Микроманипуляторы

Глобулы в латексе находятся в постоянном броуновском движении, средняя скорость которого составляет 12 ти/с в секунду. При применении микроскопа, снабженного специальным микроманипулятором, позволяющим с помощью кварцевых нитей и игл прокалывать и разрезать отдельные глобулы в поле зрения микроскопа, Хаузеру и другим исследователям удалось установить структуру глобул. [c.23]

Для анализа проб массой порядка 10 г или объемом 10 мл был развит ультрамикрохимический анализ, в к-ром все операции вьшолняют на предметном столике микроскопа в капиллярных сосудах с помощью микроманипуляторов. [c.85]

Наиболее детально изучено распределение в слоях клеточной стенки лигнина и целлюлозы. При этом использовались окрашивание реактивами, растворение полисахаридов в кислотах, выделение отдельных слоев клеточной стенки микроманипулятором и их химический анализ, ультрафиолетовая и флуоресцентная микроскопия. [c.319]

Наиболее надежный метод исследования состава отдельных слоев клеточных стенок — метод разделения их с помощью микроманипуляторов и последующего их микроанализа. К сожалению, этот метод из-за высокой трудоемкости еще не применяется. [c.320]

В дальнейшем [45] этот метод был применен к древесине сосны 35-летнего возраста, срезанной в период образования осенней древесины. С поверхности окоренных стволов тонкой бритвой (расположенной перпендикулярно поверхности) был снят слой самых молодых клеток, стенки которых состояли только из межклетного вещества М и первичной стенки Р. Отдельные клетки, попавшие из более поздних слоев, удалялись под микроскопом с помощью микроманипулятора. Затем с помощью микроманипулятора срезались последующие, более поздние слои. Контроль за слоями осуществлялся с помощью поляризационного микроскопа. Удалось выделить [c.321]

Полученные срезы выдерживались в смеси этанол — вода — глицерин (1 1 1) и после промывки их водой разделялись под микроскопом с помощью микроманипулятора на отдельные ткани и группы клеток. Выделенные образцы (в количестве 0,004— [c.326]

Видно, что электрохимические детекторы также применяются в капиллярном зонном электрофорезе. Среди них наибольшее распространение получили амперометрические детекторы. В качестве индикаторных электродов обычно используются углеродные волокна диаметром 1-10 мкм, которые помещаются в капилляр и устанавливаются с помощью микроманипулятора. При оптимизации условий детектирования возможно применение капилляров с диаметром до 2 мкм. В этом случае предел обнаружения, например катехина, достигает 10 молей, а эффективность разделения 140 ООО теоретических тарелок. Обычно применяют двухэлектродную схему измерений. [c.585]

Гибридизация (скрещивание)—получение гибридов (помесей) половым путем. Метод половой гибридизации предложил Косиков. Известны случаи получения гибридов скрещиванием спор при помощи микроманипулятора. Гибриды обладают расшатанной наследственностью, которая делает микроорганизмы более пластичными. Поэтому гибриды легче поддаются направленному воспитанию. Но гибридизация в микробиологии ограничена, так как половой процесс встречается только у некоторых микроорганизмов. У большинства дрожжей и дрожжеподобных грибков, используемых в гидролизной промышленности, половой процесс размножения отсутствует и к ним метод половой гибридизации не применим. [c.507]

Электрокинетические явления имеют разнообразные практические применения электрофорез — для создания тонких слоев произвольного состава на проводя-ших субстратах, для разделения смеси белков на отдельные компоненты, для введения лекарственных препаратов через кожу пациента электроосмос — для прецизионного дозирования жидкостей и создания микроманипуляторов потенциалы оседания (движения) и протекания — как сигналы разнообразных датчиков. [c.617]

Значительный вклад в представления о распределении полисахаридов, в том числе ГМЦ, внесли работы Мейера и Уилки [54, 55, опубликованные в 1959—1962 гг. В своих исследованиях авторы использовали молодую древесину ствола сосны, а также других пород, срубленных в середине августа. Часть ствола освобождали от коры и лезвием отделяли мягкий слой камбия, т. е. клетки, содержащие только слои М и Р. Следующие слои клеток снимали микроманипулятором под поляризационным микроскопом. Собранные образцы подвергали кислотному гидролизу и в гидролизатах определяли содержание отдельных моносахаридов. Уста- [c.35]

Применение микроскопа и микроманипуляторов является одной из особенностей техники ультрамикрометода. Конструкциям микроманипуляторов посвящен ряд монографий [137, 333 и статей [6, 77, 86, 94, 109, 157, 167, 189, 190, 192, 208, 239, 289, 312, 315, 318, 357]. [c.13]

Держатель 1 вместе с капиллярной пипеткой укрепляют в микроманипуляторе [268], изображенном на рис. 6. Пользуясь винтами 2, 3, 4, можно передвигать пипетку в трех взаимно- [c.26]

Конденсорную палочку устанавливают во влажной камере на столике микроскопа и фокусируют его на площадку. Свет от осветителя направляют на основание палочки и устанавливают в таком положении, чтобы площадка была достаточно освещена. Пипетками, укрепленными в микроманипуляторах, наносят на площадку приблизительно по 10 мкл исследуемого раствора и соответствующего реактива и наблюдают образующийся продукт реакции при 150-кратном увеличении. [c.34]

Поэтому при работе с капиллярными пробирками пользуются микроманипулятором (см. стр. 13, 26, 38, 56). [c.35]

При отсутствии микроманипулятора работают с коническими капиллярными пробирками (рис. 14), Длина пробирок 20—30 мм, ширина 3—5 мм, [c.35]

Рис. 49. Микроманипуляторы для отсасывания жидкости

При отсасывании пробирку с осадком рекомендуется помещать в микроманипулятор (рис. 49). Пробирку 1 с осадком и раствором помещают в штатив 3, установленный на столике 2. Столик 2 укреплен нй микрометрическом винте 4, вращающемся в гайке 5. До начала отсасывания винт 6 ослабляют, гайку 5 [c.56]

Рис 5-7 Буферная память I - УФ-детектор 2 - колонка 3 - соедини тельная трубка 4 нагреватель струи газообразного азота 5 - кристалличе ская пластинка бромида калия б - ИК-спектрометр 7 - микроманипулятор [c.130]

Изолированные оперативным вмешательством яйцеклетки из яйцеводов выдерживают в атмосфере 5% СО2 при 37°С до микроинъекции в них клонированных ДНК любого размера в количестве 1—2 нл 0,0001—0,0005% раствора ДНК с помощью микроманипулятора. [c.583]

Вероятно, только жидким характером биологических мембран можно объяснить их поведение при изучении с помощью микроманипулятора [53, 54]. Потоки жидкости и диффузия в плоскости плазматической мембраны непосредственно наблюдаются в микроскопе. Текучесть мембран оказывается необходимой и при образовании свободных везикул путем захлопывания мембранных фрагментов. Такой процесс возникает, когда сторонние материалы захватываются в углубления клеточных мембран, которые затем отделяются, образуя вакуоли (эндоцитоз и пиноцитоз [55]). Беннет [56], исследуя электронные микрофотографии пиноцитоза, подтвердил существование потоков жидкости в мембранах. [c.282]

Другая особенность рассматриваемых методов анализа заключается в том, что все химические реакции проводят в очень маленьких объемах растворов, которые нередко не превышают нескольких тысячных долей миллилитра. Все осаждения выполняют в маленьких пробирках, вместо фильтрования применяют центрифугирование и т. д. С очень малзнькими объемами растворов — в ультрамикроанализе — работают, используя микроскоп. Все химические реакции проводят в микрососудах на предметном столике микроскопа. Специальные механические устройства—микроманипуляторы — позволяют перемещать в поле зрения объектива микрососуды с определяемым веществом в трех направлениях— вперед и назад, вверх и вниз, налево и направо. Работа [c.139]

Экспериментальное изучение распределения потенциала на поверхности металла, содержащего включения, было выполнено при помощи микроманипулятора. Очень тонкий кончик капилляра Луггина, ведущего к электроду сравнения, перемещался вдоль поверхности цинкового электрода, содержащего включения Ре2п,. Максимальное различие в потенциалах разных участков поверхности не превыщало 3 мВ. [c.364]

Многочисленные анатомические исследования различных видов древесины в процессе ее развития показали, что молодые клетки вблизи камбия не содержат лигнина [1]. В дальнейшем, по мере утолщения клеточных стенок, относительное количество лигнина в них постепенно возрастает. Однако наибольшее количество лигнина откладывается в последней стадии развития клеток, перед их отмиранием. В этот период содержание лигнина в древесине достигает предельной величины, характерной для созревшей, мертвой ткани. Содержание полисахаридов, состоящих из пектиновых веществ, гемицеллюлоз и целлюлозы, в противоположность лигнину по мере старения клеток постепенно уменьшается (рис. 31). Необходимо, однако, учитывать, что на рис. 31 содержание отдельных компонентов в клеточных стенках трахеид приведено в относительных процентах. В действительности по мере увеличения толщины клеточных стенок в них откладываются слои неодинакового состава. Кроме того, отсутствовавший в межклетном, веществе и первичной оболочке лигнин к концу развития клетки откладывается там в наибольших количествах. Это наблюдение, сделанное с помощью цветных реакций на лигнин и углеводы, было подтверждено прямым определением содержания лигнина в срединной пластинке древесины дугласовой пихты, выделенной с помощью микроманипулятора [2]. В последней было найдено около 71% лигнина при среднем содержании его в древесине 28%. Предсуществование части гемицеллюлоз в клетках молодой древесины до их лигнификации, а также возникновение из камбия лубяной ткани, содержащей пектиновые вещества, целлюлозу и гемицеллюлозы, которые в живой ткани не лигнифицируются, дает основание предполагать, что основная масса лигнина и гемицеллюлоз откладывается в клеточных стенках на разных стадиях их развития. [c.289]

Изучение распределения компонентов древесины в клеточной стенке представляет очень трудную задачу. Распределение лигнина исследовали главным образом методом УФ-микроспектрофотометрии (работы Лан ге и др.). Содержание целлюлозы и гемицеллюлоз определяли химически ми методами после разделения слоев с помощью микроманипулятора Следует отметить, что результаты, полученные разными исследователями несколько расходятся, но общее заключение можно сделать. Сложная сре динная пластинка у хвойных пород на 60...90% состоит из лигнина (в ранней древесине в среднем примерно 70%, в поздней - 80%). Однако этот слой тонкий и лигнин срединной пластинки соответствует лишь небольшой части (15...30%) общего его количества в клеточной стенке. У лиственных пород срединная пластинка содержит меньше лигнина. Основная же масса лигнина находится во вторичной стенке, где его доля у хвойных пород составляет в среднем около 20...25% массы слоя, а у лиственных пород 12... 15%. Однако в отношении распределения лигнина по слоям вторичной стенки данные, полученные разными методами исследования, противоречивы. Более ранние результаты УФ-спектрофотометрических исследований показывали, что по направлению к полости клетки доля лигнина уменьшается. В слое 8( она больше, чем в слое 82, а в слое 8з(Т) составляет уже не более 10... 12% массы слоя для хвойных пород, тогда как у лиственных пород лигнин в этом слое вообще отсутствует. Результаты же более поздних исследований указывают на другие закономерности. В хвойной древесине во вторичной стенке наблюдается повышенная концентрация лигнина в слоях 8 и 8з по сравнению со слоем 82, а в лиственной древесине - равномерное распределение лигнина во вторичной стенке. Таким образом, требуется дальнейшее изучение распределения лигнина в клеточной стенке. [c.217]

Выделение чистой культуры из одной клетки. Для получения чистой культуры из одной клетки можно использовать капельный метод Линднера, микроманипулятор или микроселектор Перфильева. [c.78]

Аппаратура ультрамикроанализа характеризуется не только малыми размерами, но и специфическими конструктивными особенностями,, котарые рассмотрены в соответствующих местах предлагаемой книги. Дано также описание простейших микроманипуляторов. [c.6]

Малые размеры приборов и сосудов, в которых проводятся операции ультрамикроапализа, нередко требуют применения микроманипуляторов (см. стр. 26, 38, 56), т. е. приборов для передвижения пипеток, капилляров, для проведения ряда опер Г-ций в конусах и других мельчайших сосудах под микроскопом. С помощью микроманипуляторов можно перемещать укрепленный в них инструмент в трех взаимно-перпендикулярных направлениях. [c.13]

Недопустимо неаккуратное или нерсторожное обращение с чашкой при нагрузке и разгрузке. Чашку следует помещать и снимать лучше всего ири помощи микроманипулятора, контролируя его работу через лупу. [c.86]

Кнехт и сотр [19] разработали для капиллярной ВЭЖХ трубчатую ячейку с электродом из графитового волокна диаметром 9 мкм и длиной около 0,7 мм Электрод с помощью микроманипулятора вводили в выходной конец капиллярной колонки 265 см X 15 мкм (внутр диам) Графитовое волокно помещали в специальный стеклянный кожух, заполненный электролитом (0,1 М раствором хлорида калия) В тот же электролит погружали серебряно-хлоридсеребряный электрод Ячейку испытывали в окислительном режиме посредством простого двухэлектродного устройства При линейной скорости элюента в интервале около 4 - 5 мм/с электролитическая эффективность системы приближалась к 100% Пределы обнарУ жения для аскорбиновой кислоты, пирокатехинамина и 4-ме тилпирокатехинамина достигали порядка 1 фмоль/л (10 моль/л) [c.114]

Гетерокариотические соматические гибриды выделяют либо вручную с помощью микроманипулятора, капиллярной пипетки и шприца, либо автоматически на основе применения флуоресцентных систем. [c.517]

Путем многократных пересевов можно получить альгологически чистые культуры. Однако наиболее надежно выделять чистую культуру под контролем лупы, микроскопа или с помощью микроманипулятора из одной клетки (колонии) или одного гор-могония. [c.195]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология