Мембраны поперечные срезы

Рис. 2. Распределение ионов Са +в гетерогенных катионитовых-мембранах а — мембрана, содержащая 80% смолы КУ-2, связующее—сополимер фторопласта б — мембрана, содержащая 65% смолы КУ-2, связующее— поливинилхлорид (срез вдоль поверхности мембраны) в—то же, поперечный срез мембраны г—мембрана, содержащая 40% смолы КУ-2, связующее — сополимер фторопласта д — мембрана на основе сополимера фторопласта, содержащая 65% смолы КУ-2, полученной методом эмульсионной полимеризации.

Рис. 91. Схема строения саркомера при продольном (1) и поперечном срезе в зоне перекрывания толстых и тонких нитей (2), строения Р — актина в тонкой нити (3) и расположения поперечных мостиков в толстой нити (4). г — 2-мембрана.

Непосредственные наблюдения структуры поверхности мембран, а также ее поперечного среза или скола могут быть проведены методом электронной микроскопии. В случае непрозрачных для электронного пучка объектов, какими являются пористые пленки, применяют метод одноступенчатых платино-углеродных реплик [35]. Значительный объем информации о мембранах может быть получен путем сопоставления результатов, полученных при исследовании исходного раствора, фильтрата, концентрата и мембраны до и после проведения разделения на ней. Для этих целей приготавливают раствор, эмульсию или суспензию с определенной концентрацией веществ, имеющих известную молекулярную массу или известные размеры частиц [28, с. 36,95—96,136—137]. [c.67]

Рис, 9-1. Поперечный срез ядра типичной клетки. Ядерная оболочка состоит из двух мембран, причем наружная является продолжением мембраны эндоплазматического ретикулума (см. также рис. 8-19). Липидный бислой внутренней и наружной ядерных мембран соединяются в ядерных порах Две сети нитевидных промежуточных фибрилл (цветные линии) обеспечивают механическую прочность ядерной оболочки [c.93]

Вторая серия калориметрических экспериментов для получения зависимости характера и силы взаимодействия вода — полимер от структуры мембраны была выполнена на асимметричных мембранах р-2221. Использованные мембраны показаны на рис. 21.7 представленные микрофотографии сделаны с помощью электронного микроскопа с поперечных срезов мембраны. Условия формования мембран указаны в подписи к рисунку. Из этих фотографий видно, что с увеличением времени испарения рас- [c.356]

По-видимому, подобный ход изменения поляризации мембраны со временем электролиза говорит о следующем. В начальный период процесса (участок ас) происходит постепенное изменение концентрационных профилей на границах и внутри мембраны, однако перенос электричества через перегородку носит чисто ионный характер. При этом перенос Си " через диафрагму практически не идет, и ионы меди успевают внедриться лишь на незначительную глубину внутрь мембраны. Это отчетливо видно по поперечному срезу мембраны — специфическое синее окрашивание, вызванное образованием аминокомплекса меди, наблюдается только в узком слое у анодной поверхности перегородки. По мере концентрационных изменений в мембране создаются благоприятные условия для протекания реакций диспропорционирования и электрохимических процессов, которые постепенно становятся доминирующими (см. рисунок, участок de). [c.202]

Показан только небольшой фрагмент миофибриллы, включающий часть одного из саркомеров. Вверху (а) саркомер показан в продольном сечении, внизу — поперечные срезы через различные участки саркомера вблизи Z-мембраны ((>), в области перекрытия толстых и тонких нитей (в), в П-зоне (г). А — тонкая (актиновая) нить М — толстая (миозиновая) нить. Z-мембрана на этом рисунке изображена условной прямой линией. Па толстых нитях поперечной штриховкой выделена область, содержащая миозиновые выступы (мостики). [c.232]

Рис. 14-50. Структура базальной мембраны, подстилающей эпителиальные клетки, как она видна на поперечных срезах в электронном

Рис. 12-68. Электронная микрофотография тонкого поперечного среза базальной мембраны, подстилающей эпителиальную клетку роговицы куриного эмбриона.

В тонических мышечных волокнах на поперечных срезах миофиламенты образуют разные по величине и форме поля (поля Конгейма), а не четко округлые в сечении миофибриллы, как в фазных быстрых волокнах. Для тонических волокон характерны также множественная иннервация и образование нервных окончаний в виде виноградной кисти. Отсутствие ПД и высокое сопротивление поверхностной мембраны также присущи тоническим волокнам. [c.29]

ФОИ. Сохранившиеся эластические волокна были тонкими, местами обнаруживались лишь их обрывки. Уменьшение количества эластических волокон отмечалось во влагалищах волосяных фолликулов как на поперечных, так и на продольных срезах (рис. 20). Обращало на себя внимание исчезновение эластических волокон в сальных железах кожи подопытных животных (рис. 21). Нередко обрывки эластических волокон обнаруживались во всех слоях кожи (рис. 22). Местами по ходу волокон или их обрывков определялись варикозные утолщения (рис. 23). Некоторые волокна приобретали штопорообразную форму. Эластические мембраны сосудов утолщались, гомогенизировались, а в поверхностных слоях дермы нередко не обнаруживались. [c.135]

Первые исследования свойств устойчивых черных липидных пленок в водной среде явились хорошим экспериментальным подтверждением гипотезы Даниэлли и Дэвсона согласно которой бимолекулярный липидный слой служит основным структурным элементом биологических мембран. Уже первое сравнение свойств черных пленок и биологических мембран показало их большое сходство. Так, черные углеводородные нленки и биологические мембраны дают подобные электронно-микроскопические фотографии при наблюдении их поперечных срезов (трехслойная структура), имеют близкие значения толш ин, удельной электрической емкости, водной проницаемости и т. д. [c.167]

После того как было впервые установлено, что микрофибриллы уложены параллельными рядами, было высказано предположение, что в процессе укладки большую роль должна играть цитоплазма. Тем пе менее в цитоплазме не находили структур, наличие которых поддержало бы эти представления, до тех пор пока в 1963 г. Ледбеттер и Портер [17 ] не показали, что в цитоплазме имеются микротрубочки, причем эти структуры расположены параллельно тому направлению, в котором происходит отложение целлюлозы в клеточной оболочке. Микротрубочки всегда располагаются в непосредственной близости от оболочки. На фото 32 представлены поперечные срезы микротрубочек (их диаметр равен 230—270 Л) на этой микрофотографии видно расположение микротрубочек относительно продольной клеточной стенки. Ориентация микротрубочек относительно продольной стенки особенно отчетливо видна на фото 33. Они располагаются параллельно друг другу и идут перпендикулярно оси роста в пределах 0,1—0,2 мк от плазматической мембраны. По-видимому, микротрубочки каким-то образом прикреплены к плазматической мембране они находятся [c.90]

Начнем с того, что рассмотрим электронную микрофотографию поперечного среза через оболочку клетки, взятой из коры корня клещевины (Ri inus) этот снимок (рис. 116) сделан при большем увеличении, чем предыдущий. В центре видна клеточная стенка, справа и слева от нее — смежные клетки, которые она разделяет. Сначала о самих клетках в каждой видна расположенная вплотную к клеточной стенке плазмалемма в виде тонкой каймы (элементарная мембрана ). Основное вещество цитоплазмы имеет зернистую консистенцию. В ней располагаются хорошо знакомые нам цистерны эндоплазматической сети, вытянутые и тонкие. Они идут приблизительно параллельно клеточной стенке, однако в некоторых местах эти цистерны изгибаются и сворачивают к ней. В одном месте (выше центра) видно, как тяж эндоплазматической сети правой клетки, пройдя сквозь клеточную стенку, соединяется с пузырькообразной цистерной левой клетки. Правда, тяжи эндоплазматической сети большей частью оканчиваются у самой стенки, не доходя до нее. Однако по крайней мере в одном месте явно бросается в глаза, что концы обоих тяжей лежат точно друг против друга и что клеточная стенка, которая обычно не обнаруживает никакой структуры, здесь кажется темнее. Это можно объяснить тем, что цистерны [c.262]

На основании приведенных данных можно высказать предположение о механизме образования структуры волокна. По мнению Морхеда и Сиссона, возникновение структуры оболочки связано со скоростью коагуляции. Мы можем с уверенностью сказать, что оболочка возникает в том случае, когда каким-либо образом при коагуляции затруднено образование крупных кристаллитов. Это может, например, происходить при быстрой коагуляции. Условия для быстрой коагуляции имеются на периферии волокна, где вискоза соприкасается с неразбавленной осадительной ванной и образующаяся мембрана на скорость диффузии не влияет. Рост кристаллов может затрудняться также вследствие сжатия поперечного среза во времени коагуляции, которое всегда имеет место при формовании в ваннах с высоким содержанием солей. При добавках модификаторов кристаллизация замедляется из-за быстрой дегидратации растворенных частиц, что равноценно высокой скорости кристаллизации. Кроме того, как уже указывалось, модификаторы могут препятствовать образованию больших кристаллитов вследствие пространственных, или стерических затруднений для кристаллизации. [c.285]

Реплики поперечного среза мембран имели типичное трехслойно строение, причем на поверхности мембран были обнаружены сферические частицы (размер 6,0—25,0 нм). Предполагают, что частицы представляют собой липопротеидные субъединицы и располагаются внутри мембраны. Однако это маловероятно, поскольку частицы не выявляются на поперечных срезах мембран, где отчетливо просматривается трехслойная структура с гомогенным средним слоем. По мнению других исследователей, частицы представляют собой наружный белковый компонент мембраны, однако неясно, почему они не выявляются в некоторых мембранах. Возможно, частицы следует рассматривать как комплексы глобулярных белков-ферментов, адсорбированные мембраной или частично пронизывающие ее. [c.378]

Рис. 20-21. Плазмодесмы на электронных микрофотографиях. А. Продольный срез плазмодесмы водного папоротника. Плазматическая мембрана выстилает пору и, не прерываясь, переходит из одной клетки а другую. Видны эндоплазматический ретикулум и связанная с ним центральная десмотубула. Б. Такая же плазмодесма на поперечном срезе. (С любезного разрешения R

Нервная клетка, как и другие клетки организма, окружена плазматической мембраной. На электронных микрофотографиях при малом увеличении мембрана на поперечных срезах имеет вид одной темной линии толш,иной около 8 нм (чуть меньше одной сотой микрона). При большем увеличении можно видеть, что в действительности это две темные линии со светлым промежутком между ними. Таким образом, мембрана представляет собой трехслойную структуру с внутренним и наружным листками. [c.79]

В отличие от обычных методов разобщения тканей на срезы, которые дают возможность видеть поперечные сечения мембраны, реплики с замороженных образцов обнажили большие площадки мембран. Оказалось, что плоскости при скалывании мембран расщепляются вдоль срединного неполярного слоя липидов. Плазмалеммы бактерий и цитоплазматические мембраны дрожжей всегда раскалываются по центру их гидрофобной области, в то время как область расщепления плазмомембран дрожжевых клеток может, по-видимому, проходить как по центру гидрофобной области, так и по гидрофильным поверхностным областям этих мембран. [c.95]

Рис. 11-54. Поперечный срез через веретено диатомовой водоросли МеЫпа в профазе, непосредственно перед распадом ядерной мембраны. Срез проходит через среднюю часть веретена, где перекрываются полюсные микротрубочки обоих полуверетен. Эта водоросль отличается необычайно правильной упаковкой микротрубочек, выходящих из противоположных полюсов. Взаимодействие микротрубочек в веретене вьющих эукариот бывает не таким регулярным, хотя подчиняется тем же общим принципам. (В. Н. Т1ррк е1 а ., СуЮЬю1оре, 12, 52-73, 1975.)

Жгутики относящихся к прокариотам бактерий тоже единообразны, но устроены они значительно проще. У них нет микротрубочек. На поперечном срезе обнаруживаются лишь две фибриллы, а диаметр достигает 10—30 нм. Нет и элементарной мембраны. Особенно интересно состоящее из нескольких дисков и сильно дифференцированное базальное тело, закрепляющее жгутик в плазмалемме и в клеточной оболочке. По новейшим представлениям, жгутик бактерии должен не менять свою форму, а вращаться в своем гнезде . Возможно, что речь идет о единственном в мире организмов случае, в котором осуществился/принцип колеса, имеющего возможность свободно эращаться. [c.44]

В районе верхушечных клеток базальная мембрана, как правило, обладает постоянной толщиной ( 1 мкм), но внешне она неоднородна (рис. 16.5). На поперечных срезах электроноплотные полосы толщиной 40-50 нм чередуются с более широкими и светлыми зонами с периодом около 200 нм (рис. 16.6). На тангенциальных срезах электроноплотные области образуют регулярную структуру из полигональных ячеек с длиной стороны примерно 200 нм. Исходя из внешнего вида при разной ориентации срезов, мы заключили, что электроноплотное вещество организовано в структуру наподобие пчелиных сот, ячейки которых перпендикулярны базальным поверхностям верхушечных клеток. При просмотре под большим увеличением (рис. 16.6-16.8) видно, что электроноплотные области состоят из сконцентрированных ферритиновых мицелл, заключенных в вещество средней электронной плотности (по всей вероятности, белка апоферритина). Области базальной мембраны с малой электронной плотностью состоят из очень тонкого, возможно, фибриллярного материала с диаметром менее 3 нм. Никакой заметной связи между этими областями и какими-либо видимыми структурами в эндотелиальных или верхушечных клетках нет. Наши электронные микрофотографии не позволяют сделать выбор между возможностью существования предобразованных каналов или наличием мест предпочтительного связывания ферритина внутри базальной мембраны. В литературе мы не встречали никаких публикаций, описывающих подобным образом организованные субструктуры в базальных слоях других организмов. Полученные нами данные позволяют только строить предположения о том, для чего существует специализированный механизм для концентрирования ферритина или для транспорта ферритина через базальную мембрану. [c.104]

Чтобы выяснить, концентрируются ли вещества в везикула при конститутивном пути, вы заражаете клетки вирусом везикулярного стоматита (VSV) и следите за появлением вирусного G-белка. Ваша смелая идея заключается в том, чтобы сравнит концентрацию G-белка в полости стопок Г ольджи с его концентрацией в транспортных везикулах, не покрытых клатрином. Вн хотите измерить концентрацию G-белка, приготовив тонкие срезн клеток, инфицированных вирусом VSV, и проинкубировав их со специфическими антителами к G-белку, меченными частицам золота. Частички золота видны на электронных фотомикрографиях как маленькие черные пятнышки, поэтому довольно просто подсчитать их в полости транспортных везикул (как полностьи сформированных, так и отпочковывающихся) и в аппарате Г ольджи. Вы определяете концентрацию G-белка двумя способами 1) по числу частиц золота на поперечном срезе и 2) по числ) частиц золота на линейном участке мембраны. Эти результат представлены в табл. 8-5. [c.126]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология