Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Нуклеотидная оперона у oli

    Замечательное достижение последних лет состоит в установлении нуклеотидной последовательности ДНК Е. соН, в промоторно-оператор-ном участке /ас-оперона. Эта последовательность включает конец i-гена и начало 2-гена (рис. 15-4) [39]. Детальное генетическое картирование этой области позволило точно установить нуклеотидную последователь- [c.203]

    Из признания симметричности транскрипции вытекает важный вывод, касающийся в первую очередь тех молекул /п-РНК, которые синтезируются на отдельных генах или отдельных оперонах. Естественно, у нас нет никаких оснований считать, что нуклеотидный состав одной из цепей ДНК в каком-либо гене или в небольшой совокупности рядом расположенных генов близок к суммарному нуклеотидному составу двухцепочечных молекул ДНК всего организма. Иными словами, индивидуальные молекулы т-РНК по своему нуклеотидному составу не должны быть сходны с ДНК. [c.505]


    Транскрипция оперона начинается не с первого гена. Первому гену предшествуют две специфичные нуклеотидные последовательности, а именно промотор ( промоторный ген ), который инициирует начало транскрипции и к которому присоединяется РНК-полимераза, и оператор ( операторный ген ) — место приложения регулирующих воздействий. [c.388]

    В свете этих данных становится понятно, почему мутации, уменьшающие сродство оператора к репрессору в 20-30 раз, приводят к конститутивному выражению генов оперона. В пределах генома мутантные сайты могут утратить преимущество в отношении случайных сайтов. Их специфическое сродство к репрессору по сравнению со случайными сайтами оказывается не настолько выраженным, чтобы они могли сохранять свой статус предпочтительных нуклеотидных последовательностей. [c.186]

    Итак, мы еще не доказали, что зависимость таких различных оперонов от белка БАК неизбежно отражает общий способ регуляции на уровне индивидуальных взаимодействий типа белок-белок или белок—ДНК. Однако такой тип регуляции достигает одной и той же цели выключения альтернативных метаболических путей, если они становятся необязательными при снабжении клетки нужными количествами глюкозы. Снова это свидетельствует о том, что координированный контроль положительного или отрицательного типов может распространяться на ряд локусов, локализованных в разных участках, благодаря наличию повторов нуклеотидных последовательностей в сайтах, связывающих регуляторный белок. [c.201]

    Сравнение нуклеотидных последовательностей промоторных зон многих оперонов показало наличие сходных структур ( консервативных участков или канонических последовательностей ) в районах 10 и 35 нуклеотидов, предшествующих стартовой точке транскрипции (районы —10 и —35 нуклеотидов). По-видимому, именно с этими участками и связывается РНК-полимераза (см. рис. 1). Кроме того, в некоторых случаях важное значение имеет нуклеотидная последовательность, непосредственно примыкающая к стартовой точке. [c.21]

    В обзоре рассмотрены собственные и литературные данные по горизонтальному переносу детерминант устойчивости к соединениям ртути в природных популяциях бактерий. Показано, что практически одинаковые по нуклеотидной последовательности опероны и транспозоны устойчивости к соединениям ртути распространены среди бактерий различных систематических групп, обитающих в географически удаленных регионах земного шара. Обнаружены рекомбинантные тег-опероны и транспозоны. Представленные данные свидетельствуют о распространенности горизонтального переноса детерминант устойчивости к ртути в природе и рекомбинационных взаимодействиях между ними. Исследованы механизмы горизонтального переноса генов у природных штаммов грамотрицательных и грамположительных бактерий. Выделены и исследованы ранее неизвестные транспозоны. [c.124]


    Оператор лактозного оперона располагается сразу за стартовой точкой транскрипции. Долгое время считалось, что присоединение лактозного репрессора к про.мотору стерически мешает присоединению РНК-полимеразы. Однако недавно получены данные, свидетельствующие о том, что репрессор н РНК-полимеразы могут расположиться на промоторе рядом друг с другом. Поэтому приходится ду.мать о более изощренных механизмах репрессии, включающих специфические контакты репрессора с РНК-полимеразой. В лактозном опероне имеется два псевдооператора, сходных по нуклеотидной последовательности с оператором, но обладающих [c.150]

    Т. происходит на участках ДНК, наз. единицами Т. или транскриптонами. В начале и конце транскриптона расположены специфич. нуклеотидные последовательности-соотв. промотор и терминатор. Существование множества транскриптонов обеспечивает возможность незавиеимого считывания разных генов, их индивидуального включения и выключения. У животных, растений и др. эукариот в состав транскриптона, как правшю, входит один ген. Транс-криптоны бактерий обычно наз. оперонами ми. из них содержат по неск. генов, обычно функционально связанных (напр., кодирующих неск. ферментов, участвующих в синтезе той шш иной аминокислоты). [c.619]

    Гурский, Готтих и соавторы предложили код белково-нуклеинового узнавания, определяющий регуляцию транскрипции (1976). Предполагается, что участок регуляторного белка состоит из двух антипараллельных сегментов полипептидной цепи, образующих -структуру. Узнавание основано на комплементарности этой структуры и последовательности нуклеотидных нар ДНК. Важное свойство такой последовательности состоит в асимметричном распределении гуанинов между двумя нитями ДНК. В предлагаемом коде шесть аминокислотных остатков — Сер, Тре, Асп, Гис, Глн, Цис—и их последовательность в сте-реоспецифичном участке белка определяет последовательность пар оснований ДНК, с которой данный белок преимущественно связывается. Код, разработанный на основе стереохимии, подтвержден взаимодействием Лак-репрессора с Лак-опероном и другими примерами. [c.288]

    Часто у бактерий белки одного метаболического пути кодируются смежными структурными генами. Нуклеотидная последовательность, в которой закодировано более одного белка, называется опероном. Обычно оперон находится под контролем единственного промотора, и при его транскрипции образуется одна длинная молекула мРНК, кодирующая несколько белков. При [c.42]

    Большая часть нуклеотидной последовательности /ас-оперона Е. oli уже определена. Известна полная нуклеотидная [c.959]

Рис. 29-28. Структура промотор-операторной области /вс-оперона Е. oli. Показана нуклеотидная последовательность обеих цепей ДНК, начиная с последних 15 оснований регуляторного (i) гена и кончая первыми девятью основаниями гена г. Видно, что промотор перекрывает оператор. Участок связывания комплекса САР-сАМР состоит приблизительно из 38 оснований, а участок первоначального связывания РНК-полимеразы-приблизительно из 40 оснований. Участок связывания /ас-репрессора в операторе содержит около 28 пар оснований и характеризуется симметрией второго порядка. Рис. 29-28. <a href="/info/355036">Структура промотор</a>-операторной области /вс-оперона Е. oli. Показана <a href="/info/98217">нуклеотидная последовательность</a> обеих цепей ДНК, начиная с последних 15 оснований регуляторного (i) гена и кончая первыми девятью <a href="/info/32803">основаниями гена</a> г. Видно, что промотор перекрывает оператор. <a href="/info/166649">Участок связывания</a> комплекса САР-сАМР состоит приблизительно из 38 оснований, а участок <a href="/info/1645046">первоначального связывания</a> РНК-полимеразы-приблизительно из 40 оснований. <a href="/info/166649">Участок связывания</a> /ас-репрессора в операторе содержит около 28 пар оснований и характеризуется <a href="/info/92907">симметрией второго</a> порядка.
    Генетические эксперименты свидетельствуют о том, что фаг при переходе в состояние профага включается в хромосому клетки-хозяина в определенном месте-между 0а/-опероном и биотиновой областью (рис. 15.12). Включению фага предшествует его присоединение к определенному участку бактериальной ДНК. Ранее считали, что оно определяется высокой степенью гомологии нуклеотидных последовательностей, однако эта гомология оказалась незначительной по-видимому, большую роль здесь играет кодируемый фагом белок-так называемая интеграза. В определенном участке фаговой ДНК att В) и в соответствующем участке бактериальной ДНК (att X.) этот белок катализирует разрыв и перекрестное воссоединение геномов фага и клетки-хозяина. [c.454]

    Участки ДНК, к которым присоединяются регуляторные белки,-это не сами структурные гены, а непосредственно прилегающие к ним области, называемые промоторами и операторами. Промотор представляет собой последовательность оснований, распознаваемую ДНК-зависимой РНК-полимеразой он служит местом связывания РНК-полимеразы, и от него начинается транскрипция. С промотором связаны и гены, экспрессия которых не подвержена регуляции. Промоторы регулируемых генов могут изменять свои свойства в результате связывания регуляторных белков. Оператор представляет собой нуклеотидную последовательность, расположенную между промотором и структурными генами. Он тоже взаимодействует с регуляторным белком-репрессором, от которого зависит, будет ли подавлена транскрипция или она произойдет. Промотор, оператор и структурные гены образуют оперон. Опероном называют группу функционально связанных между собой генов. Белки, кодируемые генами одного оперона,-это, как правило, ферменты, катализирующие разные этапы одного метаболического пути. Транскрипция генов оперона ведет к синтезу одной общей (полицистронной) молекулы мРНК. [c.481]


    Индукция лактозиого оперона (отрицательный контроль). Лактозный оперон (ia -оперон) Es heri hia oli содержит /ас-промотор, /o -оператор и структурные гены для трех ферментов -галактозидазы, пермеазы и трансацетилазы (рис. 16.7). Этот оперон был тщательно исследован удалось выделить его ДНК была определена нуклеотидная последовательность области промотор-оператор были вьщелены и исследованы регуляторные белки. [c.482]

    На рис. 15.15 показана нуклеотидная последовательность контролирующей области да1-оперона. Использование других ее стартовых точек при транскрипции определяется условиями инициации. В присутствии активного белка БАК инициация осуществляется в точке, обозначаемой обычно + 1. (Все положения оснований в случае обоих промоторов обозначаются относительно этой точки.) Эта стартовая точка использована для идентификации промотора да1Р1, который содержит последовательность Прибнова между основаниями в положениях — 12 и — 16 и не содержит канонической последовательности — 35. В отсутствие белка БАК оперон еще может транскрибироваться, но инициация происходит в положении — 5. Эта точка соответствует промотору да1Р2, в котором имеется последовательность Прибнова между основаниями в положениях — 17 и — 11. [c.200]

    Семь оперонов, кодирующих рРНК Е. соН, называются rmA-G. Тесная связь их в хромосоме отсутствует, и не известно, как поддерживается одинаковый нуклеотидный состав их последовательностей. Поскольку число генов невелико, можно определить их точные нуклеотидные последовательности и таким образом непосредственно увидеть, являются ли все рРНК-гены идентичными или имеют небольшие различия, не обнаруживаемые в популяции молекул рРНК. [c.296]

    На сегодняшний день оперонная теория получила весьма детальное экспериментальное подтверждение. Удалось выделить репрессор в чистом виде и показать, таким образом, что он действительно имеет белковую природу. Была определена аминокислотная последовательность белка-репрессора, которая, как оказалось, полностью совпадает с последовательностью, предсказанной на основании определения нуклеотидной последовательности гена I. Была также установлена нуклеотидная последовательность регуляторных участков /ас-оперона, промоторного и операторного (рис. 15.9), локализованы мутации в этих участках. Показано, что очищенный репрессор в отсутствие индуктора действительно связывается с изолированным операторным фрагментом ДНК. Репрессор также связывается с индуктором, при этом происходит аллостерическое изменение его пространственной структуры, приводящее к значительному ослаблению связи репрессора с операторной областью ДНК. [c.177]

Рис. 15.23. Аминокислотные последовательности лидерных полипептидов, предсказанные на основании нуклеотидных последовательностей пяти оперонов биосинтеза аминокислот Е. oli и S. typhimurium. Рис. 15.23. <a href="/info/1404225">Аминокислотные последовательности лидерных</a> полипептидов, предсказанные на <a href="/info/510218">основании нуклеотидных</a> последовательностей пяти <a href="/info/1338669">оперонов биосинтеза аминокислот</a> Е. oli и S. typhimurium.
Рис. 15.25. Модель фазовой вариации, основанная на представлении об инверсии нуклеотидной последовательности, содержащей промоторную область оперона Н2-гН1. (По ZiegJ. et al, 1977. S ien e, 196, 170.) Рис. 15.25. <a href="/info/881064">Модель фазовой</a> вариации, основанная на представлении об инверсии <a href="/info/98217">нуклеотидной последовательности</a>, содержащей промоторную область оперона Н2-гН1. (По ZiegJ. et al, 1977. S ien e, 196, 170.)
    На рис. 41.12 представлены аминокислотные последовательности лидерных пептидов, предсказанные по соответствующим нуклеотидным последовательностям, для нескольких других оперонов Е, oli и Salmonella typhimurium. Из рисунка видно, что в лидирующей последовательности существенно превалирует именно та аминокислота, ферменты биосинтеза которой кодируются данным опероном. [c.119]

    Изучение транскрипции аминокислотных оперонов in vitro, а также анализ нуклеотидных последовательностей регуляторных [c.25]

    РИС.3.5. Часть нуклеотидной последовательности регуляторной области /ас-оперона .со//. Две области с псевдо-С -симметрией ( палиндромы ) закрашены. Указаны возможные места связывания РНК-полимеразы, /ас-репрессора (ингибитора транскрипш1и этого оперона) и САР-белка (обшего активатора некоторых областей транскрипции). Указана часть последовательности, которая транскрибируется в начальный участок мРНК, кодирующей /З-галактозидазу (г-ген). (По рисунку У. Гилберта.) [c.159]

    Рассмотрим принцип их действия на примере триптофанового оперона. Аттенюатор располагается в лидерной части оперона, т. е. между промотором и первым геном. Он представляет собой нуклеотидную последовательность с двумя гомологичными инвертированными повторами, так что шпильки могут образовываться участками I и 2, 2 и 3, 3 и 4, причем шпилька 3 4 является терминатором транскрипции (рис. 1.5), а ее образованию препят- [c.24]

    В трансформированных растительных клетках Т-ДНК активно транскрибируется. мРНК Т-ДНК в растительных клетках устроены аналогично эукариотическим мРНК, т. е. на их 5 -концах находится 7-метилгуанозин, а на З -концах — сайты полиаденилирования ААУАА и полиадениловые цепочки. Эукариотической особенностью транскрипционного механизма Т-ДНК является и отсутствие в ней оперонов, в то время как в других частях Ti-плазмид опероны есть. Это пока единственный обнаруженный в природных условиях пример функционирования прокариотической нуклеотидной последовательности в эукариотических организмах. Следует полагать, что функциональная часть Т-ДНК за [c.93]

    Анализ природных изолятов Е. oli путем исследования электрофоретических свойств нескольких белков выявил клональную структуру популяции 1691 штамм был подразделен на три подвида (Whittam et ai, 1983). Это, казалось, свидетельствовало о низком уровне рекомбинационных обменов в природе у этих клеток и об их репродуктивной изоляции. Но нуклеотидный анализ области триптофанового оперона 36 штаммов из той же коллекции, подтвердив наличие клональности, вскрыл, одна- [c.132]


Смотреть страницы где упоминается термин Нуклеотидная оперона у oli: [c.149]    [c.203]    [c.203]    [c.223]    [c.236]    [c.252]    [c.149]    [c.46]    [c.315]    [c.621]    [c.621]    [c.485]    [c.21]    [c.22]    [c.178]    [c.195]    [c.118]    [c.120]    [c.118]    [c.120]    [c.129]    [c.199]   
Современная генетика Т.3 (1988) -- [ c.178 ]




ПОИСК







© 2026 chem21.info Реклама на сайте