Фенилаланин, определение в вод в воде

К сухому остатку в клайзеновской колбе добавляют 100 мл воды и вновь выпаривают все досуха. Этот дестиллат отбрасывают. К остатку в колбе приливают 150 мл воды и 150 Л(л эфира и смесь взбалтывают до полного растворения. Водный слой отделяют и экстрагируют три раза эфиром порциями по 100 мл. Эфирные вытяжки отбрасывают, водный раствор нагревают на кипящей водяной бане с 2—Зг активированного березового угля и со следами сульфита натрия до тех пор, пока не будет удален весь растворенный эфир. Раствор фильтруют, фильтрат нагревают до кипения и нейтрализуют 15%-ным водным аммиаком (уд. в. 0,94), применяя в качестве индикатора конго красный. Обычно требуется около 25 аммиака. Фенилаланин выделяется в виде бесцветных пластинок, которые по охлаждении раствора отфильтровывают и на фильтре тщательно промывают двумя порциями по 30 мл холодной воды. Выход 10,5— 11 г (63,6—67% теоретич.). При определении температуры плавления продукт разлагается при 284—288° (исправл. примечание 6). [c.497]

Для детального изучения свойств и особенностей неорганической матрицы использовали органические соединения-примеси бензол, толуол, простейшие ароматические соединения, структурные спектры люминесценции которых в органической матрице хорошо известны фенол и анилин, имеющие электро-нодонорные группы, спектры люминесценции которых в органической матрице представляют собой широкие, практически бесструктурные полосы ароматические аминокислоты (/-фенилаланин, /-тирозин, /-триптофан), практически нерастворимые в органических растворителях, используемых в качестве матриц по методу Шпольского, и хорошо растворимые в воде. Выбор данных соединений был также обусловлен и практическими требованиями определение микроколичеств исследуемых веществ непосредственно в природных водах. [c.245]

Растениям давали усваивать соединения в течение 24 ч, затем их высущивали, размалывали и обрабатывали по ранее описанным методам. Окисление нитробензолом в щелочи, разделение альдегидов хроматографией на бумаге и определение радиоактивности альдегидов показало, что эффективность превращения шикимовой кислоты в лигнин, дающий ванилин и сиреневый альдегид, была того же порядка что и для L-фенилаланина. Разделение ванилина, сиреневого альдегида и п-оксибензальдегида проводилось эффективно разделительной хроматографией на колонках с кизельгуром, изооктаном, содержащим 10% бензола (по объему) и насыщенным водой, в качестве проявляющего растворителя. [c.778]

Водородные связи, которые обычно образуются в результате взаимодействия фенольного гидроксила тирозина (14) и карбоксила глутаминовой (24) или аспарагиновой кислоты, могут вносить свой вклад в стабилизацию третичной структуры. Ионные взаимодействия, например между р-карбоксильной группой аспарагиновой кислоты (18) и е-аминогруппой лизина (8), также, по-видимому, участвуют в стабилизации структуры. Ди-сульфидные связи могут быть образованы между боковыми цепями или группами К двух остатков цистеина (4, 10) естественно ожидать, что белковая структура, фиксированная такими связями, будет очень стабильна. Недавно было высказано предположение, согласно которому внутренняя часть белковой молекулы представляет собой каплю масла . Это дает основания утверждать, что гидрофобные взаимодействия могут быть важным фактором в определении третичной структуры. Неполярные группы К таких аминокислот, как фенилаланин (11), лейцин (13), триптофан (15), изолейцин (16) и валин (19), несовместимы с высокополярными молекулами воды. Рентгеноструктурное исследование подтвердило предположение, что эти группы стремятся разместиться во внутренней части пептидной цепи и исключить воду из своего непосредственного соседства. Стабилизация структуры белка, являющаяся результа-татом этого процесса, имеет энтропийную природу, и, хотя для белков оиа не может быть точпо рассчитана, ее можно оценить, измеряя термодинамические параметры переноса углеводородов из неполярных растворителей в воду. Например, переход [c.381]

Метод. Определенная часть белкового гндролизата, содержащая I—4 мг фенилаланина, упаривается досуха. Добавляют 2 мл раствора КНОз в концентрированной H2SO4 и нитруют в течение 20 мин. на паровой бане. Остаток растворяют в 9 мл воды. Раствор подщелачивают аммиаком, охлаждают и вносят 0,5. /л свежеприготовленного 1% раствора аскорбиновой кислоты. Разбавляют концентрированным аммиаком до 25 мл. Производят отсчет со светофильтром 530 и. [c.135]

III) н-бутанол — уксусная кислота — вода (300 60 140) при трехкратном пропускании для определения цистина, цистеина, орнитина, лизина, гистидина, аргинина, аланина, пролина,тирозина, уаминомасляной кислоты, фенилаланина, лейцина и изолейцина [c.40]

IV) н-бутанол — уксусная кислота — вода (4 1 1) при семикратном пропускании для определения цистина и цистеина, орнитина, треонина, глутаминовой кислоты, триптофана, валина, фенилаланина, лейцина и изолейцияа. [c.41]

Дженкинсон и Тинслей [19] идентифицировали с помощью хроматографии на бумаге состав аминокислот, гидролизат которых был получен в ходе изучения аминокислот растительного происхождения, выделенных из компоста. Десять мл гидролизата, содержавшего приблизительно 1 мг связанного азота, запаривали досуха при пониженном давлении, растворяли в 5 мл воды и снова упаривали досуха. Остаток растворяли в 1,5 мл воды и центрифугировали. Осветвленную жидкость в количестве 0,04 мл наносили на бумагу Ватман № 1. Разделение проводили элюентом, предложенным Вольфом [20]. Хроматограмму проявляли, окуная лист в 0,2%-ный раствор нингидрина в ацетоне. Были идентифицированы следующие аминокислоты цистеиновая, аспарагиновая, глутаминовая, лизин, аргинин, глицин, гистидин, серии, аланин, тирозин, пролин, валин, треонин, изолейцин, лейцин и фенилаланин. Метионин не поддавался определению, поскольку его трудно было отделить от глицина в описанных системах растворителей. Метио-нин-5-оксид тоже не отделялся от валина. Хроматограммы опускали в 0,1%-ный раствор изатина в ацетоне для обнаружения про-лина и подтверждения отсутствия оксипролина. Детектирование и определение содержания пептида с остатком лизина в середине цепи проводили с помощью 2,4-динитрофторбензола [21]. Эта реакция протекает, поскольку е-аминогруппа, в отличие от а-амино-группы лизина, свободна и может вступать в реакцию. [c.306]

Как отмечено выше, среди органических компонентов подземных вод констатируется ряд азотистых соединений. Общее содержант органического азота в подземных водах обычно не превышает десятых долей миллиграмма на литр. Раздельное определение различных классов азотистых соединений в водах весьма затруднительно. В этом направлении наибольший интерес представляет исследование Э. Дегенса, Дж. Ханта и их сотрудников, определивших индивидуальные аминокислоты в пластовых водах нефтеносных районов. Суммарное содержание аминокислот в исследованных водах достигало нескольких миллиграммов на литр, а в их составе имелись серии, фреонин, фенилаланин, глютаминовая кислота и некоторые другие. В СССР исследование аминокислот и аминов (без определения индивидуальных веществ) проводилось А. С. Зингером (1966). В подземных водах Нижнего Поволжья им определены содержания аминокислот порядка десятых долей миллиграмма на литр и содержания аминов, как правило, несколько меньше. [c.72]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология