Денатурация протоплазмы

Свекла, поступающая на сахарный завод, после мойки и уд ления примесей измельчается в тонкую стружку определенны размеров и поступает на экстрагирование (диффузию) для и влечения сахарозы (обессахаривание). Скорость экстракции глубина извлечения резко возрастают при повышении темпер туры (до 70 °С) в результате денатурации белков протоплазм и мембран. Температура экстракции 70—75 °С, при более выс( кой температуре происходит набухание пектиновых вещест снижается упругость стружки, при температуре же ниже 70 интенсивно развиваются микроорганизмы, что приводит к ( порче. [c.112]

Соли тяжелых металлов (меди, свинца, железа и др.) вызывают необратимую денатурацию белка и воздействие их на протоплазму губительно. Однако если к раствору белка постепенно и в очень малых количествах прибавлять эти соли, то денатурация белка не наступает. [c.210]

В поисках причин, ограничивающих жизненные процессы рамками определенных температур, исследователи сталкиваются с белками, которые являются основным строительным материалом протоплазмы, и ферментами, которые также обладают белковой природой. Известно, что белки весьма чувствительны к температуре и легко подвергаются необратимой тепловой денатурации. Границы этой температуры близки к верхним границам жизни (50—60Х). [c.89]

Влияние тепла проявляется, как полагают, в сокращении протяженности этой структуры если повышение температуры оказывается недостаточным, чтобы нарушить конфигурацию полипептида, то после охлаждения может произойти восстановление первоначальной структуры. При снижении pH размеры льдоподобной оболочки в некоторых случаях увеличиваются [3861. Влияние электролитов и неэлектролитов зависит, вероятно, от того, в какой степени они способны вызвать переориентировку в льдоподобной оболочке. Мочевина, например, с ее выраженной способностью воздействовать на водородные связи может разрушать льдоподобную структуру водной оболочки белковых молекул. Некоторые ионы, наоборот, вероятно, способствуют стабилизации структуры и защищают белок от денатурации, вызываемой другими агентами [90]. Данных о том, как влияет на структуру оболочки само понижение гидратации, сравнительно мало. Известно, однако, что при недостатке влаги изменяется вязкость протоплазмы, и эти наблюдения позволяют предположить, что в диапазоне значений водного потенциала, обычном для завядающих растений, т. е. примерно от —50 до —10 бар (что в общем соответствует активности воды от 0,96 до 0,99), могут происходить заметные изменения структуры. [c.302]

Фотохимическая реакция в каждом данном биологическом соединении проходит под воздействием ультрафиолетовых лучей определенной длины волны. Так, ультрафиолетовые лучи с длиной волны 275. .. 280 нм поглощаются преимущественно белками ультрафиолетовые лучи области 250. .. 260 нм - нуклеиновыми кислотами и нуклеопротеидами лучи с длиной волны 297 нм поглощаются 7-8-дегидрохолестерином (провитамином з) и т.п. Под влиянием поглощенной энергии ультрафиолетовых лучей в организме животных образуются биологически активные продукты - ацетилхолин, гистамин, гистаминоподобные вещества. Кроме того, ультрафиолетовые лучи способствуют денатурации белка и нуклео-протеидов, т.е. изменяют физико-химичес-кое состояние протоплазмы клеток. [c.731]

В конце XIX века Мейер [225] и Шимпер [274] отметили гранулярность структуры хлоропластов. Они сообщили, что в хлоропласте можно различить темные граны, погруженные в более светлую стро.чу. Позднее, однако, было решено, что граны представляют собой артефакт, возникающий в результате денатурации гомогенной коллоидной протоплазмы. Эта точка зрения просуществовала до 30-х годов XIX века, т. е. до того времени, когда Хейтц [154] вновь открыл граны. После этого граны наблюдали и фотографировали в хлоропластах многих видов покрытосеменных и низших растений и притом часто в живых клетках (правда, по данным некоторых исследователей, у отдельных видов они отсутствовали). Хейтц [154] описал граны как плоские диски (фото 1,Л) диаметром 0,3—2 мкм, располагающиеся обычно слоями (фото I, ). Доказательства слоистой структуры хлоропластов представил Менке [221, 222], наблюдавший двойное лучепреломление хлоропластов в поляризованном свете. Эти данные были подтверждены [222] при фотографировании срезов хлоропластов в ультрафиолетовом свете (который несколько увеличивает разрешающую способность светового микроскопа). [c.12]

Итак, резкие сдвиги pH внешней среды за границами безразличной зоны, по-видимому, вызывают денатурацию поверхностного слоя протоплазмы, клетки тем самым становятся ороница0мым1и для Н--и ОН -лонов, происходит сдвиг нормальной реакции, изменяется про-топлазматичеокая структура и наступает необратимое нарушение обмена веществ. [c.198]

Современные представления о сущности изменений метаболизма при денатурации белков протоплазмы приводят к заключению о приспособительном защитном характере этих изменений. С этой точки зрения паранекроз следует рассматривать как охранительную реакцию, направленную к сохранению клеточной системы и ее жизненно важных центров. Об этом свидетельствует динамика метаболизма при воздействии повреждающих агентов. Установлено, в частности, что повышение дыхания, концентрации молочной кислоты и уменьшение содержания креатинфосфата в начале воздействия сменяется в дальнейшем нормализацией дыхания, прекращением образования молочной кислоты, увеличением содержания креатинфосфата и аденозин-трифосфата. [c.20]

Токсичные примеси. Многие химические вещества могут оказы вать на микроорганизмы токсичное воздействие, нарушающее и жизнедеятельность. Так, при значительных, концентрациях фенола формальдегида и других антисептиков происходит денатураци белков протоплазмы, а эфир и ацетон разрушают оболочку клетки Вредные вещества, попадая в бактериальную клетку, взаимодей ствуют с ее компонентами и нарушают их функции. [c.286]

Повреждения могут быть вызваны как проявлением механического феномена, так и обезвоживающим действием внутриклеточного льда. По мнению Дж. Левита (1956), рост кристаллов льда в протоплазме вызывает срезывающие усилия, обусловливающие механическую денатурацию макромолекул. Е. Асахй-на (1959, 1960), исследуя повреждение яйцеклеток морского ежа, предположил, что внутриклеточная кристаллизация не является причиной гибели этих клеток и что повреждение наступает скорее всего в результате выпадения кристаллов в эвтектической точке. Было обнаружено, что температура, при которой погибают яйцеклетки морского ежа, хорошо коррелирует с эвтектической точкой суспензионной среды. Например, когда яйцеклетки -замораживали в растворе КНОз, эвтектическая точка которого составляет —2,8°С, 90% клеток выживало при охлаждении до —2,5°С, но все клетки погибали при охлаждении до —5°С. С другой стороны, в растворе ЫаС1, эвтектическая точка которого составляет —21,6°С, 90% клеток выживало при охлаждении до —25°С и только 3% —после охлаждения до —30"С. Здесь следует отметить, что хотя эвтектическая точка водного раствора ЫаС1 составляет —21,6°С, полное затвердевание в процессе охлаждения не осуществляется вплоть до температур —(27— 30)°С. Е. Асахина предположил, что обезвоживание в эвтектической области приводит к повреждению клеточных мембран и таким образом способствует внутриклеточной кристаллизации. Указанная корреляция, однако, отсутствовала, когда яйца морского ежа другого вида охлаждались со скоростью 5—9°С/мин до температуры —8°С. При этом внутриклеточная кристаллизация наступала, хотя эвтектическая точка морской воды, в которой клетки замораживались, была ниже — 8°С более чем на 12°С. [c.48]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология