Калий-фосфатный буфер

Калий-фосфатный буфер — 0,1 М раствор, pH 7,4. [c.28]

Калий-фосфатный буфер, pH 7,4. . . 3,0 2,8 [c.32]

Калий-фосфатный буфер — 10 мМ раствор, pH 7,5. [c.277]

Калий-фосфатный буфер — 20 мМ раствор, pH 6,5. [c.264]

Натрий-фосфатный или калий-фосфатный буфер — 0,05 М растворы, содержащие 0,05 М КС1, pH 6,5. [c.107]

Алкогольдегидрогеназа — 1 Е/мл, свежеприготовленный раствор на 0,1%-ном растворе бычьего сывороточного альбумина в 10 мМ калий-фосфатном буфере, pH 7,5. [c.277]

Хроматографирование на ДЭАЭ-целлюлозе. Часть центрифугата предыдущей стадии (400—500 мг белка) наносят на колонку ДЭАЭ-целлюлозы (3,0X5,5 см), уравновешенную 5 мМ калий-фосфатным буфером, pH 7,7. Такой же буфер используют и для элюции, собирая фракции по 5 мл со скоростью 1 мл/мин. Определяют в них белок и транскетолазную активность. Фракции с высокой удельной активностью объединяют, остальные отбрасывают. [c.284]

Растворы гликогена, НАД+ и АДФ готовят на 0,05 М калий-фосфатном буфере, pH 7,4. [c.50]

Калий-фосфатный буфер — 5 мМ раствор, pH 7,7. [c.283]

Получение гомогената скелетных мышц крысы. Среда выделения-. калий-фосфатный буфер — 0,05 М раствор, pH 7,6 pH буфера проверяют на потенциометре или с универсальным индикатором буферным методом. Всю посуду перед работой необходимо охладить на льду. [c.49]

Гликоген—1%-ный раствор, приготовлен на калий-фосфатном буфере 0,05 М, pH 7,4. [c.53]

М калий-фосфатным буфером (pH 7,4) в 2 раза. При инкубации гликогена с экстрактом в качестве кофактора добавляют НАД+. [c.50]

Получение экстракта мышц. Мышцы задних конечностей только что декапитированной крысы используют для получения экстракта, не содержащего митохондрий, как указано на с. 50. Экстракт можно долго хранить в замороженном виде его разливают по 1 мл в пробирки и замораживают. Для определения молочной кислоты используют экстракт в разведении 1 25 (разводят 0,1 М раствором калий-фосфатного буфера, pH 7,4). [c.28]

Бычий сывороточный альбумин, 0,1%-ный раствор, приготовленный на 10 мМ калий-фосфатном буфере, pH 7,5. [c.277]

Экстракт мышц без митохондрий (с. 50) перед опытом разбавляют 0,05 М калий-фосфатным буфером (pH 7,4) в 2 раза. [c.52]

Экстракт мышц без митохондрий (с. 50) перед опытом разводят в два раза 0,05 М калий-фосфатным буфером, pH 7,4. Если экстракт хранился в замороженном виде, его размораживают перед опытом, проверяют pH и вдвое разбавляют буфером. [c.56]

Ход работы. 1. Приготовление ферментного препарата. Для приготовления экстракта ткани 1—2 г печени гомогенизируют в гомогенизаторе или растирают в фарфоровой ступке со стеклянным песком в 2—3 мл 0,02 моль/л калий-фосфатного буфера. Затем разводят гомогенат тем же буфером в пропорции [c.54]

Калий-фосфатный буфер — 0,4 М и 0,03 М растворы, pH 7,2. [c.172]

ДЭАЭ-целлюлоза, уравновешенная 5 мМ калий-фосфатным буфером, pH 7,7 (с. 109). [c.283]

Суспензию митохондрий (1,5 мг митохондриального белка) добавляли (точка М) к раствору, содержащему 0,,3 М маннит, ОмМ калий-фосфатный буфер, pH 7,2, 5 мМ Mg U и 10 мМ K I. После добавления в суспен.зию малата и АДФ устанавливается некоторая скорость поглощения кислорода. Очень четко проявляется контроль скорости дыхания со стороны АДФ. Отношение скоростей иоглощения кислорода в состояниях 4 и 3 называется коэффициентом дыхательного контроля (в данном случае он равен примерно 6). На основании полярографической записи можно рассчитать величину отношения АДФ О, которое эквивалентно отношению Р 0. Общий объем реакционной смеси 3 мл. [c.61]

ДЭАЭ-целлюлоза, уравновешенная 2 мМ калий-фосфатным буфером, pH 7,6 (с. 109). [c.285]

M Натрий-калий фосфатный буфер, pH 7,6 2D 1,0066 1,034 [c.415]

М Мочевина в Vis М натрий-калий фосфатном буфере, pH 7,6 20 1,0994 1да [c.415]

М калий-фосфатным буфером pH 7,0. [c.173]

Клетки, обработанные толуолом, готовят следующим образом. Пробы культуры по 1,0, 0,5 или 0,20 мл добавляют к 4,0, 4,5 или 4,8 мл 0,05 М калий-фосфатного буфера, pH 7,5, для получения разведений 1 5, 1 10 или 25 соответственно. Измерив оптическую плотность этих разведений, по калибровочной кривой можно оп- [c.400]

Для определения белков с помощью флуорескамина к анализируемому препарату, растворенному в 2 мл 0,05 М калий-фосфатного буфера (pH 7), добавляют 10 мкл ацетонового раствора флуорескамин [c.130]

Содержание АТ-пар составит 100 — 51,75 = 48,25 моль %. Кривая плавления спирали РНК. На СФ-4 с помощью термостатированной камеры снимают кривую плавления РНК (см. стр. 116). Измерения оптической плотности препаратов РНК проводят в одном из следующих растворов 1) 0,1 М Na l с 0,01.М трис-НС1 буфер pH 7,0, 2) 0,01 М калий — фосфатный буфер pH 7,0, содержащий 0,001 М Mg (СНзСОО)г, 3) 0,1 X SS . [c.118]

Колонку (2X15 см) заполняют густой суспензией гидроксилапатита так, как это описано на с. 102. Колонку промывают 100 мл 0,03 М фосфатного буфера. Затем в нее вносят препарат нуклеиновой кислоты из расчета 0,2 мг на 1 мл суспензии (сухие препараты растворяют в 0,03 М калий-фосфатном буфере, менее очищенные препараты предварительно освобождают от избытка ионов). Устанавливают скорость тока жидкости 0,2 мл/мин-см . Колонку промывают 50—100 мл исходного буфера и проводят элюцию в линейном градиенте концентрации фосфатного буфера 0,03—0,4 М. Общий объем элюента — 400 мл. Собирают фракции по 5—10 мл. Содержание нуклеиновых кислот определяют по поглощению при 260 нм. Порядок элюции нуклеиновых кислот с колонки гидроксилапатита при постепенном увеличении концентрации фосфатного буфера следующий РНК, однонитевая ДНК, двух-нитевая нативная ДНК. [c.172]

Кристаллизация. Фракции, содержащие активность фермента, объединяют и добавляют к ним медленно, при перемешивании, 600 г/л сульфата аммония. После 30-минутного стояния осадок отделяют центрифугированием и растворяют в 20 мМ калий-фосфатном буфере, pH 6,5 до достижения концентрации белка 20—30 мг/мл. К раствору медленно добавляют насыщенный раствор сульфата аммония до помутнения. Крисгаллизация проходит при комнатной температуре и заканчивается через несколько дней. [c.266]

Калий-фосфатный буфер — 30 мМ раствор, pH 7,2, содержащий 5 мМ ЭДТА. [c.275]

Обработка ДЭАЭ-це люлозой. ДЭАЭ-целлюлозу предварительно уравновешивают 2 мМ калий-фосфатным буфером (pH 7,6) и отжимают на бухнеровской воронке. Порцию отжатого осадка добавляют к центрифугату, полученному на предыдущей стадии (в соотношении приблизительно 1 5), и перевешивают 10—15 мин. Центрифугируют [c.285]

Окисление аскорбиновой кислоты в опытах определяли колориметрическим методом Хуге [15]. В работе использовали 1,5- Ж раствор аскорбиновой кислоты, калий-фосфатный буфер (pH 6,5) [c.159]

Иногда для экстракций используются комбинации растворителей, применяемых последовательно или совместно. Так, в классических работах Осборна растительные белки выделяли последовательной экстракцией водой, разбавленными растворами нейтральных солей и разбавленными щелочами. Для экстрагирования ферментных и иных белков из трав использовали смесь зфир — вода. Для выделения из животных тканей миофибриллярных белков их извлекали, например, 1,1М иодистым калием и 0,1М калий-фосфатным буфером. Успех первой кристаллизации фермента (уреазы), возможно, определила экстракция водно-ацетоновой смесью. Для приготовления смеси брали 158 мл ацетона и разбавляли до 500 мл водой. Охлажденный раствор приливали к 100 г муки канавалии. Суспензию перемешивали, фильтровали и оставляли стоять 18 ч при 2°С. За это время из раствора выпадали кристаллы уреазы, которые отделяли центрифугированием и промывали 32%-ным ацетоном. Примерно также, с помощью 35%-ного водного раствора диоксана, извлекали каталазу из бычьей печени. [c.142]

Для фермента в 0,1 М калий-фосфатном буфере при pH 7,2 с помощью осмометра было получено средиечнслеиное значение мол. веса, равное 100 000. Затем фермент подвергли денатурации и методом седиментационного равновесия определили средневесовое значение мол. веса, оказавшееся равным 33 000. Объясните, почему этот эксперимент не доказывал, что при денатурации фермент расщепляется на три субъединицы. Приведите пример возможного сочетания из четырех субъединиц, который находился бы в согласии с полученными выше результатами. [c.453]

В состав реакционой смеси (конечный объем 1 мл) входят 0,20 мл 0,5 М калий-фосфатного буфера (pH 7,4), 0,10 мл 0,1 М АМР (нейтрализованного) и 0,20 мл 0,5 М L-треонина. Реакцию начинают при 37 °С добавлением препарата фермента и останавливают внесением 1 мл 1 н. НС1. Затем добавляют 0,2 мл 0,1 %-ного 2,4-дини-трофенилгидразина и смесь вновь инкубируют при 37°С. Приблизительно через 10 мин добавляют 2 мл 2 и. [c.401]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология