Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Взятие проб крови у животных

    Общее положение У каждого животного перед иммунизацией необходимо взять пробу крови при работе с мышами обычно смешивают образцы крови, взятые у нескольких животных. [c.73]

    Взятие проб крови у крыс обычно осуществляют путем. кардиальной пункции под анестезией, используя камеру, заполненную смесью эфира с воздухом. Крысу из вле Кают в состоянии коллапса и помещают на спину на кусок ткани. Небольшую мензурку с пропитанной эфиром ватой помещают перед носом животного для поддерживающей анестезии. Шприцем на 1— 2 мл с помощью ЗО- ММ иглы № 23 пунктируют грудную клетку ниже мечевидного отростка грудины, держа грудную летку между указательным и большим пальцами левой руки. Слегка втягивая поршень на себя, убеждаются в том, что игла попала в сердце. Шприц медленно наполняют и извлекают иглу. Крысы быстро выходят из эфирного наркоза, и их можно поместить в клетку, как только они полностью приходят в сознание. Таким способом можно взять до 1—2 мл крови один раз 1в неделю. Данную процедуру должен выполнять только специалист, имеющий соответствующий опыт. [c.74]


    Угнетение фермента в этой серии происходило более резко по сравнению с предыдущими. Так, если угнетение холинэстеразы в первой и второй сериях на 80—90% исходного уровня наблюдалось через 2 ч после аппликации, то в третьей такая же степень угнетения фермента отмечалась в пробах крови, взятых через 1 ч. Активность АХЭ-эритроцитов и ХЭ-сыворотки была угнетена почти полностью в первой и второй сериях исследований через 3 ч, а в третьей — через 2 ч после применения препарата. Гибель животных в третьей серии происходила в более ранние сроки (все пять кошек погибли в 1-е сутки). [c.113]

    Параллельно с исследованием указанны.х выше органов и тканей были проведены анализы крови, взятой от тех же животных. При этом ни в одной из 11 проверенных проб крови не было обнаружено даже следов пестицидов. [c.296]

    Для хранения сыворотки лучше использовать полипропиленовые бутыли на, 50—500 мл с завинчивающейся крышкой, поскольку стеклянные могут лопнуть при замораживании удобно использовать небольшие универсальные флаконы или пробирки с крышками. Важно, чтобы каждый контейнер был герметичен. Не следует использовать резиновые пробки, так как они повреждаются от мороза. На контейнере необходимо отметить номер животного, его вид и дату взятия крови. Пробы крови, отобранные последовательно, следует хранить вместе. Не делайте надписи на стекле, так как они могут смываться при оттаивании. Покрывайте надпись пленкой или используйте несмываемые чернила. Небольшие образцы можно хранить в пластиковой упаковке с приложением ярлыка, в пробирках, пронумерованных соответствующим образом. Алюминиевые поддоны шириной 20 см, которые легко вдвигаются в морозильную камеру, идеально подходят для хранения сывороток. Морозильные камеры должны иметь двустворчатые двери, а каждое отделение — 3—4 полки. Месторасположение того или иного образца сыворотки в холодильнике должно быть указано в специальном каталоге. [c.90]

    Помимо прикладного значения результаты количественного анализа весьма важны при исследованиях в области химии, биохимии, биологии, геологии и других наук. В качестве доказательства рассмотрим несколько примеров. Представления о механизме большинства химических реакций получены из кинетических данных, причем контроль за скоростью исчезновения реагирующих веществ или появления продуктов реакции осуществлялся при помощи количественного определения компонентов реакции. Известно, что механизм передачи нервных импульсов у животных и сокращение или расслабление мышц включают перенос ионов натрия и калия через мембраны это открытие было сделано благодаря измерениям концентрации ионов по обе стороны мембран. Для изучения механизма переноса кислорода и углекислого газа в крови понадобились методы непрерывного контроля концентрации этих и других соединений в живом организме. Исследование поведения полупроводников потребовало развития методов количественного определения примесей в чистых кремнии и германии в интервале 10 —10-1"%. Пд содержанию различных микровключений в образцах обсидиана можно установить их происхождение это дало возможность археологам проследить древние торговые пути по орудиям труда и оружию, изготовленным из этого материала. В ряде случаев количественный анализ поверхностных слоев почв позволил геологам обнаружить громадные залежи руд на значительной глубине. Количественный анализ ничтожных количеств проб, взятых с произведений искусства, дал в руки историков ключ к разгадке материалов и техники работы художников прошлого, а также важный способ обнаружения подделок. [c.12]


    Общий анализ крови производили у 10 подопытных и у такого же количества контрольных мышей. Работоспособность методом плавания изучали у 14 мышей из каждой группы. Остальные пробы выполняли на всех взятых в опыт особях соответствующих видов животных. [c.146]

    Определение следовых количеств может оказать существенное влияние на решение вопроса о транспорте будущего (в первую очередь городского), а также в контроле процессов неполного окисления при производстве электроэнергии. Кроме того, этот тип аналитических данных будет широко использоваться при решении градостроительных проблем путем проведения анализа загрязнения воздуха и определения наилучших условий для вентиляции. Определение следовых количеств становится исключительно важным для медицинских учреждений, а некоторые типы химического анализа уже теперь служат основой диагностики в медицине. Важными становятся не только данные, получаемые при анализе мочи и крови, мокроты и других проб, взятых у здоровых и больных людей и животных. Ясно, что для серьезного успеха медицины важно определять следовые примеси даже в пробах, взятых из небольшого количества клеток. Это означает, что определение следовых количеств веществ долн но будет сочетаться с минимальным количеством пробы. [c.194]

    Метод количественного онределения фермента в капле крови позволил А. Н. Баху ежечасно учитывать активность каталазы и протеазы в течение суток. При этом оказалось, что в крови животных и человека эта активность подвергается весьма существенным изменениям в зависимости от времени взятия проб для анализа. Этот установленный А. Н. Бахом суточный ритм ферментативной активности имеет выдающееся общебиологи-ческое значение. Впоследствии он был подтвержден и развит в работах Института биохимии Академии Наук СССР на многочисленных растительных объектах. [c.666]

    Поликлональные антитела против GGT почек быка или GGT почек крысы (легкие формы) могут быть получены иммунизацией кроликов (самки, возраст 6—8 нед) путем инъекций в подушечки задних лап эмульсии, состоящей из 50 мкг фермента в 0,5 мл Na l-натрийфосфатного буфера с 0,5 мл полного стимулятора Фрейнда на животное. Через 2 нед вводят то же количество антигена (50 мкг GGT в 0,5 мл того же буфера), хорошо эмульгированного неполным стимулятором Фрейнда, подкожно в несколько мест шеи. Целесообразно повторить последнее введение еще через 2 нед. Через 10—15 сут берут пробы крови кролика инкубируют взятые пробы при 37 Х в течение 2 ч, затем оставляют на ночь при 4 °С и отделяют антисыворотку центрифугированием при 3000 g в течение 30 мин. В анализах методом двойной иммунодиффузии антисыворотка при разбавлении 1 128 (Na l-фосфатным буфером) все еще дает дуги преципи тации с разбавленной GGT (0,025 мг/мл). [c.153]

    Одним из способов изучения путей превращения введенного соединения in vivo является перфузия органов (например, почек или печени), при которой соединение вводят с помощью тонкой полой иглы в артерию, несущую кровь к данному органу, а затем анализируют пробы крови, взятые из соответствующей вены животного. [c.29]

    Ультрамикроанализ широко применяется при биохимических и клинических исследованиях и особенно при анализе крови [22, 24, 69, 181, 194, 218, 259, 273, 282, 283, 302, 316, 317, 363, 364, 370, 381]. РГзвестно, что даже для микроанализа приходится иногда отбирать сравнительно большие объемы крови. Например, для определения глютатиона методом микроанализа требуется 3 мл крови,. которую для этого отбирают из вены. Такой способ отбора пробы не всегда удобен и возможен. Для ультрамнкроанализа достаточен очень малый объем крови (0,05 мл и меньше) и го можно взять из пальца больного. Ультрамикроанализ особенно полезен и незаменим при систе-матичеоких анализах крови одного и того же лица. Несколько миллилитров крови нельзя отбирать у мелких животных, на которых проводят некоторые биохимические или фармакологические исследования. Анализ крови во всех приведенных выше случаях становится возможным, если выполнять его ультрамикрометодом, т. е. когда объем отбираемой пробы уменьшается до 0,05 мл. [c.11]

    В день действующего вещества атразина, не обнаружено никаких отклонений от нормы. По окончании опытов в мускулах, жировых тканях, почках, печени, сердце, крови, матке и в последе животных атразин не обнаружен при чувствительности метода анализа 0,1 мг/кг. В другой серии опытов 2 дойным коровам в каждом варианте опыта вводили с кормом в течение 21 дня подряд 3, 15 и 100 мг/кг действующего вещества атразина в виде 807о-ного смачивающегося порошка [данные (мг/кг) относятся к общему весу зерна и сена, используемого в качестве корма]. Подопытные животные не отличались в отношении приема пищи, удоев и поведения от контрольных животных, получавших корм без атразина. Ни в одной из проб молока, взятых на 1, 3, 5, 8, 14 и 21-й день после начала опыта, а затем на 2-й и 7-й день по окончании добавления атразина в корм, не было обнаружено аналитическим путем атразина или оксиатразина (пределы обнаружения при использованном методе анализа составляют для атразина 0,04 мг/кг и для оксиатразина — 0,05 мг/кг) [536]. В моче коров после введения с кормом 5 мг/кг атразина в первый день опыта было найдено 0,03 мг/кг, а на 4 день — 0,12 мг/кг атразина. Через 2 дня после прекращения введения гербицида атразин в моче не обнаружен [1301]. [c.386]


    Этот вопрос в процессе работы возникал и у нас. Однако, производя наблюдение одновременно над тремя животными или двумя людьми, мы обратили внимание на такие обстоятельства, которые вполне оправдывают определение показателя по новому способу. Это, во-первых, то, что в процессе наблюде1П1я каждая кровь ведет себя индивидуально. Если мы обратимся к таблицам ферментных показателей, то заметим, что при одних и тех же условиях опыта (время взятия крови, температурные границы водяной бани и термостата и пр.) одна проба дает повышение протеолити-ческого показателя, другая остается без изменения в этом отношении пли обнаруживает падение протеазы. Трудно допустить, что для каталазы одной крови в аналогичных условиях создаются те неблагоприятные для ее действия факторы, которые отсутствуют для другой каталазы в этот же час. Во-вторых, обраш ает на себя внимание нередкий факт, что при одинаковом в течение двух смен ных часов показателе каталазы у одного и того же животного показатель протеазы значительно разнится в те же часы. То же следует сказать и про совпадение показателей каталазы в раз- [c.550]

    В сыворотке крови 25 здоровых людей Холл и Люкас [12] обнаружили колебания в активности холинэстеразы в пределах от 2,7 до 7,24 единицы. Различия между отдельными пробами, взятыми у одного и того же индивида, были незначительны [13]. Те же ав- оры нашли подобные же индивидуальные различия и у других видов животных — у лошадей, собак, морских свинок, кошек, кроликов и цыплят. Межвидовые различия проявляются также четко пределы колебаний в активности холинэстеразы для кошек составляют, например, 1,84—2,80, а для кроликов — 0,35—0,70 единицы. [c.99]

    Возбудитель туляремии Fran isella tularensis относится к роду Fran isella, не включенному в определенное семейство. В естественных условиях встречается у грызунов, вызывая у них смертельную инфекцию. Для диагностики туляремии у людей обычно применяют кожно-аллергическую пробу и серологические реакции. Микробиологическая диагностика проводится в специальных лабораториях путем заражения лабораторных животных, так как непосредственное выделение возбудителя на питательных средах из крови или другого материала, взятого от больных людей, удается редко. [c.202]

    Для получения поликлональных антисывороток, используемых в повседневных иммунологических методах исследования, особенно в реакциях преципитации, применяют более крупных животных, в частности лабораторных кроликов. Кроликов можно содержать в клетках, они хорошо размножаются в неволе, выносливы и долго живут. Уход, иммунизация и взятие Крови у этих животных не представляют труда. Полученные от кроликов антисыворотки обладают хорошими преципитиру-ющими свойствами и стабильны при хранении, иммуноглобулиновая фракция легко поддается очистке. Кроме того, такие антисыворотки, обладая высокой авидностью/аффинностью пригодны для использования в чувствительных иммунологических тестах. В течение нескольких месяцев в период максимального ответа можно получить не менее 100 мл антисыворотки и еще 150 мл при аутопсии. Аутбредные кролики отвечают на иммуноген по-разному, поэтому следует использовать для иммунизации несколько животных, протитровать их сыворотки по отдельности, затем смешать отобранные пробы, если требуется максимальное разнообразие антител. Кролики достаточно хорошо отвечают на широкий спектр ммуногенов в сочетании с адъювантом Фрейнда образованием IgG. [c.41]


Смотреть страницы где упоминается термин Взятие проб крови у животных: [c.385]    [c.167]    [c.379]    [c.193]    [c.302]    [c.529]   
Антитела Методы Т.1 (1991) -- [ c.73 ]




ПОИСК





Смотрите так же термины и статьи:

Взятие пробы



© 2025 chem21.info Реклама на сайте