Измерение состояния воды в растении

ИЗМЕРЕНИЕ СОСТОЯНИЯ ВОДЫ В РАСТЕНИИ [c.164]

Измерения методом постоянного и импульсного градиента магнитного поля позволяют определить коэффициенты самодиффузии внутриклеточной воды в различных объектах, оценить в них подвижность воды, наблюдать за изменением проницаемости клеточных мембран под влиянием различных факторов [81, 82], оценить распределение размеров клеток и внутриклеточных структур [82, 83]. Возможности ЯМР в определении количества резонирующих ядер нашли свое применение в определении количества незамерзающей воды биосистем, в изучении связи состояния воды и устойчивости растений к неблагоприятным условиям внешней среды [84, 85. [c.38]

Явление осмоса играет важную роль в жизни растений и животных. Стенки растительных клеток живых организмов представляют собой полупроницаемые мембраны, через которые свободно проходят молекулы воды, но почти полностью задерживаются вещества, растворенные в клеточном соке. Поэтому осмос служит причиной тургора (состояние напряжения) и плазмолиза (сморщивание) клеток. С ним связаны процессы усвоения пищи и обмена веществ. Прибор, схема которого приведена на рис. 54, дает возможность измерять осмотическое давление. Он называется осмометром. На основании опытных данных измерения осмотического давления при различных концентрациях и температурах было установлено, что осмотическое давление раствора пропорционально концентрации растворенного вещества и абсолютной температуре раствора [см. уравнение (У.8)], [c.147]

Количество соединяющихся — под влиянием света — хлора и водорода пропорционально напряженности света, но не всех лучей его, а только известных, так называемых химических лучей света, производящих химические реакции (актинических). Таким образом, смесь хлора с водородом, выставленная на действие света в сосуде определенной емкости и поверхности, может служить средством для измерения напряженности химических лучей (актинометром). Исследования подобного рода (фотохимические) показали, что химическое действие совершается преимущественно в фиолетовой стороне спектра, что даже невидимые глазом ультрафиолетовые лучи его производят. Бледное газовое пламя не содержит химически действующих лучей пламя, окрашенное от солей меди в зеленый цвет, оказывает большее химическое действие, чем бледное пламя, но пламя, ярко окрашенное от солей натрия в желтый цвет, не имеет химически действующих лучей, как и бледное газовое пламя. Так как в растениях, в фотографии, при белении тканей и при изменении красок на солнце химическое действие света становится очевидным, а в реакции хлора с водородом имеется средство изучения, то в фотохимии предмет этот наиболее изучался. Работы Бунзена и Роско в 50-х и 60-х годах дали исходные начала. Актинометр их содержал Н -р С1 и замыкался раствором хлора в воде. Образующаяся НС1 поглощалась, а потому по из.ченению объема газа можно было судить - о происшедшем соединении. Так как действие света оказалось, как и можно было ждать, пропорциональным времени и напряженности света, то получилась возможность подробных фотохимических исследований, относящихся к временам дня и года, к разным источникам света, к поглощению его и т. п. Предметы эти разбираются подробнее в физической химии. Так как при реакции хлора с водородом отделяется много тепла и реакция эта может поэтому совершаться сама собою как экзотермическая, то влияние света в сущности подобно зажиганию, т.-е. оно приводит хлор и водород в состояние, необходимое для реагирования, так сказать, расшатывает первоначальное равновесие, что и составляет работу, производимую световою энергиею. Так, мне кажется, должно понимать вместе с Прингсгеймом (1887) действие света на хлорный гремучий газ. [c.599]

Метод камеры давления позволяет быстро определить водный статус растения. Одиако результаты сопоставления измерений водного потенциала растений с помощью камеры давленияг и других методов оказались весьма противоречивыми. Наряду с сообщениями о почти полном соответствии данных определения водного потенциала листьев сон, картофеля, подсолнечника, перца и овса методом камеры давления и психрометрическим [123] отмечаются существенные различия между показаниями этих двух методов [115, 124]. Каждый из них, очевидно, имеет свои недостатки и ограничения в применении, и их надо знать, чтобы избежать искажения экспериментальных данных. Подробный анализ типичных ошибок метода камеры давления дан в [123], Первая группа ошибок может быть связана с состоянием исследуемого материала. Так, вследствие быстрой потери воды после срезания листа водный потенциал у хорошо транспирирую-щих листьев на 0,2—0,7 МПа ниже, чем у листьев, которые покрывали пластиковой пленкой перед определением [124]. Степень падения водного потенциала зависит от его исходного уровня, вида растений, интенсивности транспирации, времени от момента срезания побега до помещения в камеру. Поэтому в экологических исследованиях, когда приходится брать пробы на значительном расстоянии друг от друга, прежде всего необходимо экспериментально установить, в течение какого промежутка времени от момента срезания побега до помещения в камеру величина водного потенциала минимально изменяется. Для яблони, малины, черной смородины время ограничено 30 с i[125].. Хранение ветки сосны на воздухе в течение 30 мин приводит к изменению водиого потенциала на 0,5 МПа, в то время как ветка, сохраняемая в полиэтиленовом пакете, даже в течение 1,5 ч дала ошибку всего 0,03 МПа. У березы при хранении в пакете в течение 30 мии ошибка составила 0,11 МПа [126]. [c.54]

Во всех опытах с пшеницей, в которых листовые влагалища находились в воде, наблюдалось небольшое повышение Г по сравнению с утренним значением (фиг. 87). Это могло быть последействием, т. е. результатом влияния маннита-, но, может быть, данное явление обусловливалось и суточным ходом (хотя в других опытах с пшеницей суточный ход обнаружен не был). Такого последействия не наблюдалось у листьев пальмы, однако у кукурузы оно проявлялось очень четко. В нескольких контрольных опытах листья кукурузы, находившиеся до этого в 0,25 М растворе маннита, помещали на 48 ч в воду, после чего снова проводили измерения. Несмотря на то, что последействие при этом несколько уменьшалось, величина Г никогда вновь не падала до нуля. Такое устойчивое последействие водного дефицита было продемонстрировано также при сравнении листьев растений, предварительно испытавших легкое завядание на открытом воздухе, и листьев растений, которые росли в теплице при постоянном обильном водоснабжении. Как обычно, при температуре листа 30° С величина Г для листьев из теплицы равнялась нулю, тогда как для листьев, испытавших завядание, она была равна 0,00039% (табл. 7). Эти данные позволяют объяснить относительно высокое значение Г (0,0009%), которое было обнаружено для кукурузы Моссом (табл. 7). По данным Гловера [119], полученным в Восточной Африке, кратковременная засуха тормозила открывание устьиц у кукурузы и снижала скорость видимой ассимиляции, однако после прекращения засухи эти явления исчезали. В то же время более сильная засуха вызывала стойкое повреждение устьиц и снижение скорости фотосинтеза, которые не исчезали и после того, как листья принимали свой обычный вид. У листьев Sorghum такого последействия не наблюдалось. Подобные различия между видами в отношении их способности восстанавливать нормальное состояние после сильного водного дефицита, очевидно, вполне обычны, хотя заранее предсказать их невозможно. Так, например, у завядших растений пшеницы при поливе устьица полностью открывались в тот же день, тогда [c.191]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология