Денситометрия в ультрафиолетовом

И, наконец, в-четвертых, развивалось аппаратурное оформление ТСХ автоматические аппликаторы для приготовления пластинок, а также выпуск стандартных тонкослойных пластинок с различными адсорбентами устройства для градиентной ТСХ приспособления для наблюдения и фотографической регистрации хроматографических пластинок в видимой и ультрафиолетовой области многочисленные конструкции сканирующих денситометров и флюориметров для количественной ТСХ. [c.135]

Большую ценность представляет информация относительно современных технических средств и способов сканирования хроматограмм на бумаге и в тонком слое, в том числе и хроматограмм радиоактивных веществ. Описаны денситометры и сканирующие устройства, включающие спектрофотометр, для сканирования хроматограмм в видимой, ультрафиолетовой областях и для флуориметрических измерений. [c.6]

Прямые фотоэлектрические измерения можно заменить фотографированием препарата в видимых или ультрафиолетовых лучах. О концентрации исследуемого клеточного компонента можно при этом судить по плотности изобра>кения на фотографической пластинке, измеряемой фотоэлектрическим денситометром. [c.124]

Около 10 простых фенолоспиртов выделено из природных продуктов, где они часто содержатся в виде гликозидов. По бумажной хроматографии фенолоспиртов данных сравнительно немного (см. стр. 51). Их спектры поглощения в ультрафиолетовой области очень похожи на спектры простых фенолов с максимумами при 270—285 ммк и батохромным сдвигом в щелочах от 10 до 17 ммк вторые максимумы находятся при 220—230 ммк. Полуколичественный метод бумажной хроматографии для анализа салицина, глюкозида о-оксибензилового спирта, описан Персоном [33]. По этой методике с помощью денситометра измеряют розовую окраску, возникающую при опрыскивании салицина на бумаге 2 н. серной кислотой и нагревании. [c.52]

Приборы для сканирующей денситометрии имеют много общего. Чтобы охватить весь диапазон УФ- и видимого излучения (200-800 нм), необходимо располагать в качестве источника излучения различными лампами. Видимое излучение получают на галогеновых или вольфрамовых лампах, ультрафиолетовое — на дейтериевых. Лля флуоресцентного анализа целесообразно использовать ртутные или ксеноновые дуговые лампы. Выбор требуемой длины волны осуществляется с помощью монохроматора или фильтра. [c.396]

Эту операцию производят через нижнее, снабженное краном отверстие в следующей последовательности. Отключают напряжение и, подняв клапан, запирают электролит в центральной трубке. Во избежание подтекания его лучше из трубки отсосать. Из рабочего объема колонки сверху отсасывают верхний электродный буфер и до предела заполняют верхнюю часть колонки водой. Затем к отростку, ведущему в рабочую камеру, плотно присоединяют выходную трубку перистальтического насоса н открывают сливной кран. Жидкость из колонки будет вытекать только по мере подачи воды от перистальтического насоса в верхнюю часть камеры. Скорость этой подачи можно регулировать. Фирма рекомендует опоражнивать колонку со скоростью 60—80 мл/ч. Элюат из колонки через денситометр направляют в коллектор фракций. Во фракциях измеряют pH (при температуре фокусирования ). Если ультрафиолетовое поглощение оказывается недостаточным, наличие белков во фракциях определяют в аликвотах с помощью окрашивания или других описанных выше методов обнаружения белков. Отобранные фракции объединяют и отделяют в них белки от амфолинов. [c.70]

Естественным расширением методов денситометрии и флуоримет-1ИИ является возможность записать спектры ультрафиолетового поглощения, ультрафиолетовой флуоресценции и поглощения в видимой области спектра разделенных вешеств непосредственно на слое. Преимущество такого метода заключается в том, что неразделенные вещества, например стереоизомеры, можно определить в присутствии i pyr друга, если их спектры существенно отличаются. Подходящие [c.175]

Денситометрические методы были применены к трем группам веществ, являющихся характерными представителями целого ряда веществ, весьма удобных для анализа таким способом. Первая группа — Соп1ит алкалоиды — представляет собой ненасыщенные соединения, поэтому даже при успешном элюировании малые количества их нельзя определить спектрометрически в ультрафиолетовой области. Для этих целей Ферберн и др. [16] разработали методику газовой хроматографии, но она оказалась недостаточно чувствительной. Вторую группу — алкалоиды опиума— можно проанализировать методом хроматографии на бумаге с количественным определением в зонах путем измерения площади зон [7]. Но хотя этот метод весьма надежен, он достаточно трудоемок. Для третьей группы — алкалоидов митрагины — Шеллард и Элам [17] предложили ТСХ-систему, в которой конечные зоны были красного цвета на белом фоне, что весьма удобно для денситометрии. Благодаря этой [c.25]

Градуировочный график. На хроматографическую пластинку наносят 0,6 0,8 1,0 2,0 5,0 10,0 мкг рабочих стандартных растворов и анализируют в условиях анализа пробы. На хроматограмме проявляют а,а-дихлорпропионо-вую кислоту 0,5%-ным раствором дифениламина и облучают ультрафиолетовым светом до образования голубых пятен, = 0,35. Окраска пятен устойчива. Измеряют площади пятен стандартов с использованием планиметра или денситометра. По средним результатам из пяти определений строят график зависимости площади пятен (мм ) от содержания а,а-дихлорпропионовой кислоты (мкг). [c.191]

Прямое измерение флуоресценции и (или) ее гашения производят, накрыв пластинку кварцевой прокладкой. Затем ее переворачивают, помещают в денситометр и облучают сорбент через эту пластинку ультрафиолетовым излучением. Флуоресцентное излучение поступает в детектор, пройдя прозрачную подложку. В )том случае тгспользуют однолучевую модификацию детектирующей системы. Предел онределеипя измеряется субнаиограммовыми количествами. [c.102]

Обнаружение полос (зон, пиков) в случае достаточной концентрации в них белков или нуклеиновых кислот нередко ведут по поглощейию света в ультрафиолетовой области спектра. Для частиц иногда удается регистрировать мутность в диапазоне длин волн 500—600 нм. Желательно, чтобы трубки, идущие от пробирки с градиентом к проточной кювете денситометра и, далее, к коллектору фракций, во избежание смещивания градиента в них были по возможности короткими и тонкими. Объем проточной кюветы также должен быть небольшим. Движение жидкости по кювете и трубкам должно происходить снизу вверх — опять-таки во избежание образования участков обратного градиента , где более плотная жидкость окажется над менее плотной. Разумеется, это справедливо для тех случаев, когда фракционирование градиента начинают от мениска. В случае отсасывания со дна пробирки, наоборот, жидкость в трубках и кювете должна течь сверху вниз. [c.222]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология