Кролик иммунизация

Иммунизация кроликов. Для иммунизации берут несколько кроликов любого пола в возрасте от полугода до года и выбирают кролика с наивысшими титрами антител. [c.307]

Для реакции преципитации необходимо иметь специфические антисыАоротки достаточно высокого титра. В лабораторных условиях кролик — наиболее удобный продуцент таких антисывороток. Существует два типа схем иммунизации животных-продуцентов 1) иммунизация без введения адъювантов (вещества, стимулирующие образование антител) и 2) иммунизация с адъювантами. [c.116]

Л. Пастеру удалось избавить человечество еще от одной страшной болезни — бешенства. Вирус бешенства, попадая в организм, медленно развивается в клетках мозга. Л. Пастер приготовлял вытяжки из высушенных тканей мозга кроликов, зараженных этим вирусом, и использовал полученные препараты в качестве защитной прививки. Высушивание ослабляло вирус, но не препятствовало образованию антител, т. е. сохраняло антигенную активность. Однако химизм процессов иммунизации оставался совершенно неизвестным, и бактериологи нуждались в активной поддержке химиков. В начале XX в. химик и врач П. Эрлих утвердил основы химиотерапии, поставив задачей отыскание соединений, которые убивали бы клетки бактерий, не затрагивая клет- [c.180]

Иммунизация кролика для получения иммунной сыворотки. Для получения иммунной сыворотки проводят цикл иммунизации кролика убитой вакциной — взвесью убитых бактерий, содержащей 1 млрд. микробных тел в 1 мл. Вакцину вводят в краевую вену уха кролика 3 раза с интервалами в 6 дней. Через 7 дней после последнего введения антигена у кролика берут кровь, из которой готовят сыворотку и титруют для выявления в ней антител. [c.102]

Клетки фиксировали формальдегидом, обезвоживали и подвергали воздействию антител, полученных путем иммунизации кроликов белком микротрубочек. Затем клетки обрабатывали флуоресцирующими антителами козы, специфичными. в отношении кроличьего у-глобулина (дополнение 5-Е), и [c.277]

Для выведения линий животных, устойчивых к возбудителям инфекций, можно использовать другой подход, заключающийся в создании путем трансгеноза наследуемых иммунологических механизмов. С этой точки зрения рассматривают самые разные гены, ответственные за работу иммунной системы гены основного комплекса гистосовместимости, Т-клеточных рецепторов, лимфокинов. Наиболее обнадеживающими на настоящее время являются предварительные результаты, полученные при введении мышам, кроликам и свиньям генов, кодирующих Н- и L-цепи какого-либо моноклонального антитела. Идея этого подхода заключается в том, чтобы снабдить трансгенное животное наследуемым механизмом защиты, позволяющим обойтись без иммунизации с помощью прививок. [c.434]

Гемолитическую сыворотку для РСК получают путем иммунизации кроликов суспензией эритроцитов барана. [c.71]

Например, если немеченая антисыворотка была получена путем иммунизации кроликов, то на втором этапе используют меченую антивидовую кроличью сыворотку, полученную путем иммунизации кроличьими гамма-глобулинами ослов или каких-либо других животных. При этом антиглобулиновые меченые АТ покрывают вторым слоем исследуемый АГ (первый слой — за счет немеченых АТ, которые, в свою очередь, служат АГ для анти-глобулиновой сыворотки). В результате этого АГ становится видимым в люминесцентном микроскопе (как и в прямом варианте РИФ). [c.75]

Иммунологическое сравнение белков осуществляется в общих чертах следующим образом. Какой-то белок, например альбумин, выделяют из ткани, скажем, шимпанзе и очищают. Затем его инъецируют кролику или какому-либо другому животному. В ответ на чужеродный белок, или антиген, у него развивается иммунная реакция, в результате которой образуются антитела. Эти антитела, содержащиеся в крови кролика, могут реагировать не только со специфическим антигеном (в нашем примере-с альбумином шимпанзе), но и с некоторыми родственными белками (например, с альбуминами других приматов). Чем больше сходство между белком, использованным при иммунизации кролика, и сравниваемым с ним белком, тем активнее иммунная реакция. Степень сходства между специфическим антигеном и сравниваемым с ним [c.229]

Использование антисыворотки может обогатить минорную фракцию в популяции, состоящей из двух видов микроорганизмов. При исследовании смешанной культуры, в которой присутствуют два вида морской спириллы —крупные и мелкие, Линн и Криг [45] обнаружили, что мелких спирилл значительно больше. Это делало невозможным получение отдельных колоний крупных спирилл методом посева в чашки. Более того, для этих целей не подходил ни один из многочисленных методов селекции. Для получения накопительных культур крупной спириллы авторы выделили мелкую спириллу и использовали ее для иммунизации кролика. Когда полученную антисыворотку добавили к смешанной культуре, мелкие спириллы агглютинировали и осели на дно пробирки. Для получения отдельных колоний методом посева в чашки использовали надосадочную жидкость, содержащую теперь много крупных спирилл. [c.295]

Для целей анализа подбирают такие условия иммунизации животных, при которых образовывались бы антитела с максимальной специфичностью и прочностью связи с антигеном. В зависимости от структуры антигена и поставленной задачи для получения антител используют различные виды животных от мелких лабораторных (мыши, морские свинки, кролики, куры) до крупных (овцы, козы, лошади). После нескольких инъекций антигена в присутствии стимуляторов иммунного ответа в сыворотке крови накапливаются специфические антитела. При иммунизации крупных животных можно получать большие количества антител для практических целей. В последнее время для иммунизации стали использовать кур, у которых антитела накапливаются в желтке яиц, что упрощает их получение и выделение. [c.103]

Провести внутривенно иммунизацию кролика убитой вакциной для получения имунной сыворотки (первое введение антигена). [c.97]

Независимо от схемы иммунизации одним и тем же антигеном следует одновременно иммунизировать группу животных, так как обычно наблюдаются весьма большие индивидуальные различия в иммунном ответе. Чем больше группа иммунизируемых животных, тем выше вероятность получения антисыворотки достаточно высокого титра в наиболее короткий срок. Это особенно важно при получении антисыворотки к смеси белков, например при иммунизации кроликов белками сыворотки крови для получения антисыворотки, используемой в] иммунселектрофорезе. Именно в этом случае можно ожидать образования антител к ряду компонентов смеси. Для получения антисыворотки к белковым антигенам вполне достаточно иммунизировать 1%-ными белковыми растворами. Белок обычно растворяют в 0,15 М растворе ЫаС1 этим же раствором разбавляют сыворотку крови для иммунизации. [c.116]

Провести иммунизацию кролика убитой вакциной (второе введение антигена). [c.97]

Получение антител, специфичных к определенному белку, производится повторным инъецированием очищенного белка в организм животного кролика, морской свинки, овцы, козы, курицы, лошади, мыши. Процедура иммунизации остается пока еще эмпирической и зависит от иммуногенности конкретного белка. Так, для некоторых растительных белков достаточно для всякой процедуры иммунизации доли миллиграмма (некоторые ферменты типа а-амилаз, рибулозобисфосфаткарбоксилаза, ФЕП-карбокси-лаза), тогда как других белков (некоторые фракции проламинов семян) требуется несколько десятков миллиграммов (в очищенном виде), чтобы путем нескольких инъекций вызвать образование антител. [c.95]

В нашей лаборатории гидроокись алюминия используется при иммунизации кроликов для получения антисыворотки к сывороточным белкам человека (например, для иммуноэлектрофоретических исследований). Ниже описывается способ получения антисыворотки. [c.118]

НА в структуру КПА-1 и БД в структуру КПА-П вводили посредством реакции азосочетания. Для исследования иммуногенно-сти КПА-1 и КПА П проводилась иммунизация кроликов водными растворами КПА-1 или КПА-П. Методом встречной иммунодиффузии в агаре было установлено [102], что полученные иммуносыворотки (соответственно, А и Б) не взаимодействуют с исходным полимером-носителем - терполимером ВП-КК-п-КАФ, но реагируют с соответствующим КПА, использованным в низкой концентрации (2.010 мол/л). [c.185]

Иммунизацией кроликов КПА П1 была получена иммуносыворотка В, которую использовали в качестве тест-системы для определения наличия КБА, содержащих 3-ГАКв крови опьггных животных и пациентов. Объектом исследования служили сыворотки крови рабочих резиновой промышленности, имеющих повышенный риск заболеваний опухолями легких и желудка [107]. Определение наличия 3-ГАК-КБА в сыворотке крови проводилось методом встречной иммунодиффузии в агаре. В опытах использовалась сыворотка 56 рабочих. Контролем служила сыворотка крови 30 [c.186]

Пептиды из нитрованного лизоцима, содержащие остатки нитротирозина, выделяли на сефарозе (Sepharose) с иммобилизованными антителами [45] (рис. 34.16). Антитела получали иммунизацией кроликов и коз комплексом нитротирозин—белок. Антитела выделяли из сыворотки методом аффинной хроматографии на сефарозе с фиксированным нитро-у-глобулином [46]. После десорбции 0,1 М уксусной кислотой антитела конденсировали с сефарозой, получая, таким образом, иммуносорбент. Последний использовали для выделения в одну стадию пептидов с остатком нитротирозина. [c.415]

В системе А, В, О антитела возникают спонтанно, т. е. они возникают у человека естественным путем. Но в отношении групп крови Rh антитела возникают лишь в результате реакции иммунизации. Антигены Rh были впервые обнаружены при введении крови обезьяны макака-резус (Rhesus, откуда и символ Rh) кроликам и морским свинкам, у которых при этом возникали антитела против антигенов, содержавшихся в клетках крови резуса. При изучении реакции активированной таким путем сыворотки крови с кровью различных людей было обнаружено, что характер этой реакции различен. Прежде всего было установлено, что около 85% европейцев являются Rh-положительными носителями одного или большего числа резус-факторов, а у 15% подобные антигены отсутствуют, т. е. эти люди являются Rh-отрицательными. Затем при более детальном анализе удалось выявить частоту всех различных аллелей Rh. [c.440]

Существование системы групп крови ABO, которая хотя и оставалась неизвестной столь долгое время, было показано благодаря присутствию в сыворотке здоровых людей изоагглютиногенов анти-А и анти-В. Однако прощло более четверти века, пока у человека были открыты другие системы групп крови. В 1927 г. Ландштейнер и Левин, применив адсорбированные сыворотки кроликов, иммунизированных эритроцитами человека, доказали существование М-и N-антигенов (также Р). Поскольку анти-М- и анти-N-изоагглютинины встречаются редко и поскольку иммунизация соответствующими антигенами происходит с трудом, эти антигены не имеют значения при Переливании крови. В основном они представляют интерес для судебных медиков и антропологов. [c.74]

Хотя эксперименты, в которых в качестве индикаторов использовались меченные изотопами вещества, дали много ценных сведений относительно синтеза белка, тем не менее в этой области до сих пор еще остались нерешенными основные проблемы. На основании этих опытов невозможно решить, происходит ли непрерывное самообновление белков путем синтеза и последующего распада отдельных молекул белка или же оно обусловлено тем, что каждая из этих молекул, не распадаясь нацело, постоянно обменивает свои отдельные составные части. Подобный обмен может достигаться, например, путем временного размыкания пептидных связей и включения аминокислоты между концами раскрытых цепей. Для разрешения этой проблемы были использованы иммунологические методы. Как уже указывалось в гл. XIV, антитела находятся во фракции у глобулинов сыворотки. Если вызвать образование антител у кролика, иммунизируя его каким-либо антигеном, то вновь образованные иммунные т-глобулины можно отдифференцировать от f-глобулинов, присутствовавших до иммунизации, по их способности преципитировать соответствуюший антиген. Так, например, инъекция полисахарида пневмококков SIII приводит к образованию SIII-анти-тел во фракции глобулинов иммунной сыворотки. Если подопытным кроликам помимо антигена вводится N -глицин, то через небольшой промежуток времени меченая аминокислота обнару- [c.390]

В течение хронического опыта велось наблюдение за общим состоянием и весом всех животных. У кроликов следили еще за скоростью свертывания крови, длительностью гипноза и продукцией специфических антител после иммунизации, у морских свинок — за работоспособностью. У белых мышей изучали потребление кислорода, морфологический состав периферической крови, способность к суммации подпороговых кожноэлектрических импульсов и условнорефлекторную деятельность. В конце эксперимента у мышей исследовали работоспособность методом плавания. [c.146]

Иммунизацию кроликов проводили после 47 суток хронического отравления. Животным однократно подкожно вводили гретую брюшнотифозную вакцину, изготовленную из штамма в дозе 1 млрд. микробных тел (по оптическому стандарту). Через 7 14 21 28 и 35 суток после иммунизации у кроликов из ушной вены брали кровь и с сывороткой ее ставили реакции агглютинации по макроскопическому объемному методу (М. Н. Лебедева, 1955). При этом использовали брюшнотифозные монодиагностикумы О (IX) и Н ( ) производства Ленинградского института вакцин и сывороток. Последнее разведение сыворотки, дававшее отчетливую реакцию агглютинации (50%, или ++), принимали за титр соответствующих агглютининов у данного животного. [c.147]

В течение эксперимента существенные различия были обнаружены между подопытными и контрольными животныдш лишь у кроликов в выработке специфических антител после иммунизации и у мышей в условнорефлекторной деятельности и в иродолжительности времени плавания. Во всех остальных изучавшихся показателях статистически значимых различий между животными подопытной и контрольной групп пе наблюдалось. [c.147]

Однако вскоре возникла еще одна неожиданность ослабление гибели кроликов, не имевшее отношения к иммунитету. Подтвердившееся предположение, что жесткий отбор под влиянием вируса постепенно привел к развитию устойчивости кроликов к миксоматозу, объясняло снижение эффективности метода лишь частично. Не меньшее значение имело поэтому выявление-слабовирулентных вирусов миксоматоза. Очевидно, наиболее вирулентные штаммы погибли вместе с хозяином вскоре после начала эксперимента, в то время как выживаемость ослабленных штаммов возросла. Наименее вирулентные штаммы действуют подобно живым вакцинам, и огромное число животных подвергается естественной активной иммунизации на всю жизнь. Именно поэтому численность кроликов в Австралии можно в течение длительного времени удерживать на низком уровне только при условии дальнейшего искусственного их инфицирования штаммами вируса миксоматоза, отбираемыми на высокую вирулентность. [c.207]

Для приводимых ниже опытов мы пользовались раствором фенолазы из грибов La tarius vellereus. 10 см этого раствора, прибавленные к 2.5 г пирогаллола в 40 см воды и оставленные на 24 часа, давали 0.046 г пурпурогалина. Кроликам впрыскивалось в ушную вену по 2—3 см этого раствора фенолазы каждые 5—6 дней. Если после 6 инъекций сыворотка опытного животного по своему действию на фенолазу не отличалась заметным образом от сыворотки нормального кролика, то иммунизация временно прерывалась и возобновлялась через 2—3 недели. Таким образом, было иммунизировано семь кроликов. У четырех из них сыворотка обнаружила сильное задерживающее действие на фенолазу, у двух задержка была слабее и один вообще ие дал задержки. Задерживающее действие проявлялось независимо от природы субстрата и от собственной реакции (концентрации водородных ионов) испытуемой сыворотки. [c.560]

В предыдущей работе было показано, что при внутривенном введении кроликам растворов фенолазы сыворотка опытных животных приобретает истинные — не зависящие от природы субстрата и реакции среды — антифенолатические свойства. В течение дальнейшей работы были иммунизированы еще 13 кроликов. Всего за время работы были иммунизированы 19 кроликов, из которых 17 дали положительный результат. Таким образом, самый факт иммунизации по отношению к фенолазе не подлежит ни малейшему сомнению. [c.565]

Еще рельефнее выступают эти взаимоотношения при сравнительном опыте, поставленном с сыворотками трех кроликов, иммунизированных La tarius, и четырех, иммунизированных Russula. Взятые в этом опыте чрезвычайно сильно действующие сыворотки анти-La tarius были получены от животных, очень долго подвергавшихся иммунизации. [c.567]

Оказалось, таким образом, что кипяченый сок при внутривенном введении кроликам неспособен сообщить их сыворотке антифенолатические свойства. Так как не была исключена возможность, что мы в данном случае имеем дело с индивидуально невосприимчивыми кроликами, мы подвергли их затем иммунизации активными растворами соответствующих препаратов фенолазы. Уже носле четвертой инъекции сыворотка кроликов обнаруживала ясно выраженные задерживающие свойства при дальней-щих инъекциях задерживающая сила их еще возросла. [c.568]

Специфичность антифенолатических сывороток обнаруживается ка при окислении гваякола, так и ири окислении пирогаллола. Иммунизация кроликов препаратами фенолазы, инактивироваппыми посредством кипячения, дала отрицательные результаты. При дальнейшей иммунизации активными препаратами те же ншвотные дали специфические антисыворотки. [c.571]

Иммунизация производилась автолизированным соком пивных дрожжей. Сухие дрожн и заливались двойным объемом воды и сохранялись под толуолом при комнатной температуре в течение 10—12 дней. По истечении этого времени первоначально густая масса становилась значительно более жидкой она фильтровалась через большие складчатые фильтры, и фильтрат сохранялся под толуолом. Подвергавшиеся иммунизации крслики получали в вену от 2 до 5 см этого сока через промежутки в 5—6 дней,— в общем обычно 5—6 инъекций. Этот препарат был впрыснут 8 кроликам [c.572]

Эти опыты были проведены с четырьмя кроликами. Количество инъекций, количество введеннот о фермента и вся остальная методика были точно такие же, как в описанных выше опытах. Очистка инвертазы производилась по Эйлеру и Кульбергу Тот же автолизованный сок, который применялся в первом опыте для иммунизации, был обработан уксуснокислым свинцом. При этом большая часть белков выпадала, а фермент оставался в растворе. К отфильтрованному раствору прибавлялся спирт до содержания 48% осадок растворялся в воде, обрабатывался каолином и еи е раз осаждался спиртом. Осадок, растертый с абсолютным спиртом и отфильтрованный при помощи водоструйного насоса, дал белый порошок, который был высушен в эксикаторе над хлористым кальцием. Для иммунизации был взят раствор этого препарата, по своей активности соответствующий [c.576]

Опыты были проведены с четырьмя кроликами. Двое из них были иммунизированы автолизованным соком, инактивированным путем нагревания на водяной бане при 68° в течение 30 минут. Для иммунизации двух последних кроликов применялся автолизованный сок, который был поставлен на 40 мин. в кипящую воду. Осадок, образовавшийся после кипячения. был отфильтрован. Контрольные опыты показывают в обоих случаях полное отсутствие активности препаратов ка1 в иачале, так и в конце иммунизации. Это следует отметить, так как в литературе приводятся данные о регенерации инактивированных ферментов. В следующей таблице приведены результаты этих опытов по иммунизации [c.577]

В 1940 г. Ландштейнер и Винер [753] при иммунизации кроликов эритроцитами макака-резуса получили сыворотку, которая агглютинировала эритроциты 39 из 45 особей. При сравнении этих антител с антителами, обнаруженными Левином и Стет-соном, авторы пришли к выводу, что в обоих случаях реакция происходит с одним и тем же антигеном. В дальнейшем оказалось, что это не совсем так. В настоящее время антиген, открытый с помощью истинного анти-резус-антитела, называется LW-B честь Ландштейнера и Винера, а Rh-типирование у человека всегда проводится с сывороткой человеческого происхождения, как это было сделано в работе Левина и Стетсона. Последующее изложение вопроса относится только к реакциям с этими антителами человека. [c.210]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология