многих веществах в крови, в кожуре плодов, желатине, табаке, в красителях, применяющихся для окраски пищевых продуктов, фосфорной кислоте, металлической меди, в костях, в солоде, сахаре, природных водах, пиритах, растениях, в топливе и золе, в маслах и т. д. Точность колориметрических методов определения мышьяка часто невелика, но они очень чувствительны и дают возможность обнаруживать самые малые следы этого элемента. [c.904]

Большое распространение получил газовый электрод для определения аммиака и ионов аммония, например, в морской воде [282], природных [281] и сточных [283] водах, табаке и дыме. Отметим, что для определения NH3 оптимальное значение pH 12 (см. табл. IV. 1), но газопроницаемая мембрана начинает портиться (изменяется структура пор) при pH > 13, так что при работе следует строго придерживаться указанных значений pH. Кроме того, при [c.125]

Определение никотина в табаке. Навеску 10 г табака подвергают обработке водяным паром для отгонки никотина. Дистиллят разбавляют до объема 300 мл, отбирают 100 мл дистиллята, нейтрализуют 0,1 н. кислотой в присутствии метилового красного, прибавляют 50 мл 0,05 н. раствора пикриновой кислоты и охлаждают водой в течение 2 ч. Выделившийся пикрат отфильтровывают на воронке Бюхнера диаметром не более 5,5 см, промывают двумя порциями разбавленного в десять раз раствора пикриновой кислоты, используя каждый раз 4 мл этого раствора, и двумя порциями воды по 4 мл. Фильтр с осадком переносят в колбу емкостью 100 мл с притертой пробкой. Прибавляют 10 мл воды и 4 капли раствора фенолфталеина (1 100) и титруют 0,1 н. раствором едкого натра до появления неисчезающей красной окраски. Затем прибавляют 25 мл толуола и титруют до конца, сильно встряхивая смесь после прибавления каждой порции раствора щелочи. [c.670]

Методика определения. Навеску 0,5 г сухих, тонко измельченных листьев табака переносят в колбу на 250 мл, приливают 70 мл воды и 5 мл 33%-ной NaOH и при слабом подогревании колбы отгоняют никотин с водяным паром. Никотин поглощается Ъ мл 0,1 н. серной кислоты в мерной колбе на 100 мл. Конец форштока должен быть погружен в серную кислоту. Отгонку проводят до тех пор, пока в колбе не останется 85—90 мл. Затем к отгону для нейтрализации кислоты прибавляют 5 мл 0,1 н. NaOH и объем доводят до 100 мл. Отгон хорошо. взбалтывают, берут пипеткой 5 или 10 мл в мерную колбу на 50 мл, прибавляют по 1 мл насыщенного водного раствора анилина и бромистого циана (автоматической пипеткой) и оставляют на 15 мин. Полученный окрашенный раствор доливают водой до 50 мл, хорошо встряхивают и колориметрируют. [c.123]

По данным Всесоюзного института табака и махорки, метод Келлера пригоден для определения никотина в табаке и непригоден для определения никотина в малых количествах в махорке. Как указывает Шмук, наиболее пригодным методом количественного определения никотина в махорке является метод Рундсгагена. 5 г сухого измельченного в порошок табака растирают в фарфоровой чашке с 2 г гашеной извести. Затем смесь хорошо смачивают водой и растирают 10—15 мин. При последующем помешивании добавляют столько гипса, чтобы получился сухой легко распадающийся порошок, который переносят потом в высокий цилиндр на 250 мл с притертой пробкой. Чашку, в которой растирали смесь, очищают небольшой порцией гипса и присоединяют к общей смеси. Никотин извлекают 100 мл чистого толуола, приливаемого в цилиндр, встряхивая последний 15—20 мин. После получасового отстаивания толуоловую вытяжку фильтруют через обыкновенный бумажный фильтр, 25 мл фильтрата переносят в цилиндр на 100 мл, добавляют 25 мл дистиллированной воды и 3 капли йодэ-озина и титруют при взбалтывании 0,1 н, серной кислотой. [c.126]

Этиленгликоль — вязкая бесцветная жидкость, сладкая на вкус, т. кип. 198°. Сильно понижает температуру замерзания воды. Так, например, 60%-ный водный раствор гликоля замерзает при —49°. Поэтому его с успехом применяют для приготовления антифриза. Этиленгликоль весьма гигроскопичен, поэтому его применяют при изготовлении печатных красок (текстильных, типографских и штемпельных), а также косметических препаратов, для сохранения определенной влажности табака и т. д. Азотнокислый эфир этиленгликоля — динитроэтиленгликоль — сильно взрывчатое вещество. [c.128]

В воде, пищевых продуктах и биосу б-стратах. ТСХ, чувствительность 0,5 мкг в пробе (Клисенко, Юркова). Разработан ГЖХ метод определения Т. в молочных продуктах, чувствительность 0,005 мг/кг (Гиренко, Горцева). В кормах для скота, табаке, воде, почве. Колориметрический метод (Косматый Trim et al.). [c.562]

Каллюс сердцевинной ткани стебля табака. Этот биотест разработан в лаборатории Скуга. Определение проводят следующим образом срезают стебли взрослых растений табака. Для работы выбирают участки стебля с хорошо развитой, но еще не одревесневшей сердцевиной (обычно это 6—8-е междоузлие у растений с 13—15 междоузлиями). Отрезанные кусочки стебля длиной в 6—8 см тщательно промывают с мылом и затем отмывают от мыла водой. После этого их переносят в стерильную комнату и стерилизуют протиранием этанолом (96°) [8]. Иногда проводят дополнительную стерилизацию 0,11 %-ным раствором сулемы. При этом кусочки стебля погружают в раствор сулемы на 15 мин., а затем не менее четырех раз отмывают стерильной водой. После этого со всеми предосторожностями (в чашке Петри или между слоями стерильной бумаги) удаляют участки стебля около прежних срезов и отделяют сердцевину от наружных, корковых тканей. Для этих целей можно использовать стерильное сверло для пробок. Им вырезают столбик сердцевинной ткани из самой центральной части стебля й = Ъ мм). Периферическая часть сердцевины, граничащая с проводящими тканями, при этом не используется. Особое внимание следует обращать на то, чтобы вырезанная сердцевина не содержала элементов флоэмы и камбия их наличие может существенно исказить результаты определения. Полученные цилиндрики сердцевины режут стерильным ланцетом на кусочки высотой 2—3 мм.Эш кусочки переносят со всеми предосторожностями на поверхность агаровой среды в эрленмейеровские колбы на 100 мл. В каждую колбу помещают потри кусочка. Колбы могут быть заменены пробирками. Состав питательной среды А показан ниже. Эту среду готовят следующим образом. Приготовляют в 10 раз более концентрированный раствор макроэлементов, в 100 раз [c.66]

Метод Вуда с некоторыми изменениями использован при определении остатков ГМК в корнеплодах, яблоках и табаке [67], а также в картофеле, луке, мясе и молоке [68]. Точность метода 1 мг/кг. Использование хроматографического метода анализа позволяет определять ГМК в количестве до 0,2 мг. В качестве растворителя применяют смесь изопропилового спирта, концентрированного водного раствора аммиака и воды (70 10 20). Хроматограммы проявляют опрыскиванием высушенной бумаги свежеприготовленной смесью 1%-ных водных растворов хлорного железа и КзРе(СН)б. При этом образуется синее пятно при К / 0,32, интенсивность окраски которого в пределах 0,2—0,4 мкг находится в прямой зависимости от концентрации ГМК [69]. [c.615]

Можно перечислить некоторые важные анализы микропримесей с концентрированием их на адсорбенте определение всех возможных органических загрязнений (профиля загрязнений) в атмосферном воздухе [43, 46, 51], определение хлорвинила (как канцерогена) в воздухе [48], в табачном дыме [44] и в поливинилхлориде [47] определение примесей углеводородов в морской воде и осадках [53], остатков мономеров (хлорвинила, бутадиена, акрилонитрила, стирола и др.) в соответствующих полимерах [54], определение полиядерных ароматических углеводородов в конденсате табака и марихуаны[55], определение канцерогенных хлорметилового эфира и бис(хлормети-лового) эфира на уровне 10 % (об.) [49, 56, 57], определение летучих компонентов из тканей [50], определение Нг, Нг5 и СНзЗН в выдыхаемом воздухе [41, 51], определение органических примесей в воде [58—60] и в биологических жидкостях [43] и другие. [c.193]

Этот углеводород был обнаружен в воде и ее отложениях, пищевых копченых продуктах, вине, табаке и та-бачно.м дыме, моющих средствах. До настоящего времени отечественные парафины, широко применяющиеся в народном хозяйстве, еще не были предметом исследования Б этом направлении, и наша работа является первым небольшим вкладом в изучение данного вопроса. Для определения 3,4-бензпирена в продуктах сложного состава существует ряд методов, из которых необходимо было изыскать наиболее приемлемые для его определения в парафинах. [c.149]

Кислоты. Для определения яблочной кислоты [149] в листьях растений (например, в листьях табака) ее экстрагируют разбавленной серной кислотой, нейтрализуют и выпаривают экстракт остаток нагревают в течение 3 час. до 130°, при этом яблочная кислота превращается в фумаровую. Полученные соли растворяют в воде, щавелевую кислоту осаждают ацетатом кальция, а фумаровую — в виде закисной ртутной соли, действуя раствором нитрата ртути (I). Одновалентную ртуть (в фумарате) окисляют до двухвалентной и титруют раствором роданида калия [171]. [c.28]

Действие цитокининов лежит в основе другого феномена, над которым долго ломали головы физиологи растений. Часто приходилось наблюдать, что если с растения, например табака, удалить листья, то содержание белка в них быстро снижается, а содержание растворимого азота возрастает. Предполагалось, что этим массированным разрушением белка по крайней мере частично объясняется короткий период жизни многих срезанных растений и их частей, особенно листьев. Случайно было обнаружено, что добавление кинетина в питательный раствор, в который погружены черешки листьев, срезанных с растения Хап1Мит, приводит к более длительному сохранению зеленого цвета листьев. Таким образом/ цитокини-ны задерживают старение. Впоследствии было покИано, что данный эффект обусловлен тем, что цитокинины способствуют поддержанию определенных уровней белка и нуклеиновой кислоты, вероятно, путем снижения скорости их распада, а также в результате сохранения целостности клеточной мембраны. Было отмечено, что нанесение цитокинина на листья интактных растений тоже задерживает их старение (рис, 9.31) Вероятно, цитокинин должен постоянно содержаться в воде, поступающей от корней к листьям, чтобы препятствовать старению последних. [c.298]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология