Кислотность амидная

В табл. 12 представлены константы ионизации рКа и рКа, характеризующие соответственно основность атома 14 и кислотность амидной группы соединений V. Между величинами рКа. найденными потенциометрическим и спектрофотометрическим ме- тодами, отмечается различие в 0,5—0,6 единиц рК. Указанное различие объясняется тем, что константы рКа, определяемые методом потенциометрического титрования, относятся к концентрационным, а найденные спектрофотометрическим методом являются промежуточными между концентрационными и термодинамическими. Спектрофотометрическим методом удалось установить константы ионизации вещества 2 (см. табл. 12), характеризующие основность первичной аминогруппы (рКа = 2,13) и атома № (рК = = 4,49). [c.115]

Гидролиз белка. Анализ аминокислотного состава белка проводят после его гидролиза кислотой или щелочью. Пептидная (кислотно-амидная) связь, связывающая аминокислоты в молекуле белка, является ковалентной и химически устойчивой. Поэтому гидролиз белка проводят в достаточно жестких условиях. Кислотный гидролиз проводят кипячением белка в 6 моль/л растворе НС1 при температуре 105—ПО °С обычно в течение 24 ч. Гидролиз проводят в запаянных ампулах, из которых перед запаиванием откачивают воздух. [c.15]

Кислотность амидной группы электроноакцепторные заместители увеличивают, а электронодонорные — уменьшают. [c.116]

Дипептидазы. Процесс переваривания пептидов, их расщепление до свободных аминокислот в тонкой кишке завершают дипептидазы. Среди дипептидаз кишечного сока хорошо изучена глицилглицин-дипептидаза, гидролизующая соответствующий дипептид до двух молекул глицина. Известны также две другие дипептидазы пролил-дипептидаза (пролиназа), катализирующая гидролиз пептидной связи, в образовании которой участвует СООН-группа пролина, и пролин-дипептидаза (пролидаза), гидролизующая дипептиды, в которых азот пролина связан кислотно-амидной связью. [c.423]

По мере накопления данных об аминокислотном составе белков возникла проблема о том, каким способом аминокислоты в молекулах белков связаны друг с другом. Эта проблема разрабатывалась с 1888 г. профессором Харьковского университета А. Я. Данилевским (1838—1923), высказавшим предположение, что аминокислоты в белках связаны друг с другом за счет кислотно-амидных связей. Это предположение вскоре было под-твернсдено Э. Фишером, предпринявшим прямой синтез веществ (пептидов) из аминокислот. Полученные продукты Э. Фишер [c.260]

X = СОННАг) происходит у атома азота боковой цепи. Следовательно, КН-кислотность амидной группы выше, чем КН-кислот-ность ДГП-кольца. [c.100]

Относительные количества якорного и растворимого компонентов в гребневидных привитых сополимерах этого типа не строго лимитированы хорошие результаты получены в интервале соотношений 30 70—70 30 [94]. Для большинства целей удовлетворительно соотношение 1 1, особенно в случае компонентов,, обладающих малой специфической адсорбируемостью или неспособных образовывать водородные связи, например, в случае якорных компонентов на основе метилметакрилата или винилацетата. Если часть якорной мономерной смеси составляют кислотные, амидные или нитрильные мономеры, то может оказаться необходимым увеличить долю растворимого компонента, чтобьг поддержать равновесие между мицеллярными агрегатами и свободными молекулами привитого сополимера в растворе (см. раздел 111.6). [c.119]

Группа Н индивидуальна для каледой аминокислоты, и именно она придает молекуле специфические химические свойства. Как показано в табл. 40.1, все аминокислоты могут быть разделены на семь классов в соответствии с природой группы К. Группа R может быть алифатической, т. е. неполярной ароматической, т. е. также неполярной спиртовой серусодержащей основной кислотной амидной. В пролине азот входит в пирро-лидиновое кольцо. [c.368]

Синтез аспарагина и глютамина из аммиака и аминодикарбоновых кислот является также процессом, связанным с биологическим превращением энергии, и происходит при участии фосфорилирующих механизмов, обеспечивающих перенос энергии. Аспарагин и глютамин, имея кислотно-амидную группировку (—СО—NHa), представляют собой как бы прототипы соединений полинептидн010 характера. Поэтому вполне допустимо, что аспарагин и глютамин выполняют особую функцию в процессах синтеза полипептидов и белков. [c.355]

Штаудингер и Йордер исследовали, подчиняются ли растворы полиамидов в концентрированной серной кислоте уравнению вязкости. Это уравнение не могло быть принято заранее, так как сольватация молекул полиамида в л-крезоле и растворе хлоральгидрата, по-видимому, иная, чем в неорганическом растворителе—серной кислоте. Органический растворитель сольватирует не только кислотные амидные группы, но и органические остатки. При растворении же в концентрированной серной кислоте сольватируются только кислотные амидные группы, органическая жирная цепь остается несольватированной, так как парафиновые углеводороды не растворимы в серной кислоте. Поэтому можно было ожидать, что ж-крезол и раствор хлоральгидрата окажутся лучшими растворителями полиамидов, чем концентрированная серная кислота. Уравнение вязкости для нитевидных молекул справедливо для хороших растворителей, гак как только в них низко- и высокомолекулярные представители полимергомологического ряда сольватируются одинаково хорошо. В плохом растворителе, наоборот, низкомолекулярные соединения лучше сольватированы, чем высокомолекулярные. Поэтому соотношения коэффициентов вязкости в полимергомоло-гическом ряду для хороших и плохих растворителей различны. Это видно из измерений вязкости полимергомологов полистирола в хороших растворителях (толуол, четыреххлористый углерод) и в плохих растворителях (метилэтилкетон) . В плохих растворителях вязкость изменяется не пропорционально числу членов цепи вместо этого имеет место функциональная зависимость, выражающаяся уравнением [c.49]

Русева-Атанасова и Янак [113] разделяли метиловые эфиры по числу углеродных атомов методом газовой хроматографии на неполярной неподвижной фазе и осаждали элюат на тонком слое силикагеля, пропитанного раствором нитрата серебра (т. е. объединили ГХ и ТСХ). При последующем элюировании смесью петролейного и диэтилового эфиров (7 3) происходило разделение сложных эфиров по степени ненасыщенности. Метиловые эфиры для газохроматографического анализа получить довольно быстро и просто переэтерификацию проводят непосредственно на пластинке для ТСХ [114, 115]. После нанесения образца на слой силикагеля или после первоначального элюирования слой опрыскивают 2 н. раствором метилата натрия. Пе-реэтерификация заканчивалась за 5 мин, и в указанных условиях расщепляются только сложноэфирные, а не кислотно-амидные связи. [c.76]

ТО положение таутомерного равновесия должно смещаться в сторону имидной формы, поскольку кислотность амидной формы при [c.538]

В последнее время были открыты многочисленные полиины в природе, а именно в растениях семейства сложноцветных и зонтичных. Эти соединения имеют линейные цепи с 8—18 атомами углерода и различные функциональные группы (спиртовые, кислотные, амидные и т.д.). В качество примера приведем желтый пентаинен, выделенный из подсолнечника (Н. А. Сёренсен, 1954 г.) [c.294]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология