Биологическая проба

Организация лаборатории. В зависимости от назначения микробиологические лаборатории могут быть бактериологическими, паразитологическими, микологическими, вирусологическими, иммунологическими и специальными (для диагностики особо опасных инфекций). Как правило, микробиологическая лаборатория включает следующие помещения 1) препараторскую для подготовки лабораторной посуды, приготовления питательных сред и проведения других вспомогательных работ 2) моечную 3) автоклавную, в которой стерилизуют питательные среды и лабораторную посуду 4) комнату для взятия материала от больных и носителей 5) комнаты для микроскопических и микробиологических исследований, включающие один или два бокса 6) помещения для обеззараживания отработанных материалов. Лабораторные животные, используемые для биологических проб, содержатся в отдельном изолированном помещении (виварии). [c.441]

В отношении контрольного опыта активационный анализ представляет уникальный метод, даже при использовании радиохимического разделения. Поскольку внесение загрязнений после этапа облучения более невозможно, ана-лш образцов твердой пробы не требует проведения контрольного опыта. Однако при анализе проб (таких, как многие природные и биологические пробы), которые нельзя протравить, чтобы снять поверхностные загрязнения, следует уделить особое внимание обработке и хранению пробы. В любом случае из реагентов, используемых для растворения и разделения, не может быть внесено никакого радиоактивного загрязнения. В настоящее время это можно рассматривать как величайшее из преимуществ активационного анализа в сравнении с другими методами. В НАА можно провести очень точную градуировку путем одновременного облучения пробы и синтетических многоэлементных стандартных образцов. Это является уникальным для активационного анализа ни один другой метод не дает возможности одновременного возбуждения пробы и стандартного образца. По этим двум причинам из всех методов определения следов элементов активационный анализ наилучшим образом удовлетворяет строгим требованиям получения точных результатов даже при крайне низких уровнях содержания —нг/г и ниже. [c.101]

Во многих случаях нейтронно-активационный анализ является предпочтительным методом для анализа природных и биологических проб. [c.127]

Спектральное определение бериллия в биологических пробах [c.112]

Спектральному определению бериллия в биологических пробах (крови, костях, мягких тканях) предшествует, как правило, химическая обработка пробы, заключающаяся в удалении органических веществ и выделении бериллия (см. стр. 185). Стадия отделения бериллия от мешающих элементов и концентрирования его наиболее трудоемка и ответственна, поскольку здесь может происходить потеря бериллия. [c.112]

Наиболее часто требуется определять бериллий в присутствии Ре, А1, М , 2п, Мп, Т1, 2г, реже Мо, У (в рудах и продуктах обогащения), Си, N1, Со, Ре, А1, М (в сплавах). Все возрастающее значение бериллия в ядерной технике вызвало необходимость разработки методов отделения его от и, ТЬ и элементов с большим сечением захвата нейтронов (редкоземельные элементы, бор). Особую трудность представляет отделение следов бериллия от больших количеств других элементов. Эта проблема возникает при определении содержания бериллия в биологических пробах, в воздухе, в горных породах, а также при выделении радиоактивных изотопов. В этих случаях обычно используют соосаждение микроколичеств бериллия с коллекторами, избирательную экстракцию или ионный обмен с применением маскирующих средств. Для более эффективного разделения часто комбинируют несколько методов. [c.125]

Выделение бериллия из биологических проб при помощи ацетилацетона с применением комплексона III использовано в работах [213, 577]. Имеются данные о непрерывной экстракции бериллия в виде ацетилацетоната [596]. [c.130]

Концентрирование микрограммовых количеств бериллия осаждением с н о с и т е л я м и. Отделение микроколичеств бериллия от больших количеств других элементов не достигается при осаждении его труднорастворимых соединений. Поэтому наряду с экстракционными и ионообменными методами отделения микрограммовых количеств бериллия и для концентрирования его используют методы соосаждения. Осаждение микрограммовых количеств бериллия с носителями происходит количественно. Однако соосаждение милли-микрограммовых количеств происходит неполностью. Например, при анализе биологических проб выделение 1 м.кг бериллия (в 10 2 костей) с фосфатом кальция количественное. При содержании бериллия от 0,1 мкг фосфат кальция соосаждает всего 70% бериллия [578]. [c.160]

Наиболее чувствительным методом определения бериллия является флуоресцентный мориновый метод [213, 322, 560]. Силл и Уиллис [213] детально исследовали применение этого метода к анализу биологических проб при извлечении бериллия ацетилацетонатной экстракцией без применения других способов удаления мешающих элементов. Экстракционное извлечение бериллия значительно проще и короче, чем соосаждение бериллия с коллекторами и электролитическое отделение железа и других мешающих элементов. [c.186]

Двукратная экстракция в присутствии комплексона III обеспечивает практически полное извлечение 10" мкг Ве из биологических проб. Элементы, образующие флуоресцирующие комплексы с морином, экстрагируются ацетилацетоном лишь в следовых количествах. [c.186]

Методы радиоактивационного определения галлия в минеральном сы рье, промышленных материалах и биологических пробах изложены в соответствующем разделе гл. IV. [c.177]

Применяя метод хроматографии на бумаге, можно обнаружить 15—50 хг инсектицидов [9, 11, 27, 39, 55 и др.]. В комбинации с биологической пробой чувствительность обнаружения можно повысить [26, 52]. Поскольку инсектициды в большинстве случаев представляют собой сильно липофильные вещества, требуется импрегнирование бумаги. [c.361]

В отдельных случаях для выделения чистой культуры возбудителя (чума, туляремия и др.) применяется биологическая проба (см. подразд. 1.3). [c.35]

Биологическое исследование. Биологическую пробу ставят одновременно с проведением бактериоскопического и бактериологического исследования. Морских свинок или мышей заражают различными способами — подкожно, внутрибрюшинно или накожно (материал, обильно загрязненный посторонней микрофлорой). Заражение материалом от трупов осуществляется следующим образом у животного выбривают участок кожи и скарифицируют его, наносят на кожу 2 — 3 капли исследуемой жидкости и втирают ее досуха плоской частью скальпеля. Кровь больного и взвесь выделенной чистой культуры вводят внутрибрюшинно мокроту, пунктат бубона — подкожно во внутреннюю поверхность бедра. [c.174]

Обнаружение возбудителей туберкулеза с помощью бактериоскопического или бактериологического методов, а также биологической пробы свидетельствуют о высокой активности патологического процесса. [c.214]

Лабораторная диагностика этих риккетсиозов основана на выделении возбудителя из крови больных с помощью биологической пробы на лабораторных животных или культивировании его в желточном мешке куриного эмбриона, а также на определении специфических антител в крови больного (серологический метод). [c.240]

Пламенную фотометрию особенно успешно применяют для определения щелочных и щелочноземельных металлов, хотя разработаны методики для определения более 50 элементов. Ее широко используют прн анализе агрохимических и биологических проб, стекла, цемента, природной и промышленной вод, нефтяных продуктов и дрГ Ниже приведены значения ми- [c.354]

На хроматограмме 6 представлено разделение смеси свободных жирных кислот, выделенных экстракцией из биологической пробы. После полного удаления растворителя оставалось приблизительно 100 мг кислот, которых для анализа нужно около 5 мг. Условия для этого разделения были очень близки к тем, которые применили Джеймс и Мартин в своей первой работе по ГЖХ. Трубка из нержавеющей стали длиной 120 сж и с внутренним диаметром [c.68]

Можно классифицировать методы в зависимости от массы вещества, которая используется в анализе. В макрометодах для анализа требуется 0,1 г вещества и больше, полу-микрометодах 0,1...0,01 г, микрометодах 0,01.... ..10 г, ультрамикрометодах 10 г и субмикрометодах 10 г. Методы, в которых используют 10 г и менее, применяют в анализе различных биологических проб, препаратов с высокой радиоактивностью, сильной токсичностью и т. д. Техника выполнения анализа в этих методах существенно усложняется аналитические операции производят с помощью специальных манипуляторов и нередко под микроскопом. [c.13]

На воспризводимость получаемых результатов влияет множество факторов разница в электропроводности между разделительным электролитом и раствором пробы, большое различие в концентрации компонентов пробы и их электрофоретическая подвижность, различие в составе пробы. С другой стороны, преимущества КЭ проявляются тогда, когда не- обходимо проанализировать очень малые объемы проб например, при 5 анализе ионов в дождевых каплях или в биологических пробах. [c.42]

Система растворителей 7 (табл. 2) бумага ватмаи I для проявления хроматограмму опрыскивали. раствором бром-крезолового зеленого. Проводилась также биологическая проба (действие иа сердце лягушки) полученные результаты приведены в таёл. 1. [c.434]

Образцы различных органов и тканей исследовали через 15, 30, 60, 180 мин, 12 и 24 ч. Содержание радиоактивного материала в биологических пробах определяли на жидкостном сцинтилляцион-ном фотометре SL-30 (Франция). [c.209]

Поскольку при гидролизе большинство бенздиазепинов образуют аминобензофеноны, они также могут быть определены аналогичным методом. Для этого биологические пробы (5 мл), содержащие 5— 50 мкг бенздиазепинов, кипятят с 10%-ной соляной кислотой в течение 15 мин, охлаждают и доводят объем до 10 мл. Затем прибавляют 0,2 мл 0,4%-ного раствора нитрита натрия, охлаждают на льду и вносят 0,2 мл 2%-ного раствора сульфаниламиновой кислоты. После встряхивания в течение 10 мин доливают 0,2 мл раствора М- [c.226]

Практическое значение для анализа имеет радиоизотоп Ве , который можно получить без носителя бомбардировкой литиевой мишени дейтронами по реакции ЬГ [d, 2п) Ве и последующей очисткой экстракцией с ацетилацетоном или теноилтри-фторацетоном. Ве использован для аналитического контроля при извлечении малых количеств бериллия (соосаждения, экстракции, ионного обмена), особенно из биологических проб 213, 433], а также при анализе метеоритов [434]. [c.88]

Осаждение с носителями применяется в большинстве случаев в сочетании с другими методами изолирования бериллия. Метод соосаждения используют как метод концентрирования и отделения при анализе биологических проб [305, 514, 530, 560, 568а, 577], проб воздуха [512—514], при определении содержания радиоактивных изотопов бериллия в морских осадках и водах, а также метеоритах [204, 616]. [c.160]

Анализ биологических объектов на содержание следовых количеств элементов — одна из труднейших задач аналитической химии. Недостаточная чувствительность аналитических методов для определения таких низких количеств бериллия требует тща-тельногр отделения сопутствующих элементов и концентрирования определяемого элемента. При анализе биологических проб (кровь, кисти, легкие, печень и т. д.) пробу разлагают и удаляют органические материалы, а затем отделяют бериллий и определяют его. Озоление органических проб можно произвести непосредственным сжиганием (сухое озоление) или при помощи кислот— азотной и серной или хлорной (влажное озоление). [c.185]

Примером получения производных с целью повышения летучести анализируемых соединений может служить метод газохроматографического анализа биологических проб на содержание летучих производных высших жирных кислот и оксикислот, содержащих от 10 до 26 углеродных атомов в молекуле при пределе детектирования по метилпальмитату 10 г/мл пробы и воспроизводимости а+1ализа 2—3% при доверительной вероятности 0,95. Метод основан на переводе жирных кислот в метиловые эфиры и переводе метиловых эфиров оксикислот в их ацетильные производные. Анализ состоит из этапов щелочного гидролиза природных эфиров, экстракции и метилирования жирных кислот в растворе с метанолом при 85 С в течение 5—10 мин, ацетилкро-вания метиловых эфиров оксикислот, газохроматографического анализа летучих производных жирных кислот и оксикислот с использованием ДИП, программирования температуры и кварцевой капиллярной колонки с метилсилоксановой НФ. На рис. 11.37 приведена хроматограмма метиловых эфиров жирных кислот С12 —С18, полученная на хроматографе Кристалл-2000 . Запись и обработка результатов проводилась с использованием мини-ЭВМ типа ДВК-ЗМ. [c.193]

Биологические пробы Новокаин и его аналоги Ф Получение производных с динит-робензофуроксаном (510 нм) 0,08-5,0 0,04 0,05 — 63 [c.258]

Устройство нарофазного концентрирования (headspa e) позволяет повысить чувствительность определения легкокипящих соединений, растворенных в воде, имеющих коэффициенты распределения менее 10. Эти устройства позволяют также извлекать и дозировать легкие анализируемые соединения из биологических проб, из твердых материалов (пород, почв, полимерных материалов и др.). [c.269]

Вирус бешенства относится к РНК-содержащим вирусам рода Lyssavirus, семейства Rhabdovindae. При бешенстве поражается центральная нервная система, поэтому диагностика заболевания ос-нована на обнаружении в ткани мозга телец Бабеша—Негри (в области гиппокампа), вирусного антигена или самого вируса. При исследовании животного, нанесшего укус, определяют наличие вируса или вирусного антигена в ткани слюнной железы с помощью РИФ и биологической пробы. [c.306]

Серологическое исследование. Микроскопия и биологические пробы в диагностике токстоплазмоза редко дают положительные результаты. Более ценным является серологическое исследование, включающее реакцию с красителем Сэбина—Фельдмана (РСФ), непрямую РИФ, РСК, РНГА. Применяется также аллергическая проба с токсоплазмином. [c.358]

При определении точных значений температур дегидратации часто прибегают к одновременной регистрации первой производной термогравиметрической кривой (метод дериватографии, ДТГ). Так, Тернер и сотр. [351 1 показали, что этот метод удобен при изучении дегидратации гидроксида магния. Обычно устройства для записи таких кривых монтируют вместе с приборами для дифференциального термического анализа. Примеры применения такой аппаратуры приведены в гл. 4. Использование одного из таких приборов — дериватографа — для определения содержания воды в неорганических осадочных породах, фармацевтических препаратах, биологических пробах и пищевых продуктах описано Симоном [322]. Из неорганических объектов этим методом исследовались также промышленные адсорбенты (измерение адсорбционной способности), цемент (изучение условий гидратации) и регидратация высушенной глины. [c.163]

Анализу органических и биологических проб на наличие примесей металлов обычно предшествует их окисление — сухое или мокрое. Таким %тем устраняют органическое вещество, а затем в полученном зольном остатке или растворе находят металлы. В сухих методах пробы постепенно нагревают до 450—500 °С при доступе воздуха. Несмотря на большую простоту метода, здесь существует опасность потери некоторых ко.мпонентов (таких, как Аз, С(1, Hg, Р, РЬ, 2п, Ре), находящихся в элементарном состоянии или в форме легколетучих соединений. Мокрое окисление с использованием смеси НЫОз, НС1О4 и Нг504 приводят при более низких температурах, поэтому опасность потери некоторых примесей значительно уменьшается. Все же и в этих условиях может происходить полное или частичное улетучивание таких примесей, как В, 5Ь, Аз, Ое, 5е, и др. [c.402]

Следует иметь хотя бы одну лебедку с глубиномером, ирикренляемую к лодке, батометр, специальный термометр пли другой прибор для измерения температуры на различных глубинах, а также все приборы и принадлежности, необходимые для выполняемых на месте анализов и для взятия биологических проб воды и дна (дночерпатель, скребок, сети, фильтры, бутыли и т. д.), а также для отбора бактернологических проб. [c.59]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология