Гликозаминогликаны кислые

Обычно соединительные ткани различных типов состоят из кислых гликозаминогликанов и соответствующих соединений их с белками. Ранее при исследованиях соединительной ткани главное внимание уделялось [c.265]

Все гликозаминогликаны являются полианионами благодаря присутствию в их структурах кислых сульфатных групп или карбоксильных групп уроновых кислот. С этой особенностью гликозаминогликанов связаны многие их функциональные свойства. [c.312]

Общим возрастным изменением, которое свойственно всем видам соединительной ткани, является уменьшение содержания воды и отношения основное вещество/волокна. Показатель этого соотношения уменьшается как за счет нарастания содержания коллагена, так и в результате снижения концентрации гликозаминогликанов. В первую очередь значительно снижается содержание гиалуроновой кислоты. Однако не только уменьшается общее количество кислых гликозаминогликанов, но изменяется и количественное соотношение отдельных гликанов. Одновременно происходит также изменение физико-химических свойств коллагена (увеличение числа и прочности внутри- и межмолекулярных поперечных связей, снижение эластичности и способности к набуханию, развитие резистентности к коллагеназе и т.д.), повышается структурная стабильность коллагеновых волокон (прогрессирование процесса созревания фибриллярных структур соединительной ткани). Следует помнить, что старение коллагена in vivo неравнозначно износу. Оно является своеобразным итогом протекающих в организме метаболических процессов, влияющих на молекулярную структуру коллагена. [c.670]

При СЭХ углеводов, содержащих кислотные или основные группировки, вода не всегда является удовлетворительным элюентом, так как электростатические взаимодействия, влияние которых не может быть подавлено с помощью повышения температуры, в данном случае проявляются значительно сильнее. Такого рода осложнения не сопровождают фракционирование олигосахаридов, содержащих только остатки аминодезоксисахаров. Олигосахариды этого класса, образующиеся, например, при гидролизе хитина, можно разделить препаративно методом СЭХ на колонке с биогелем Р-2 [163] или с сефадексом LH-20 [164] в воде, однако, если присутствуют кислые остатки сахаров, как, например, в олигосахаридах из гликозаминогликанов, электростатические взаимодействия приобретают существенное значение, что обычно приводит к ухудшению качества разделения [163, 165]. Однако использование в качестве элюента растворов электролитов позволяет успешно фракционировать кислые олигосахариды на колонках, наполненных биогелем Р-2 или сефадексом Оптимальную концентрацию электролита в элюенте, необходимую для подавления электростатических взаимодействий, нужно определять для каждого конкретного случая. Так, например, Флодин и др. [166] для разделения ди-, тетра-, гекса-и октасахаридов, образующихся при ферментативном гидролизе гиалуроновой кислоты, использовали в качестве элюента 0,1 М Na I, тогда как для фракционирования соответствующих олиго- [c.32]

Электрофорез на мембранах из ацетата целлюлозы с успехом используется для разделения кислых гликозаминогликанов [475, 476] и анализа других кислых полисахаридов, например капсульных полисахаридов бактерий [477], в ацетатных, фосфатных и ииридин-формиатных буферах. Анализ нейтральных полисахаридов можно провести с помощью электрофореза на полосках из ацетата целлюлозы в боратном буфере. Описано, например, разделение различных арабиногалактанов, галактоманнанов и глюканов на ацетате целлюлозы в 0,1 М натрийтетраборат-ном буфере, содержащем 0,1 М хлорида натрия, pH 9,3 [478]. Для удобства наблюдения полисахариды перед нанесением на электрофореграмму окрашивали, однако в большинстве случаев их обнаруживали после разделения, используя для этого раствор алцианового синего в уксусной кислоте. [c.75]

Метод окрашивания полисахаридов перед электрофорезом [478] использовали Павленко и Оводов [479] для анализа ряда нейтральных и кислых полисахаридов с помощью электрофореза в полиакриламидном геле. Для разделения различных компонентов полидисперсных декстранов и амилопектинов с помощью диск-электрофореза ими использованы буферы, содержащие тетраборат натрия (или борную кислоту), трис(гидроксиметил)-аминометан и натриевую соль ЕВТА при pH 9,2—9,3. Электрофорез в полиакриламидном геле используют также для анализа пектиновых веществ [480] и сульфатированных полисахаридов из морских водорослей [481], однако основной областью применения данного метода в химии углеводов является исследование гликопротеинов [482] и гликозаминогликанов (483, 484]. В по- [c.75]

КИСЛЫМ гликозаминогликанам, недавно в соединительной ткани были обнаружены также и гликопротеины. Гликопротеипы найдены во всех типах соединительной ткани во многих случаях они были преобладающими компонентами исследуемой ткани. Однако только некоторые из этих гликопротеинов выделены в высокоочищенном состоянии (табл. 2). [c.266]

Выделение гликопротеинов соединительной ткани связано со многими проблемами. Во-первых, гликопротеипы трудно отделить от кислых гликозаминогликанов. Во-вторых, некоторые гликопротеины прочно связаны со структурными белками волокон (коллагеном, эластином, ретикулином) и могут быть выделены только в результате ферментативной обработки. [c.266]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология