Окрашивание кислым фуксином

ОКРАШИВАНИЕ БЕЛКОВ КИСЛЫМ ФУКСИНОМ [c.55]

Ваго для окрашивания полиэдров вирусов в тканях применяет окрашивание в течение 2—10 минут смесью двух растворов. Раствор А 10 мл анилинового масла в 200 мл дистиллированной воды смешивают с кислым фуксином до насыщения. Раствор Б 1%-ная метиленовая синяя. Затем перед окрашиванием смешивают 3 мл раствора Б со 100 мл раствора А и окрашивают препарат при 60° С в течение 10 минут. После этого препарат промывают в горячем этиловом спирте и докрашивают 5—15 минут в 1%-ном растворе метаниловой желтой. [c.54]

После инкубации мембранные фильтры помещают на фильтровальную бумагу (ватман N 17) и смачивают 1% (об/об) раствором кислого фуксина для окрашивания колоний. Затем фильтры высушивают при комнатной температуре и подсчитывают с помощью стереомикроскопа (х 20). [c.73]

Для окрашивания у зерновых культур берут одну половинку от каждого семени, тщательно промывают и заливают 0,1 %-ным раствором индигокармина или кислого фуксина. Срок окрашивания не более 10—15 мин. Затем раствор сливают, половинки семян несколько [c.326]

Двуокись серы, выделенная из пробы подкислением фосфорной кислотой, переводится при 60—80°С струей азота в погло- тигельный раствор едкого натра с глицерином. Образующийся сульфит дает в кислой среде с фуксин-формальдегидным реактивом красно-фиолетовое окрашивание, интенсивность которого прямо пропорциональна концентрации сульфита. Чувствительность определения— 0,0002 мг сульфита в I мл поглотительного раствора. Если взять для анализа 05 мл этого раствора и 250 мл пробы, можно определить сульфиты в концентрации 0,012 мг s 1 л воды и выше. [c.210]

Для анализа растений берут пробы и готовят, как и при окрашивании кислым фуксином. Половинки стебля длиной 5 мм с обнаженным конусом нарастания заливают 0,5%-м раствором тетразола и помещают на 1ч в термостат при 40 °С. После этого подсчитывают число живых и погибших растений. У живых растений конус нарастания окрашивается в оранжевый или красный цвет, у погибших — не окрашивается. Окраска тетра-золом при различной степени повреждения приведена на рисунке 30. Результаты опытов записывают по форме, приведенной для окрашивания тканей кислым фуксином. [c.226]

Стандартный метод Американской ассоциации здравоохранения не предусматривает окрашивания клеток фитопланктона, Но, если в качестве фиксатора используют раствор Люголя, он сам до некоторой степени окрашивает эти кЛётки. Оуэн и др. (164], а также Фурнье [76] описывают методы окрашивания, позволяющие повысить контраст изображения. Метод Оуэна и др., разработанный для пресноводного фитопланктона, включает в себя фильтрацию через це 1люлозную мембрану с разме-,ром пор 0,45 мкм и последующее окрашивание кислым фуксином. Фитопланктон на мембране окрашивается в течение 20 мин красителем из 1 г кислого фуксина в 100 мл воды, содержащей 2 мл уксусной" кислоты. После окрашивания мем-.брану (все еще расположенную в фильтродержателе) промывают водой и затем обесцвечивают и обезвоживают, промывая последовательно 50-, 90- и 100 %-ным пропанолом (который не действует на ацетилцеллюлозные мембраны, но действует на нитроцеллюлозные). Затем мембрану осветляют ксилолом и оставляют ее на фильтродержателе в течение 10 минут. После этого мембрану вынимают из фильтродержателя и во влажном виде помещают в консервирующий раствор. В качестве последнего рекомендуется Пермаунт, который перед пропиткой мембраны нагревают на предметном стекле в течение 10 секунд при температуре 55 "С. Подготовленный таким образом препарат можно длительно хранить при этом края покровного стекла нужно загерметизировать лаком. При работе правильно подготовленным препаратом можно использовать иммерсионный объектив. Авторы особенно рекомендуют этот метод для изучения диатомовых водорослей и утверждают, что. его можно применять также и для других видов фитопланктона. [c.220]

Повторное разделение одного и того же материала дает разные результаты. Причина плохой воспроизводимости может заключаться в изменении условий опыта. Чтобы сделать условия опыта стандартными а) необходимо помнить, что фильтровальная бумага должна быть одного и того же типа б) необходимо стандартизовать факторы, влияющие на электрофорез (направление потоков буферного раствора, температура и т. п.) (см. стр. 52) в) краситель должен быть одним и тем же г) не следует менять способа количественной оценки электрофореграмм. При использовании метода элюирования мы советуем окрашивать белки кислым фуксином. Несвязавшаяся с белком часть этого красителя легко удаляется из бумаги, а связавшийся краситель затем легко элюируется. С другой стороны, при фотоэлектрометрии электрофореграмм очень удобно применять окрашивание амидовым черным 10В, так как он прочнее других красителей связывается с белками и примерно в 10 раз сильнее поглощает свет. Несмотря на то что при отмывании электрофореграмм амидовый черный невозможно полностью удалить из бумаги, фотоэлектрические измерения после окрашивания этим красителем достаточно точны. [c.66]

Эрдхейм в рекомендовал определять отбеливающие земли реакцией адсорбционного окрашивания суданской красной краской, используя ее в качестве индикатора (см. также А. III, 232 и ниже). Монография о методах окрашивания глинистых минералов была написана Фаустом , а собственно методы рассматривались Хим-мельбауэром Суида и Хундесхагензо исследовали диагностическое значение методов окрашивания органическими красителями для силикатных коллоидов. Окрашивание силикагелей фуксином, метиловым фиолетовым или малахитовой зеленью, т. е. типичными основными красителями, не может выщелачиваться. Однако кислотные красители легко вымываются водой из коллоидной кремнекислоты. Слабокислый силикагель избирательно адсорбирует основные красители, и, наоборот, кислые красители преимущественно адсорбируются на гелях глинозема. Соответствующие смеси трехкислотных красителей, которые одновременно дают возможность адсорбироваться кислотным и основным красителям, например в смеси кислотного фуксина и метиленового голубого, могут употребляться для определения химических свойств и электростатических зарядов в данном коллоидном геле. [c.307]

Михаэлис в 1900 г. впервые применил янус зеленый для прижизненного окрашивания митохондрий, последние приобретают при этом зеленовато-синий цвет из-за наличия в них цитохром-оксидазной системы, поддерживающей краситель в окисленном состоянии. Митохондрии легко окрашиваются железным гематоксилином, кислым фуксином, метиленовым синим, янусом зеленым и другими красителями. При использовании обычных фиксаторов митохондрии разрушаются, поэтому для их изучения применяют методы, основанные на стабилизации их липопротеидной структуры при длительном воздействии агентов, например четырехокиси осмия, хромовой кислоты, бихромата калия. [c.48]

Для фиксации и окрашивания пыльцевых трубок гречихи и злаков, по методикам Моррисона и Уоткинса, используют лактофенол с растворенным в нем 1%-м раствором красителя (кислый фуксин или коттон-блау). Для дифференцировки в ходе окрашивания применяют чистый лактофеиол (см. с. 96). [c.246]

Порядок работы. Окрашивание тканей кислым фуксином. Чтобы определить состояние клеток стеблевого конуса нарастания, через нижнюю полусантиметровую часть побега по центру его делают продольный срез. В последующем просматривают лишь одну половину, которую предварительно погружают в 0,3%-й раствор фуксина па 15 мин. Затем при помощи [c.224]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология