диэтил кислотный гидролиз

Для проведения количественных определений полученную после кислотного гидролиза темную жидкость осветляют кипячением с активированным углем, фильтруют и экстрагируют диэти-ловым эфиром. Из солянокислого раствора в эфир переходят двухосновные кислоты. Эфир отгоняют, кислоты сушат при 40° С, взвешивают и рассчитывают процентное содержание кислоты полиамиде. [c.207]

Полученная по реакции соль сильного основания и слабой кислоты в водном растворе будет подвергаться гидролизу, образуя исходные вещества. Чтобы избежать гидролиза, следует реакцию нейтрализации проводить в среде органических веществ, а щелочь растворять в органическом растворителе. В качестве реактива при определении кислотности обычно применяют спиртовый раствор КОН, так как едкое кали лучше, чем едкий натр, растворяется в этиловом спирте. Для растворения анализируемого нефтепродукта подбирают вещества или смесь веществ, хорошо растворяющих углеводороды и кислые соединения, например, этиловый спирт, смесь этилового спирта с бензолом, смесь этилового спирта с диэти-ловым эфиром и др. [c.83]

Как было упомянуто во Введении , кислотный гидролиз уро-тропиновых солей дает соответствующие первичные амины [3]. Эта реакция, названная впоследствии реакцией Делепина, является превосходным методом получения первичных аминов из галоидных алюилов, не осложняющимся образованием вторичных аминов [37]. Мето заслуживает сравнения с более известным синтезом Габриэля, а в отдельных случаях он даже более удобен, чем последний. Гидролиз лучше всего проводить при помощи смеси этилового спирта и концентрированной соляной кислоты, причем формальдегид выделяется в виде легко летучего диэтил-формаля. [c.269]

Данные о расщеплении остатков 1-N- и 3-N-aлкилaдeнинoв в составе РНК, ДНК и других полинуклеотидов практически отсутствуют (об образовании подобных производных при алкилировании полинуклеотидов см. стр. 364). Отмечается, что при действии на полиадениловую кислоту диэтил-( -хлорэтил)-амина в течение 48 ч при pH 7 и 37 °С с последующим кислотным гидролизом среди продуктов реакции обнаруживается производное имидазола XXXI [c.450]

Влияние ДДС на кислотный гидролиз п-замещенных диэтил-ацеталей бензальдегида во многих отношениях аналогично влиянию его на гидролиз -замещенных метилортобензоатов [198]. Этого и следовало ожидать, учитывая сходство механизмов этих реакций. Константа скорости второго порядка для реакции гидролиза указанных выше ацеталей увеличивается с ростом концентрации анионного детергента примерно до 0,036 М и несколько уменьшается при более высокой концентрации ПАВ, Такой тип изменения [c.267]

При разработке колориметрического метода определения исследуемых пестицидов в продуктах растительного происхождения ш биосредах используют количественное выделение сероуглерода при кислотном гидролизе соединений на основе дитиокарбаматов [1]. При этом выбирают оптимальные условия, обеспечивающие полноту гидролиза каждого из указанных пестицидов. Для определения выделившегося сероуглерода используют его реакцию со вторичными аминами и солями меди. Сопутствующие сернистый газ или сульфиды поглощают TOj% -ным водным раствором ацетата свинца, а сероуглерод — 1,5%-ным спиртовым раствором диэтил-амина. При взаимодействии образовавшегося продукта реакции с ацетатом меди образуется диэтилдитиокарбамат меди, окрашенный в желто-бурый цвет (Ятах = 430 нм). Установлено, что для полного гидролиза поликарбацина необходима более концентрированная серная кислота (7N), чем для цирама, цинвба и других этилен-бис-дитиокарбаматов (5Л . Как показали наши исследования, количество выделившегося при этом сероуглерода составляет 95% от теоретически рассчитанного по стехиометрическому уравнению-Чувствительность определения 20мкг в пробе (500—200 г), что составляет 0,04—0,1 мг/кг. [c.21]

Однако процесс гидролиза эфиров фосфорных кислот, По-видимому, более сложен и далеко еще полностью не исследован. Так, некоторые фосфорорганические соединения не следуют общему правилу щелочного и кислотного гидролиза, и во многих случаях место расп1епления связи, равно как и скорость гидролитического распада, сушественно зависит от природы заместителей. Метиловые эфиры фосфорной кислоты гидролизуются в воде с большей скоростью, нежели соответствующие этиловые эфиры (см. табл. 4, деметон-8 и деметон-8-метил). По-видимому, в этом случае снижение реакционной способности связано с уменьшением значения положительного заряда на атоме фосфора вследствие положительного индукционного эффекта алкильной цепи алоксигруппы. Отчетливо проявляется индукционный эффект К -группировки на примере гидролиза тимета [0,0-диэтил-8-(этилтиометил) дитиофосфат] и тио-деметона [0,0-диэтил-8-[2-(этилтио)этил]дитиофосфат]. Последний отличается от тимета дополнительной СНг-группой в К -заместителе, что делает его в 18 раз более стабильным, нежели тимет. [c.19]

Гидрохлориды прокаина (см. №, 44) пропоксикаина и тетракаина (первые два диазотируются, последний нитрозируется) Анилин (см. № 5) /г-толуидин (см. № 12) Продукт кислотного гидролиза изопропил--N-3-хлорфенилкарбамата Первичные ароматические амины, получаемые при кислотном (НС1) гидролизе лекарственных препаратов (см. № 4) Восстановленный продукт диэтил-л-нитро-фенилфосфата ( Параоксон ) Сульфанилбутилмочевина Ароматические амины (см. № 14), например, л-нитроанилин (см. № 19), о-анизидин (см. № 21), сульфаниламидбензи-дин [c.337]

В работе [14] подробно изучена структура доступных областей в целлюлозе. В целлюлозу вводили небольшое количество диэтил-аминоэтильных заместителей, которые практически не изменяли структуру полимера (рентгенографический анализ) и могли быть легко количественно определены в растворимых и нерастворимых продуктах кислотно-каталитического гидролиза методом газо-жид-костной хроматографии. Этот метод позволял определить наличие 0-диэтиламиноэтильных групп в 2, 3 и 6 положениях D-глюкопиранозных остатков. [c.168]