Температура, влияние на рост культур

Если температурный режим не соответствует оптимальному, то рост культуры, а также скорость обменных процессов в клетке заметно ниже максимальных значений (рис. 5.1). Наиболее неблагоприятное влияние на развитие культуры оказывает резкое изменение температуры. При аэробной очистке сточных вод влияние температуры усугубляется еще вследствие соответственного изменения растворимости кислорода. Очень чувствительны к температуре бактерии нитрификаторы их наибольшая активность наблюдается при температуре не ниже 25 °С. [c.161]

Экспериментальные данные показывают, что внутри специфичного для данной культуры температурного интервала увеличение температуры приводит к увеличению максимальной удельной скорости роста, скорости эндогенного метаболизма и сродства микроорганизма к лимитирующему рост субстрату, но влияние температуры на удельные скорости отмирания и лизиса начинает сказываться только после того, как температура поднимается выше верхней границы оптимального температурного интервала. Общее влияние возрастания температуры заключается в том, что, в пределах некоторых границ, оно сопровождается увеличением скорости роста культуры, но с сопутствующим уменьшением коэффициента выхода микробной биомассы по лимитирующему субстрату, являющемуся источником энергии и углерода. [c.102]

Можно использовать и другие методы измерения роста микроорганизмов. Например, у грибов можно измерять рост как увеличение диаметра мицелия с течением времени. Этот метод был бы удобен при изучении влияния температуры на рост грибов, или при изучении действия ингибиторов в среде. Если гриб выращивают в жидкой среде, то можно отфильтровывать или отцентрифугировать пробы культуры через определенные интервалы времени и измерять массу свежего или высушенного мицелия. [c.56]

Рост численности микроорганизмов обусловлен повышенным поступлением в почву питательных элементов, растительных остатков. Характер действия минеральных удобрений на численность микроорганизмов зависит от совокупного влияния экологических факторов влажности и температуры почвы, степени окультуренности, вида возделываемой культуры. [c.165]

При определении влияния температуры на прокариотные организмы следует различать два момента способность организмов к выживанию после длительного нахождения в экстремальных температурных условиях и способность их к росту в этих условиях. Приспособления, сформированные у прокариот для перенесения неблагоприятных условий, в том числе и температурных, — это споры, цисты. Характеристика их устойчивости к высоким температурам приведена в табл. 8. Устойчивость вегетативных клеток и различных покоящихся форм больше в условиях воздействия низкими температурами. Так, вегетативные клетки и покоящиеся формы сохраняли жизнеспособность после длительного выдерживания при температуре, близкой к абсолютному нулю. Последнее используется в качестве одного из способов, обеспечивающих длительное хранение культур прокариот. [c.132]

Культуры клеток представляют собой гомогенную популяцию генетически однородных клеток, растущих в постоянных условиях. Более того, исследователь может изменять эти условия в определенных пределах, что позволяет ему оценивать влияние на рост клеток самых различных факторов — pH, температуры, концентрации аминокислот, витаминов и т. п. Рост, может быть оценен в течение короткого периода времени либо по увеличению числа или размера клеток, либо по включению радиоактивных предшественников в клеточную ДНК. Эти реальные преимущества по сравнению с исследованиями на целых [c.8]

Весьма удобным подходом для изучения кинетики роста микроорганизмов при относительно низкой температуре является использование метода их непрерывного культивирования в условиях хемостата. В системе хемостата можно получать культуры с различными скоростями роста, легко поддерживать их в стабиль-. ном состоянии и изучать влияние на них температуры. Например, [c.92]

Визуальные изменения нитчатых водорослей в токсической среде могут выражаться в изменении их окраски (хлороз) с постепенным переходом ее от зеленой к желтой, бурой, коричневой или полному обесцвечиванию (альбинизация). Снижение тургора клеток и разрыв связей между ними под влиянием токсиканта внешне выражается в размягчении нитчатых водорослей, снижении их сопротивляемости к разрыву, гомогенизации растительной массы и превращении ее в аморфную кашицу. Если вещество обладает тенденцией угнетать (ингибировать) фотосинтез водорослей, то в тест-культуре (особенно при экспозиции на ярком солнечном свету) исчезают пузырьки кислорода, и комок водорослей оседает на дно. Это отчетливо видно на фоне контрольного опыта, в котором водоросли всплывают, поднимаемые пузырьками выделяющегося кислорода. Вещества, стимулирующие фотосинтез, вызывают образование большого количества пузырьков (сливающихся в крупные пузыри) и всплывание комка водорослей. Избыток кислорода и соответствующее под-щелачивание среды приводят к хлорозу и разрушению тест-культуры. Стимуляторы могут вызывать также бурный рост культуры, ее интенсивное позеленение. Завершающим этапом разрушения тест-культуры является ее лизис (органическая масса исчезает, а вода окрашивается выделяющимися пигментами в желтый, коричневый или бурый цвет). Лизис ускоряется при возрастании температуры до 25° С и выше. [c.31]

Эксперименты по изучению влияния на рост Ni lg проводили следующим образом. Свежую среду с 10 % сыворотки добавляли снова к обработанным Ni lg клеткам, которые выдерживали в термостате при температуре 37 "С в течение цедели. В качестве контроля служили клетки, к которым добавляли 0,9 % Na l, а также интактные клетки. По мере роста культуру обрабатывали трипсином и подсчитывали число клеток. [c.306]

Для выявления устойчивости к температуре культуры на питательной среде (лучше жидкой) помешают в политермостат при разных температурах. Затем по росту клеточной массы выявляют оптимальные, минимальные и максимальные температуры. Аналогично, создавая соответствующие условия, обнаруживают влияние других факторов внешней среды на развитие микроорганизмов. [c.85]

Гые происходят в жизнениом цикле каждой клетки водоросли, а выявленная токсичность будет статистически верна лишь для части популяций клеток водорослей. Поэтому для исследования, безусловно, необходимо использовать синхронные культуры с одновозрастными особями, которые последовательно проходят различные фазы роста и развития от темновых Дн и Да до световых Лз, где Дн и Да — темновые рождающиеся активные клетки, Л],2,3—световые растущие и созревающие клетки. Последовательное развитие и рост клеток водорослей обусловлены воздействием на культуру света, температуры, минерального питания и другими факторами. Поэтому необходимо стаядартизи-ровать условия исходных культур, а также условия контроля и опыта, чтобы твердо быть уверенным в том, что изменения, происходящие в опыте, будут зависеть только от изучаемого фактора. Это в конечном счете даст возможность определить максимальное значение фактора токсичности и установить прямое его влияние на рост и развитие всей популяции клеток с учетом изменений, происходящих в цикле их жизни. [c.11]

Введение в практику инсектицидного препарата требует изучения влияния его на вредителей и растения. Если в отношении действия фосфорорганических инсектицидов на насекомых, оказывающих вредное влияние на полевые культуры, имеется довольно большое количество работ, то действие препаратов на растения, на обмен веществ в растениях изучено еще недостаточно. До сих пор мало уделяется внимания вопросам изучения действия препаратов в различных экологических условиях. В этой связи в лаборатории физиологии растений Биологического института Казанского филиала АН СССР начаты исследования влияния препаратов на всхожесть семян, рост и развитие растений с учетом действия на некоторые физиологические показатели (водный режим, фосфорный, азотный обмен и другие). Действие препаратов изучалось при пониженных температурах на фоне различных почвенных условий (оптимальное и недостаточное увлажнение). Объектом исследований была кукуруза. Воздействие инсектицидов осуществлялось путем 6-часового предпосевного намачивания семян в растворах и эмульсиях. В сравнительном аспекте изучалось влияние октаметила, тетраэтилдитиопирофосфата (дитиофос I), диметилдиэтилдитиопирофосфата (дитиофос II) иметилового эфира а-ацетокси-р,р,р-три-хлорэтилфосфиновой кислоты (препарат 307) в различных концентрациях. [c.583]

Лукашик [920] в Польше изучал в долгосрочных опытах влияние ряда регуляторов роста растений на урожай тыквенных культур. Обработка проводилась путем опрыскивания проростков. На основании полученных результатов испытанные вещества можно расположить в порядке убывания эффективности в следующий ряд 2,4,5-трихлорфеноксипропионовая кислота, 2,4,5-трихлорфеноксиуксусная кислота и нафтилуксусная кислота. В годы с пониженной температурой положительное воздействие оказывала гибберелловая кислота, однако в теплые годы обработанные ею растения давали самые низкие урожаи. [c.101]

Температура оказывает значительное влияние на рост и регенерацию изолированных тканей растений, способствуя активации метаболических процессов. Для большинства растительных тканей температурный оптимум составляет 23—25°С. Однако существуют различия между растениями в отношении их требований к температуре. Так, образование луковичек у ЫИит auratum наиболее эффективно при 20 С. Охлаждение эксплантов, предшествующее культивированию ткани гладиолуса, улучшает ее регенерационную способность. Низкие температуры (15—18°С) в течение двух недель необходимы для индукции образования побегов в культуре черешков бегонии. Для почек цветоносов фаленопсиса отмечается влияние температуры на тип морфогенеза при + 28 С из почек регенерируют вегетативные побеги, а при +20°С — генеративные. [c.131]

В первые годы существования тканевых культур были проведены физиологические и биохимические исследования роли отдельных факторов питательной среды влияние кон центрации солей, pH, температуры, осмотического давлС ния. Был исследован обмен веществ культивируемой ткани, проводилось цитологическое изучение клеток в зоне роста. [c.10]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология