Выделение чистой культуры

Выделение чистой культуры клубеньковых бактерий. От тщательно промытого в водопроводной воде корня бобового растения отрезают наиболее крупные клубеньки, промывают их в трех-четырех порциях стерильной воды и опускают в чашку Петри с 0,1%-ным раствором сулемы. Покачивая чашку, выдерживают 5 мин, затем переносят клубеньки стерильным пинцетом в чашку Петри со стерильной водой, выдерживая [c.181]

Бактериологическое исследование. Выделение чистой культуры и ее идентификация необходимы для подтверждения диагноза листериоза. Листерии растут на простых питательных средах, но более интенсивный рост отмечается на кровяном агаре или средах, обогащенных глюкозой, глицерином, дрожжевым экстрактом, сывороткой, печеночной тканью. Материал засевают на плотные среды. Для подавления роста сопутствующих микроорганизмов используют специально разработанные селективные среды с антибиотиками и/или красителями, хлоридом лития, фенилэтано-лом (агары Оксфордский, PAL САМ яла др.). Те же добавки используют в составе бульонных сред для обогащения исследуемого материала (накопление листерий ведут при 30 °С в течение 24 — 48 ч). Иногда используется также метод холодового обогащения (материал выдерживают при 4 °С в течение 10 — 50 сут). Посевы на плотных средах инкубируют при 37 С до 7 сут. [c.179]

Существуют следующие принципы и методы выделения чистых культур бактерий. [c.25]

При выделении чистых культур аэробных микроорганизмов высев из накопительной культуры проводят на поверхность Плотной среды. Нанесенную каплю накопительной культуры (или из соответствующего разведения ее) осторожно распределяют стерильным стеклянным шпателем по поверхности плотной среды, после чего этим же шпателем протирают поверхность среды последующих 3—4 чашек. [c.78]

Существует ряд своеобразных в физиологическом отношении. микробов, которые требуют индивидуальных методов для выделения чистых культур. К ним относятся нитрифицирующие бактерии, железобактерии, возбудители метанового брожения и др. Для получения культур этих микробов пользуются методикой элективных или избирательных сред. [c.288]

Известно, что возбудители инфекционных болезней в организме человека, животных и во внешней среде находятся преимущественно в смеси с другими микроорганизмами (в том числе условно-патогенными и сапрофитами). Выделение чистой культуры позволяет выявить ее морфологические, культуральные, биохимические и другие признаки, по совокупности которых определяют видовую принадлежность возбудителя, т. е. осуществляют его идентификацию. [c.25]

Рис. 1.8. Выделение чистой культуры анаэробов методом Вейнберга

ВЫДЕЛЕНИЕ ЧИСТЫХ КУЛЬТУР КЛУБЕНЬКОВЫХ БАКТЕРИЙ, КОЛИЧЕСТВЕННЫЙ УЧЕТ В ПОЧВЕ. [c.181]

Принципы и методы выделения чистых культур бактерий [c.25]

ВЫДЕЛЕНИЕ ЧИСТЫХ КУЛЬТУР [c.286]

ВЫДЕЛЕНИЕ ЧИСТЫХ КУЛЬТУР БАКТЕРИЙ [c.78]

Второе направление — полиморфизм — допускало более широкие границы для видовой изменчивости и не считало виды бактерий столь резко разграниченными. Сторонники этой теории полагали, что в зависимости от условий выращивания бактерии могут резко изменять свои морфологические и физиологические особенности. Спорный вопрос был разрешен выделением чистой культуры немецким ученым Кохом. Работы Коха доказали, что у бактерий существуют строго разграниченные виды. Но также установлено, что бактерии легко изменяют свои свойства в зависимости от состава среды и под влиянием различных физических, химических и биологических факторов. Условия жизни накладывают определенный отпечаток на особенности и свойства микроорганизмов и вызывают адаптацию их, что может привести к образованию новой разновидности, или штамма. [c.246]

Выделение чистой культуры анаэробных микроорганизмов по методу Коха требует создания условий, ограничивающих доступ кислорода к культуре. [c.78]

УЧЕТ ЧИСЛЕННОСТИ БАКТЕРИЙ И ВЫДЕЛЕНИЕ ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЫ [c.66]

Для выделения чистой культуры азотобактера после проверки культуры под микроскопом делают посев на агаризованную среду Эшби следующего состава (в г на [c.129]

Бактериологическое исследование основано на культивировании бактерий на питательных средах, выделении чистой культуры возбудителя и ее идентификации. Чистой культурой называют популяцию микроорганизмов одного вида, как правило выращенную из изолированной колонии на плотной питательной среде. Разрешающая способность метода составляет в среднем 1000 клеток в 1 мл. [c.25]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистой культуры бруцелл от больных исследуют кровь, пунктат костного мозга, [c.128]

Выбор метода культивирования, состава питательной среды зависит главным образом от типа питания и дыхания (биологического окисления) микроорганизмов. На рис. 6 (цв. вклейка) показан наиболее распространенный способ посева исследуемого материала с целью выделения чистой культуры механическое [c.25]

Выделение чистой культуры [c.31]

В отдельных случаях для выделения чистой культуры возбудителя (чума, туляремия и др.) применяется биологическая проба (см. подразд. 1.3). [c.35]

Животных заражают для выделения чистой культуры возбудителя в тех случаях, когда нельзя получить ее другими способами (например, при загрязнении исследуемых объектов посторонней микрофлорой, подавляющей рост возбудителя, при незначительном содержании микроорганизмов или переходе их в фильтрующиеся формы). Так, при исследовании разложившихся трупов грызунов на присутствие возбудителей чумы заражают (суспензией органов, кровью) морских свинок, которые погибают через 3 — [c.47]

Вскрытие погибших, а иногда и заболевших животных проводится для извлечения пораженных органов, обнаружения возбудителя, вызвавшего гибель животного, выделения чистой культуры возбудителя и определения места его локализации. Заболевших животных забивают с помощью эфирного наркоза или воздушной эмболии. [c.53]

Выделение чистой культуры аэробных и анаэробных микроорганизмов и их идентификацию проводят по общепринятым правилам (см. подразд. 1.2.3 и 1.2.4). [c.55]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистой культуры 5 — 10 мл крови сеют в сывороточный бульон (1 часть сыворотки + 3 части МПБ, pH 7,2 —7,4), в сахарный бульон или в специальную среду с дефибринированной кровью лошади и дрожжевым экстрактом. После 18 —24-часовой инкубации материал пересевают на 10%-й кровяной агар в чашку. Спинномозговую жидкость центрифугируют и осадок сеют на кровяной агар. [c.114]

Выделенную чистую культуру идентифицируют по морфологическим, антигенным и биологическим свойствам, определяют ее чувствительность к антибиотикам. [c.126]

Подозрительные колонии (независимо от результата РА или иммунофлюоресцентного исследования) пересевают на сектор щелочного ПА и на полиуглеводную среду (Рассела, Клиглера или др.) для выделения чистой культуры и ее идентификации. [c.168]

Выделение чистой культуры из одной клетки. Для получения чистой культуры из одной клетки можно использовать капельный метод Линднера, микроманипулятор или микроселектор Перфильева. [c.78]

Биологическое исследование. Биологическую пробу ставят одновременно с проведением бактериоскопического и бактериологического исследования. Морских свинок или мышей заражают различными способами — подкожно, внутрибрюшинно или накожно (материал, обильно загрязненный посторонней микрофлорой). Заражение материалом от трупов осуществляется следующим образом у животного выбривают участок кожи и скарифицируют его, наносят на кожу 2 — 3 капли исследуемой жидкости и втирают ее досуха плоской частью скальпеля. Кровь больного и взвесь выделенной чистой культуры вводят внутрибрюшинно мокроту, пунктат бубона — подкожно во внутреннюю поверхность бедра. [c.174]

Бактериологическое исследование. Материал засевают на специальные плотные среды непосредственно или из транспортной, накопительной среды. Для выделения чистых культур используют анаэробный кровяной агар, обогащенные среды с настоем мозга и факторами роста и/или селективные среды (анаэробный кровяной агар с желчью и канамицином). Посевы инкубируют при 37 °С [c.183]

Идентификацию и дифференциацию выделенных чистых культур проводят по комплексу фенотипических характеристик (см. табл. 2.17). [c.186]

Механизму образования метана посвящено много работ, но выделить чистые культуры бактерий, вызывающие данные процессы, удалось впервые Баркеру в 1936 г. Он разработал технику выделения чистых культур метановых бактерий, основанную на биологических и биохимических особенностях этих видов. Им выделеггы организмы, вызывающие в процессе своего развития реакции [c.314]

Среда Олькеницкого и другие дифференциальные среды с глюкозой в столбике при росте синегнойной палочки не изменяется. Выделенную чистую культуру подвергают окончательной идентификации (см. табл. 2.8), проводят фаготипирование и обязательно определяют чувствительность к антибиотикам. Последнее необходимо, в частности, для правильного индивидуального подбора этиотропного лекарственного средства. [c.139]

Для выделения чистой культуры L. o hra ea Лиске рекомендует марганца уксуснокислого 1,0 г, агара 10 г на 1000 мл воды. [c.138]

На третьем этапе из выросшей на скошенном агаре культуры делают мазки, окрашивают их по Граму. О чистоте ьсультуры судят по однородности роста, формы, размера и окраски микроорганизмов. Для идентификации выделенной чистой культуры, кроме изучения морфологических, тинкториальных и культуральных особенностей микроорганизмов, необходимо определить их ферментативные и антигенные свойства, фаго- и бактериоцино-чувствительность, токсигенность и другие признаки, характеризующие их видовую специфичность. [c.32]

Работая с экспериментальными животными, необходимо помнить о существовании у них спонтанных бактериальных и вирусных заболеваний, а также латентных инфекций, активизирующихся в результате дополнительного искусственного заражения, что затрудняет выделение чистой культуры возбудителя и установление его этиологической роли. Этого недостатка лишены гнотобиоты (животные без аутомикрофлоры) и свободные от патогенной микрофлоры (СПФ) животные. В настоящее время используются гнотобиоты и СПФ животные и птицы (цыплята, крысы, мыши, морские свинки, поросята и др.). [c.47]

На 2-й день исследования материал со среды накопления пересевают на чащки с плотными средами (Плоскирева, Эндо, МакКонки) для выделения чистой культуры. На дифференциальнодиагностических средах через 18 —24 ч инкубации обнаруживают бесцветные колонии, так как сальмонеллы не ферментируют лактозу (см. цв. вклейку, рис. 1,6). После учета характера роста на чашках делают пересев на комбинированную полиуглеводную среду. [c.147]

Бактериологическое исследование. Для выделения чистых культур материал засевают на плотные среды для анаэробов (непосредственно или из транспортной, накопительной среды). На кровяном анаэробном агаре (с кроличьей кровью) превотеллы образуют сухие или блестящие колонии, которые дают красное свечение при УФО, а с 5 —7-го дня у них появляется пигментирован-ность (от светло-коричневого до черного цвета). Коричнево-чер- [c.185]

Бактериологическое исследование. Исследуемый материал сеют в чашки с висмут-сульфитным агаром и в среды накопления (магниевую, селенитовую), из которых через 6 — 10 ч делают пересев на висмут-сульфитный агар. Посевы инкубируют при 37 °С, на второй день их изучают, отбирают колонии черного цвета и пересевают на полиуглеводную среду (Олькеницкого или подобную) для накопления и первичной идентификации чистой культуры (см. цв. вклейку, рис. 8, г). На 3-й день исследования выделенные чистые культуры для окончательной идентификации сеют в среды пестрого ряда и ставят РА с адсорбированными сальмонел-лезными сыворотками (поливалентными и групповыми Л, В, С, [c.152]

Выделенную чистую культуру листерий идентифицируют по морфологическим, тинкториальным признакам, подвижности, биохимическим свойствам, антигенной структуре и чувствительности к диагностическим листериозным фагам. [c.180]

В ходе идентификации выделенных чистых культур отмечают характерные для эризипелотриксов признаки на трехсахарном железосодержащем агаре они образуют сероводород (почернение среды), неподвижны (как при 37 °С, так и при других температурных режимах), не обладают каталазой, разжижают желатин послойно, что придает росту вид ершика для мытья посуды (расслоение желатина идет перпендикулярно ходу укола). [c.182]

Через 24 — 48 ч инкубирования посевов отмечают помутнение и газообразование в среде накопления. Из среды, где отмечается рост, готовят мазки и окрашивают их по Граму. При обнаружении типичных клеток клостридий ( теннисные ракетки со спорами) делают пересев на плотные питательные среды для получения изолированных колоний. Выделение чистой культуры осложнено тем, что клостридии ботулизма часто находятся в ассоциациях с аэробными и другими анаэробными бактериями (иногда только [c.197]

Выделенную чистую культуру идентифицируют (см. табл. 2.19) и проверяют ее токсигенность. Токсин С. tetani накапливается к 4 —5-му дню культивирования. Культуру, выращенную на жидкой среде (Китта —Тароцци или др.), центрифугируют, надосадочную жидкость смешивают с антитоксической противостолбнячной сывороткой (и с ИХН — для положительного контроля). После инкубации в течение 40 мин при 37 °С по 0,3 мл каждой смеси вводят двум белым мышам внутримышечно (у корня хвоста). За мышами наблюдают 4—5 сут. У животных контрольной группы на 2 —4-е сут появляются признаки столбняка — ригидность хвоста и мышц в месте введения токсина, быстро наступает смерть. У мышей в опыте эти явления отсутствуют (нейтрализация токсина). [c.199]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология