Определение иона аммония в крови

В.111.Г. Определение иона аммония в крови [c.101]

Животные (крысы и кролики) ежедневно получали водный раствор роданистого калия и аммония в пересчете на ион родана. В течение хронического опыта проводилось определение морфологического состава крови, холестерина, пероксидазной активности и сахара крови [c.175]

Установлено, что в различных тканях животных происходит синтез глютамина. Инкубируя измельченные ткани в аэробных условиях с прибавлением к ним аммонийной соли, можно наблюдать устранение ионов аммония нри одновременном синтезе глютамина. Точно так же при введении животным в кровь малых количеств аммонийной соли можно наблюдать быстрое устранение ионов аммония из крови, появление и устранение их в различных тканях при одновременном увеличении содержания в них глютамина. Введение аммонийной соли вызывает значительное увеличение содержания глютамина в крови (до 30—40 мг%) и тканях, наблюдаемое в течение определенного времени. Введенная в организм аммонийная соль через несколько часов выделяется с мочой в виде мочевины. Имеющиеся экспе- [c.412]

Наконец, следует упомянуть о газочувствительных электродах с газопроницаемой мембраной, отделяющей от внешней среды внутренний раствор и рН-электрод. Существуют электроды этого типа, чувствительные к аммиаку, диоксиду углерода и сероводороду. Наиболее широкое применение нашли СОг-электроды, используемые для определения в крови [28, 52]. Аммиачные электроды используют для прямого определения аммиака в природных водах и твердых телах при помощи этих электродов можно определять концентрации аммиака или ионов аммония в самых разнообразных пробах, поскольку работе прибора мешают только газы, диффундирующие через мембрану. [c.120]

Общую концентрацию аммиака (суммарную концентрацию аммиака и ионов аммония) в водных растворах можно определить с помощью проточной системы, схематично изображенной на рис. 27.6, если исключить из этой системы реакционную колонку. На рис. 27.7 представлены линейные градуировочные графики, полученные с помощью проб объемом 0,2 мл при pH 7,7 и 12,7 соответственно. Линейный характер градуировочных графиков сохраняется до концентрации 50 мкМ, а предел обнаружения аммиака (при отношении сигнал/шум, равном 3) составляет 0,4 мкМ при pH 7,7 и 0,2 мкМ при pH 12,7. Высокая чувствительность позволяет определять общий аммиак в пробах крови и сыворотки объемом всего лишь 20 мкл даже после их десятикратного разбавления. Ожидаемый диапазон определяемых концентраций равен 10-70 мкМ. Небольшой объем пробы делает эту методику особенно удобной для использования в педиатрии. Следует подчеркнуть также, что методика в равной степени применима и для анализа проб цельной крови, поскольку ни окраска, ни мутность пробы не мешают определению. [c.434]

Хатчинсон и Лэбби [42] описывали подобный метод определения иона аммония в неразделенной крови. [c.102]

По сравнению со спектрофотометрическими методами [631—633] определения аргиназы метод Букера и Хасмана [630] требует значительно меньше времени длительность анализа составляет не более 10 мин. Кроме того, для проведения анализа не требуются холостые опыты, что экономит фермент и реактивы. Для определения ферментов пригодны и предложенные недавно электроды с воздушным зазором. Эти электроды были с успехом использованы для определения ионов аммония в сточных водах [634] и в сыворотке [466] мочевины 467 — 469] (в результате ферментативного разложения) и бикарбоната 466] в крови, ее плазме и сыворотке диоксида серы в вине [635] суммарного количества углерода (входяшего в состав органических и неорганических соединений в воде [636]) и суммарного количества азота в водных системах [637]. Так, Ларсен и др. [638] применили электроды с воздушным зазором для определения активности уреазы и аргиназы. Анализ основан на контроле начальной скорости реакции селективного выделения аммиака, который образуется в системе аргинин — аргиназа при добавлении избытка уреазы. Скорость реакции измеряют в диапазоне 2-10 —1,5-10 моль/л/мин, относительное стандартное отклонение составляет около 2,8%. [c.208]

Количество хлоридов в моче обычно определяют путем осаждения ионов хлора избытком азотнокислого серебра и обратного титрования роданистым аммонием в присутствии железоаммонийных квасцов в качестве индикатора — метод Фольгардта (см. также определение хлора в крови, стр. 246). [c.274]

З. Определение аминокислот. Ферментные электроды широко применяют в клинических анализах, поскольку некоторые аминокислоты (тирозин, фенилаланин, триптофан, метионин) являются важными диагностическими индикаторами. Первые такие электроды [17] представляли собой катионоселективный электрод, чувствительный к образующимся при ферментативном окислении аминокислот ионам аммония, на котором был иммобилизован слой L-аминокислотной оксидазы из змеиного яда. Гилболт и Надь [23] разработали два различных типа сенсоров для определения L-фенилаланина в крови. В сенсоре одного типа полиакриламидный слой, содержащий смесь L-аминокислотной оксидазы с пероксидазой, наносили на иодидселективный электрод. Этот датчик регис трирует уменьшение активности иодид-ионов на поверхности электрода в результате следующих реакций [c.127]

Ион аммония является слабой кислотой с рК = 9,25 это означает, что ионы находятся в равновесии с N1-13 в диапазоне pH от 6 до 12. При определении аммиака в водных растворах с помощью проточной аналитической системы на базе конденсатора 1гМОП измеряют только концентрацию МНз. Следовательно, в ходе анализа необходимо тщательно контролировать pH раствора. При повышении pH повысится концентрация газообразного КНз и возрастет кажущаяся чувствительность системы. Чувствительность максимальна при pH >11. При определении аммиака в неорганических пробах (например, в дождевой или речной воде) мы поддерживали pH 12,5. В случае биологических проб такая величина pH неприемлема, так как в сильно щелочных средах лабильные азотсодержащие соединения могут разрушаться с образованием аммиака например, не допускается, чтобы pH проб крови превышал 8,5. [c.434]