Электрофорез микроскопическим

Рис. 54. Схема микрокамеры для измерения скорости электрофореза микроскопическим методом

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭЛЕКТРОКИНЕТИЧЕСКОГО ПОТЕНЦИАЛА СУСПЕНЗИЙ МЕТОДОМ ЭЛЕКТРОФОРЕЗА (МИКРОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД) [c.200]

Существует два метода определения скорости электрофореза микроскопический и макроскопический, или метод передвигающейся границы. [c.101]

РАБОТА 3. ИЗМЕРЕНИЯ 1-ПОТЕНЦИАЛА МЕТОДОМ ЭЛЕКТРОФОРЕЗА (МИКРОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД) [2] [c.177]

Для исследования электрофореза микроскопически видимых частиц суспензий, бактериальных клеток, а также белков, адсорбированных на частицах стекла или кварца, используются методом микроэлектрофореза, наблюдая под микроскопом перенос частиц в электрическом поле в специальной микрокювете. [c.109]

Явления электрофореза могут быть исследованы макроскопическими и микроскопическими методами. В первом случае применяются методы, аналогичные методам Лоджа и Гитторфа для определения чисел переноса и подвижности ионов. [c.203]

Работа 3. Измерения g-потенциала методом электрофореза (микроскопический метод). ....................177 [c.206]

Измерения электрофореза. Микроскопический метод. При этом методе изучаемый коллоидный раствор или суспензия помещается в специальную микроячейку для электрофореза, закрепленную на предметном стекле микроскопа [18]. Обычно применяется мелкая плоская ячейка с прямоугольным сечением, с двух сторон которой впаяно по электроду. Эти электроды соединяются с источником э. д. с., и скорость движения любой частицы определяется с помощью окулярной шкалы микроскопа. Градиент потенциала вычисляется из величины силы тока и сопротивления раствора между электродами, расстояние между которыми известно. Поскольку взвешенные частицы постепенно оседают, для изучения электрофореза была сконструирована вертикальная микроячейка. Влияние силы тяжести исключается путем наблюдения движения частицы при наложении поля сначала в одном направлении, а затем в обратном. Для изучения электрофореза применяются также ячейки цилиндрической формы, поскольку их легче изготовлять и мыть, чем ячейки с прямоугольным поперечным сечением. Однако кривизна стенок таких ячеек несколько затрудняет точное наблюдение за движущимися частицами. [c.712]

Аналогичное уравнение будем иметь и для скорости электрофореза, если принять во внимание, что при электроосмосе жидкость движется относительно неподвижной твердой фазы, а при электрофорезе, наоборот, происходит перемещение твердых частиц относительно жидкой фазы. Движение в обоих случаях определяется одними и теми же силами, действующими на двойной электрический слой. Методы определения скорости электрофореза заключаются или в наблюдении за движением границы раздела золь — жидкость в электрическом поле (макроскопический метод), или в случае более крупных коллоидных частиц— в определении электрофоретической подвижности непосредственно под микроскопом (микроскопический метод). [c.89]

Для исследования электрофореза микроскопически видимых частиц суспензий, бактериальных клеток и др. применяют метод микроэлектрофореза, наблюдая под микроскопом перенос частиц в электрическом поле в специальной микрокювете. [c.232]

Несмотря на сходство электрофореза и ионофореза, применяемые для их исследования методы различны. Метод подвижной границы, редко используемый при ионофорезе, оказался исключительно плодотворным для электрофореза. В ряде случаев электрофорез оказывается возможным исследовать непосредственно, прямым микроскопическим или ультрамикроскопическим методом, что невозможно при ионофорезе из-за субмикроскопических размеров ионов, [c.155]

Сущность работы. Существуют два метода измерения скорости электрофореза макроскопический и микроскопический. В работе предлагается применить первый из них. Измерения производят, наблюдая перемещение границы между золем и находящейся над ним жидкостью в электрическом поле. Для этой цели применяют специальные приборы, например прибор Бертона или сконструированный в Ленинградском государственном университете прибор Чайковского [2]. [c.174]

Что касается микроскопического метода, то он в настоящее время имеет в основном историческое значение, и подробно на нем мы останавливаться не будем. Методику и основные результаты можно найти в работе [1]. Там же дан обширный исторический обзор развития электрофореза. [c.42]

МИКРОСКОПИЧЕСКОЕ ИЗУЧЕНИЕ ЭЛЕКТРОФОРЕЗА [c.136]

Микроскопическое изучение электрофореза [c.137]

Микроскопическое изучение электрофореза 139 [c.139]

Для микроскопических наблюдений электрофореза и соответствующих количественных измерений употребляют специальные кюветы-камеры, в которые наливают золь и вставляют микроэлектроды, а для расчета величины и применяют особые приемы. Для установления знака заряда дисперсных частиц этим методом достаточно проследить направление—к аноду или катоду,—в котором поступательно, но не прекращая своего броуновского движения, движутся эти частицы. [c.113]

Прямые методы сводятся к наблюдению за поведением частиц в электрическом поле при электрофорезе—либо макроскопически в особых электрофоретических аппаратах, либо микроскопически в кювете ультрамикроскопа отсутствие границы раздела фаз смещений к тому или иному электроду в электрофоретическом аппарате или отдельных частиц в поле ультрамикроскопа служит показателем изоэлектрического состояния данного раствора (золя) в дальнейшем остается определить тем или иным методом pH этого раствора. [c.178]

Все эти методы используют электродные реакции и таким образом являются приложением электролиза. Изучение процессов, протекающих между электродами, называется ионофорезом. если речь идет об обычных электролитах, и электрофорезом, если изучается перенос коллоидных или микроскопических частиц. В этом обзоре будут рассмотрены оба процесса. Экономическое значение этих явлений невелико, но оно растет. Научное значение этих явлений более важное и также все возрастает. [c.239]

Применение электрофореза в органической химии особенно расширилось после появления прибора Тизелиуса в 1937 г. Хотя как микроскопический метод электрофореза, так и прежние методы движущейся границы применяются и в настоящее время, данная глава посвящена главным образом описанию прибора Тизелиуса, его различным видоизменениям и краткой характеристике обла- Сти его применения. Автор ставит своей целью познакомить читателя со всей методикой применения прибора Тизелиуса и отметить многие недоразумения и ошибочные заключения, которые могут быть выведены из результатов наблюдений. [c.351]

Разделить с помощью одной лишь хроматографии эту сложную смесь продуктов частичного расщепления цепи — аминокислот, дипептидов, трипептидов, тетрапептидов и т. д. — было очень трудно. Зангер и Туппи применили другие методы разделения (электрофорез и адсорбцию на угле и на ионообменных смолах), с помощью которых они разделили пептидные обломки на группы. Теперь они подвергали анализу уже эти более простые смеси с помощью хроматографии на бумаге. Им удалось выделить из разрушенной цепи 22 дипептида, 14 трипептидов и 12 более крупных обломков (см. фиг. , А). Хотя эти вещества были получены лишь в микроскопических количествах, тем не менее специальными методами они были идентифицированы и была установлена последовательность расположения образующих их аминокислот. [c.97]

Прямые методы сводятся к наблюдению за поведением частиц в электрическом поле при электрофорезе. При этом исследуемый белок подвергают электрофорезу в буферных растворах с разными значениями pH. В буферном растворе со значением pH, равным изоэлектрической точке белка, последний электронейтрален и не перемещается в электрическом поле. Эти наблюдения проводят либо макроскопически в особых электрофоретических аппаратах, либо микроскопически в кювете ультрамикроскопа. Помимо прямых методов наблюдения изоэлектричеекого состояния белков существуют и косвенные методы, которые сводятся к наблюдению максимума или минимума того или иного физического свойства, изменяющегося с изменением дзета-потенциала испытуемого раствора. Все эти методы подробно описаны в соответствующих руководствах. [c.340]

Макроскопические методы. Хотя микроскопический метод имеет некоторые преимущества в отношении простоты количества необходимого для измерени51 времени и в отношении получения сведений о форме, величине и ориентации частиц, за последние годы большое внимание привлекает макроскопический метод главным образом потому, что Тизелиус разработал очень удобный прибор для измерения. Макроскопический метод применялся в течение многих лет для приближенного изучения электрофореза простейшая форма прибора изображена на рис. 126. Нижняя часть U-образной трубки содержит исследуемую суспензию или коллоидный раствор, над которым в обоих коленах сосуда налит слой чистого растворителя и в него погружены два платиновых электрода. При наложении на эти электроды некоторого напряжения граница между растворителем и суспензией начинает передвигаться со скоростью, равной скорости электрофореза частиц. Если суспензия окрашена, можно непосредственно наблюдать за положением границы и измерять скорость ее движения. Зная градиент потенциала, можно вычислить среднюю электрофоретическую подвижность частиц. Если граница не поддается визуальному наблюдению, то иногда можно сделать ее видимой, заставив ее флуоресцировать в ультрафиолетовом свете в этом случае прибор должен быть изготовлен из кварца [20]. [c.713]

Методы изучения электрофорезав золях делятся на 1) макроскопические, основанные на наблюдении передвижения либо вещества дисперсной фазы (только в качественных наблюдениях), либо границы коллоидного раствора с дополнительной боковой жидкостью, и 2) микроскопические, основанные на непосредственном наблюдении за движущимися частицами в ультрамикроскоп или простой микроскоп. [c.112]

Прямые методы сводятся к наблюдению за поведением частиц в электрическом поле при электрофорезе, при этом исследуемый белок подвергают электрофорезу в буферных растворах с разными значениями pH. В буферном растворе со значением pH, равным изоэлектрической точке белка, последний электронейтрален и перемещаться в электрическом поле не будет. Наблюдения за электрофорезом приводят либо макроскопически в особых электрофоретических аппаратах, либо микроскопически в кювете ультрамикроскопа. [c.429]

В ранних работах по секвенирующему капиллярному электрофорезу гелевым матриксом служил обычный полиакриламидный гель. Однако его нестабильность, формирование пузьфь-ков воздуха, видимых при микроскопическом исследовании капилляров, заметно снижали производительность метода. Применение линейного полиакриламида позволило снять эти проблемы и способствовало развитию данного метода. [c.44]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология