Реактивация кинетика

Гибель и уничтожение микроорганизмов. Под гибелью микроорганизмов имеют в виду необратимую утрату способности к росту и размножению в лабораторных условиях это обычно означает потерю способности к образованию колоний. Многие повреждения, как правило приводящие к гибели клетки, в определенных условиях могут быть обратимы, Хорощо известно явление реактивации после облучения ультрафиолетом или воздействия высоких температур (разд. 15.2.2). Количественные данные относительно гибели микроорганизмов (естественной или вызванной каким-либо агентом) можно получить только для популяции, но не для отдельных клеток. В некоторых случаях скорость уменьшения числа живых клеток в популяции в любой момент времени пропорциональна числу имеющихся жизнеспособных клеток процесс отмирания клеток подчиняется тогда кинетике реакций первого порядка (где к-коэффициент, характеризующий скорость отмирания). Это относится, например, к стерилизации облучением. [c.207]

Месяц спустя была опубликована работа Кнунянца и сотр. [417], которые изучали зависимость между строением заместителей, связанных с фосфором в фосфорильном остатке, и кинетикой реактивации фосфорилированной ацетилхолинэстеразы. На основании полученных данных они пришли к выводу, что скорость реактивации определяется, по-видимому, теми же факторами, которые вообще определяют скорость нуклеофильного замещения у тетраэдрического атома фосфора, и в частности наличием — -сопряжения заместителей с З -орбитами фосфора в переходном состоянии. Было высказано также предположение, что в подобном сопряжении, по-видимому, может участвовать и неподеленная пара электронов кислорода оксигруппы серина, которая, как известно, фосфорилируется в эстеразном участке холинэстераз. [c.586]

Методика и результаты исследования кинетики термической реактивации активных углей зернения 1—1,5 мм даны в работе [32]. Процесс проводился в лабораторной трубчатой печи. Контроль активности углей осуществлялся после одно-, двух- и трехкратной реактивации при различных температурах и времени пребывания в печи. Рекомендуется проводить процесс при температуре 280—300 °С с временем пребывания активного угля в реакторе 40—60 мин. [c.23]

Таким образом, скорость процесса термической реактивации углеродных адсорбентов от сернистых соединений определяется кинетикой регенерации элементарной серы и может быть описана уравнением (4-8). [c.138]

Основы процесса. Процесс экстракционной реактивации является массообменным процессом извлечения твердой фазы из пористого материала с нерегулярной структурой, причем твердая фаза (элементарная сера и сернистые соединения) находятся на стенках пор и внутри пор. Извлекаемое вещество образует одиночно расположенные растворимые частицы внутри пористой инертной насадки. Каждая такая частица является самостоятельным источником вещества, на ее поверхности концентрация равна концентрации насыщения. Извлечение сопровождается уменьшением размеров всех растворимых частиц, заключенных в пористом теле. Анализ кинетики извлечения при таких обстоятельствах особенно труден. [c.143]

В колонну загружались отработанный активный уголь в количестве до 0,5 кг и раствор щелочи (КОН) концентрации 5 10 и 15 % (масс.) в количестве 1 л. Для исследования кинетики реактивации отработанного угля и нахождения оптимального режима процесса испытания проводились при различных температурах (30 50 70 90 и 102 °С) с отбором проб раствора через каждые 30 мин в течение 3 ч. После 3 ч обработки угля раствор щелочи сливали, уголь подвергали промывке водой до нейтральной реакции, сушке, охлаждению и анализировали на специальной вакуумной установке для определения адсорбционной способности с помощью весов Мак-Бена. [c.167]

Процесс реактивации микроорганизмов из высушенного состояния включает увлажнение клеток (регидратация), ликвидацию повреждений клеточных структур (репарация) и восстановление численности популяции путем размножения жизнеспособных клеток. Кинетика процессов реактивации клеток остается мало изученной. Известно, что высушивание приводит к удлинению лаг-фазы роста и для восстановления скорости размножения требуется определенное время. Процесс реактивации обычно лучше происходит в полноценной питательной среде. [c.161]

Кинетика реактивации оксимами изучена Дейвисом и Грином [32], которые показали, что реакция подчиняется уравнению второго порядка скорость реактивации в любой момент времени зависит от концентрации оксима и количества нереактивированного фермента [c.128]

В 1962 г. появилась работа [409], являющаяся продолжением исследований Коэна, Эрленджера и сотрудников [410] по реактивации фосфорилированных эстераз. В работе исследовалась кинетика реактиваций диэтилфосфорилированного трипсина различными гидроксамовыми кислотами и оксимами. Была установлена выраженная зависимость между скоростью дефосфорилирования активного центра трипсина и основностью нуклеофильных реагенто [c.585]

Хенкенс и Стюртевант [87] детально изучили кинетику взаимодействия цинка с апоферментом. Реактивация белка цинком сопровождается небольшими изменениями ультрафиолетовых спектров [87]. Измерения скорости комплексообразования проводились методом остановленной струи. Степень взаимодействия определя.лась по изменению оптической плотности и по увеличению ферментативной активности. Реакция имеет первый порядок как по апоферменту, так и по цинку. Значение константы скорости — около 10 л- моль -с . Эта величина примерно на два порядка меньше, чем при взаимодействии цинка с небольшими хелатирующими агентами, для которых получены значения 10 —10 л-моль -с [87 — 89]. В последнем случае считают, что скорость процесса лимитируется вытеснением воды из координационной сферы [87]. Скорость [c.579]

Лолученные данные показывают, что кинетика процесса реактивации проходит с большой скоростью при температуре раствора, близкой к температуре кипения раствора щелочи. [c.167]

Начальная быстрая реакция может быть исследована струйным методом. Применив этот метод, чтобы проследить как стадию реакции, предшествующую стационарному состоянию, так и стадию, соответствующую устойчивому состоянию, удалось показать, что кинетика реакции отвечает приведенной выше схеме 393]. Для первой стадии, заключающейся в быстрой адсорбции субстрата на ферменте, константа скорости (k ), по-видимому, больше, чем 10в секг моль . Для второй стадии — ацилирования фермента и одновременного освобождения л-нитрофенола (Pi)—константа равна 3 селг. Третья стадия состоит в отщеплении ацетата (Рг)и реактивации фермента, причем константа скорости равна 0,0254 се " [393]. При использовании в качестве субстратов /г-нитрофенилацетата и 2,4-динитрофенилацетата было найдено, что константа скорости реакции 2 и Аз зависит от pH, причем h зависит от группы с кажущейся константой ионизации 6,7, а Аз зависит от группы с кажущейся константой ионизации 7,3 389] или 7,4 (377]. При pH 6,6 фермент в целом переносит от буфера на ацилирование химотрипсина /г-нитрофенил-ацетатом 0,5 протона (389]. Если бы имидазольная группа заметно ацилировалась, то при этом значении pH можно было бы ожидать отщепления протонов под действием фермента. [c.144]