концевая хлоропластов

Как прокариотическая, так и эукариотическая рибосомы содержат две различные высокополимерные РНК, по одной на каждую субчастицу, и одну относительно низкомолекулярную РНК, так называемую 58 РНК. Кроме того, эукариотические рибосомы содержат и другую относительно низкомолекулярную РНК, так называемую 5,88 РНК, которая является гомологом 5 -концевой части (около 160 нуклеотидных остатков) высокополимерной РНК большой субчастицы прокариот. В рибосомах хлоропластов высших растений имеется также так называемая 4,58 РНК, которая является гомологом З -концевой части (около 100 нуклеотидных остатков) высокополимерной РНК большой субчастицы бактерий. Таким образом, 5,88 РНК эукариотических рибосом и 4,58 РНК хлоропластных рибосом являются результатом расщепления ( процессинга ) предшественника высокополимерной РНК большой субчастицы в процессе биогенеза или созревания рибосом они непосредственно участвуют в формировании структуры высокополимерной РНК большой субчастицы, как и их гомологичные последовательности у бактерий (см. ниже), и поэтому могут не рассматриваться как самостоятельные виды рибосомной РНК. В дальнейшем изложении они будут обсуждаться вместе с высокополимерной РНК большой субчастицы. Не исключено, что у некоторых видов организмов могут существовать и другие разрывы ковалентной цепи высокополимерной РНК в зрелой рибосоме. [c.68]

Белки хлоропластов подразделяют на 3 группы растворимые (включая ферменты цикла Кальвина) белки электронтранспортных цепей и, наконец, мем бранные. белки (то есть все остальные белки мембран непосредственно не катализирующие перенос электро нов), называемые также структурными. Из этих трех групп структурные — самые простые белки. Они имеют всего один М-конец (т. е. всего одну концевую аминогруппу). Составляют не меньше 40% от общего количества белков мембран хлоропластов. Другой компонент ламелл — белки электронтранспортных цепей. Растворимые белки локализованы в основном не в мембранах, а в строме. [c.70]

Сигнальные пептиды для переноса белков в хлоропласты напоминают раннее описанные пептиды для импорта в митохондрии. По в растительных клетках имеются и митохондрии, и хлоропласты, и соответственно, белки должны выбирать между ними Папример, в растительных клетках бактериальный фермент, присоединенный (методами генной инженерии) к N-концевой последовательности митохондриального белка, направляется в митохондрии. Тот же белок, связанный [c.33]

НО локализованы в хлоропластах первый в области стромы, второй — в гранах. Некоторые белки, например экстенсии,, секретируются в клеточную стенку. Такие белки содержат N-концевую (5 ) пептидную последовательность, которая определяет внутри- или внеклеточное перемещение (рис. 6.1). Затем-часто в процессе переноса эта последовательность отщепляется,, и образуется зрелый белок. В случае белков, предназначенных для переноса через мембрану, например в строму хлоропластов, концевой пептид называют транзитным, а в случае переноса в мембрану — сигнальным. Эти пептиды. обладают различными механизмами действия (разд. 6.5). [c.307]

Принципиально похожая 23S РНК содержится в большой субчастице 70S рибосом хлоропластов высших растений однако ее 100-нуклеотидный З -концевой фрагмент отшеплен, существуя в виде естественного ковалентно несвязанного 4,58 фрагмента. [c.70]

Как и в случае 16S (18S) РНК, довольно протяженная З -концевая последовательность 23S (28S) РНК не входит в состав главных доменов, а лищь образует несколько спиральных шпилек. В 23S РНК бактерий 110-нуклеотидная З -концевая последовательность сложена в три шпильки (две простые и одна составная из двух спиралей, разделенных неспаренным участком, см. рис. 45). В рибосомах хлоропластов высших растений 100-нуклеотидная З -концевая последовательность в цепи 23S РНК отсутствует и представлена в виде отдельной цепочки 4,5S РНК. 4,5S РНК складывается в две шпильки (одна простая и одна составная из двух спиралей), гомологичные (даже почти идентичные) З -концевым шпилькам 23S РНК бактерий. [c.89]

Тщательное изучение окислительно-восстановительных реакции in vivo позволило сделать заключение о существовании в хлоропластах обоих рассмотренных выше случаев фотоиндуцированного переноса электронов — циклического и нециклического. Осуществление последнего удается гораздо легче установить, так как при этом происходит окисление концевого донора Д и восстановление такого же количества акцептора А. Циклический транспорт электронов обнаруживается с большим трудом с помощью специальных методов, например, основанных на том, что спектры поглощения отличаются у окисленных и восстановленных веществ. Другой метод обнаружения и количественной оценки циклического переноса электронов в хлоропластах или хроматофорах может заключаться в определении работы, которая при этом осуществляется. Например, вовлечение ацетата в метаболизм у фотогетеротрофных бактерий происходит за счет использования энергии, освобождающейся при циклическом переносе электронов [c.157]

Считается, что образование больших количеств гликолата (обычно он составляет 2—10% от суммы продуктов фотосинтеза, но иногда — до 90,%), при высоких освещенностях и больших концентрациях кислорода в атмосфере, может быть необходимо для окисления избытка НАДНг, накапливающегося в этих условиях. Толберт (1969) предлагает следующую схему связи реакций, осуществляющихся в хлоропластах и пероксисомах (фиг. 84). В этой схеме глиоксилат служит концевым акцептором водорода от НАДФНг, образующегося при фотосинтезе. [c.184]

Так как большинство генов, кодирующих белки современных митохондрий и хлоропластов, находится в ядерном геноме, можно думать, что в ходе эволюции эукариот значительная часть генов органелл была перенесена в ядерную ДНК. Это позволило бы объяснить, почему некоторые из ядерных генов, кодирующих митохондриальные белки, сходны с генами бактерий. Так, например, у курицы М-концевая аминокислотная последовательность митохондриального фермента супероксиддисмутазы гораздо больше похожа на соответствуюший сегмент супероксиддисмутазы бактерий, чем на К-концевой участок того же фермента, выделенного из цитозоля тех же эукариотических клеток. Еще одним указанием на то, что подобные переносы участков происходили в ходе эволюции, служат обнаруженные в ядерном геноме некодирующие последовательности ДНК, имеющие, вероятно, недавнее митохондриальное происхождение очевидно, что эти последовательности были интегрированы в ядерный геном как балластная ДНК. [c.500]

Транспорт белков в хлоропласти во многих отношениях напоминает транспорт в митохондрии и тот, и другой процесс происходят после трансляции, и тот. и другой нуждаются в энергии, и в том. и в другом случае используются гидрофильные N-концевые сигнальные пептиды, которые затем удаляются. Однако имеется по крайней мере одно важное отличие в митохондриях для проведения этого транспорта используется еще электрохимический градиент на их внутренней мембране. В хлоропластах же, где электрохимический градиент имеется не на внутренней мембране, а на мембране гилакоида (см. гл. 7), но-видимому, для транспорта через внешнюю двумембранную оболочку в качестве источника энергии используется только гидролиз АТР. [c.33]

Сравнение аминокислотной последовательности цитохрома Ь из хлоропластов шпината с таковыми цитохромов Ь из митохондрий животных, растений и грибов выявило сходство в первых (считая от Н-конца) 200 остатках, В то же время существует и явное различие, состоящее в том, что цитохром Ье существенно короче (211 остатков), чем митохондриальные цитохромы Ь (330—385 остатков). При этом обнаруживается гомология между 17 кДа-субъ-единицей комплекса Ье и остатками 260—353 митохондриального цитохрома Ь. Поэтому можно полагать, что некая функция, присущая С-концевой части митохондриального цитохрома Ь, в хлоропластах выполняется 17 кДа-субъединицей. [c.72]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология