Аденозина фосфаты, разделение

Абсорбционная спектроскопия 754, 773 Адамса катализатор 274, 290 Адениловая кислота 909, 910 Аденозина фосфаты, разделение 910 Аднпиновая кислота 907 Адонит, определение 349 Адреналин 646 Адсорбенты 890 [c.992]

Однако в большинстве случаев происходит хаотическая конденсация, и этот метод имел бы лишь очень ограниченное значение для синтеза пирофосфатов, если бы не было ионообменных и других методов разделения. Несимметричные пирофосфаты можно получать с хорошими выходами, применяя большой избыток одного из компонентов. Корана и сотр. [87, 159, 192, 273], изучавшие детально взаимодействие нуклеозид-5 -фосфатов с избытком 85%-ной фосфорной кислоты, синтезировали 5 -пирофосфат (СХХП) и 5 -трифосфат (СХХIII) аденозина, уридина и гуанозина. Вначале в качестве растворителя применяли водный пиридин, но при этом возникли трудности из-за неодинаковой растворимости ДЦК и фосфорной кислоты. Эти трудности недавно были преодолены путем [c.119]

Аналогично, ранний метод синтеза FAD, описанный Тоддом и сотр. [24] и включающий конденсацию защищенного аденозин-бензилхлорфосфата с таллиевой солью рибофлавин-5 -фосфата с последующим удалением защитных групп, был модифицирован и улучшен в работах нескольких групп исследователей. Наиболее известным является метод Моффата и Кораны [25], заключающийся в конденсации рибофлавин-5 -фосфата с аденозин-5 -ами-дофосфатом схема (15) . Этими авторами описана также удобная методика хроматографического разделения флавиновых коферментов на анионообменной целлюлозе. [c.590]

N - (6-аминогексил) аденозин-5 -фосфат (т. е. АМФ и пространственная цепь Се), иммобилизованный на агарозе бромциановым методом. Групповой БСС для разделения НАД-зависимых дегидрогеназ и некоторых АТФ-зависимых киназ. Содержание связанного лиганда 2 мкмоль/см набухшего геля. Поставляют в виде лиофилизированного порошка. Набухаемость 4,0 см /г. [c.226]

В следующем порядке монофосфаты цитозина, уридина, аденозина и гуанозина. В каждом случае 2 -изомер элюируется раньше, чем З -изомер. Общее время анализа меньше 70 мин, и каждый пик соответствует компоненту, содержание которого менее микрограмма. Итак, используя эту систему, можно достичь высокой скорости, высокого разрешения и высокой чувствительности. Разделение проводится на колонках, заполненных пленочными анионообменными смолами. Объемная скорость потока подвижной фазы составляет 12 см /ч при этих условиях на входе обеспечивалось давление в 35 атм. Разделение проводилось методом градиентного элюирования, в качестве стартового элюента использовался 0,01 М однозаме-щенный фосфат калия с pH 3,35. Для установления градиента 1,0 М раствор однозамещенного фосфата калия (pH 4,3) смешивали с стартовым раствором при объемной скорости потока 6 мл/ч. Начальный стартовый объем фосфатного бу( )ера низкой концентрации составлял 50 мл, и ввод градиента осуществлялся через 7,5 мин после начала анализа (с момента ввода пробы). По окончании [c.307]

Применение методов хроматографии на бумаге для быстрого анализа пуриновых и пиримидиновых оснований [76, 77] в гидролизатах небольших количеств рибонуклеиновых кислот вскоре показало, что молярная эквивалентность этих оснований скорее была исключением, чем общим правилом. Еще более важным было наблюдение, что разделение смеси нуклеотидов в щелочном гидролизате рибонуклеиновой кислоты при помощи ионообменной хроматографии дает изомерные пары нуклеотидов, являющихся, как позже было показано, нуклеозид-2 - и пуклеозид-З -фосфатами [78]. Хотя эти изомеры не подвергались взаимопревращению в щелочи, кислота легко катализировала миграцию фосфатного остатка между 2 - и З -гидроксильными группами. Таким же методом были обнаружены 5 -фосфаты аденозина, цитидина, гуанозина и уридина (среди прочих продуктов) после гидролиза кишечной фосфодиэстеразой рибонуклеиновых кислот, предварительно обработанных рибонуклеазой [79]. Со значительно более высокими выходами нуклео-зид-5 -фосфаты получены при действии диэстеразы змеиного яда на рибонуклеиновые кислоты из дрожжей и печени теленка гидролизаты содержали также свободные нуклеозиды и нуклеозид-2 (3 ),5 -ди-фосфаты [80]. [c.373]

Нуклеотиды сахаров выделяют из природных источников, как правило, методом ионообменной хроматографии и очищают хроматографией на бумаге. Для этих соединений характерно наличие гликозильного остатка, присоединенного сложноэфирной связью к терминальному фосфату нуклеозид-5 -дифосфата. К настоящему времени выделено свыше 70 соединений этого класса [1]. Нуклеозидная часть в них представлена одним из следующих пяти основных нуклеозидов уридином, гуанозином, аденозином, цитидином или дезокситимидином. Чтобы легче было выделять нуклеотиды и определять их выход, целесообразно проводить выделение в присутствии следовых количеств меченных по углероду нуклеотидов каждого типа. Порядок элюирования нуклеозиддифосфатсахаров с колонки зависит прежде всего от природы основания и практически не зависит от структуры сахарного остатка, если этот остаток не заряжен. Поэтому после разделения фракции лучше объединять, исходя из количества содержащейся метки а не по их оптической плотности, тем более что лишь в некоторых случаях количество отдельного нуклеотида бывает достаточным для обнаружения того соединения по поглощению в УФ-свете. [c.326]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология